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RECUENTO TOTAL DE BACTERIAS AEROBIO MESOFILAS (RTBAM) OBJETIVOS OBJETIVO GENERAL 

Determinar la calidad higiénica de la hamburguesa de la facultad de economía

OBJETIVO ESPECIFICO 

Determinar la calidad higiénica de la hamburguesa por el método RTBAM.

 

Practicar las regla para el conteo de colonias. Observar si la cantidad presente en el alimento está en el rango permitido y verificar su rango.

FUNDAMENTO TEÓRICO En el recuento de microorganismos aerobios mesofilos se estima la flora total, pero sin especificar el tipo de germen. Se puede determinar la calidad sanitaria de los productos analizados indicando, además de las condiciones de higiénicas de la materia prima, la forma como fueron manipulados durante su elaboración.

Un recuento bajo de aerobios mesófilos no implica o no asegura la ausencia de patógenos o sus toxinas, de la misma manera un recuento elevado no significa presencia de flora patógena. Ahora bien, salvo en alimentos obtenidos por fermentación, no son recomendables recuentos elevados.

Su significado es diverso:    

Materia prima excesivamente contaminado. Deficientes métodos de manipulación durante la elaboración de los productos. Alto recuento suele ser signo de inmediata alteración del producto. Tasa superior de 106 -107 gérmenes por gramo suelen ser ya inicio de descomposición.

MATERIALES

EQUIPOS

-

2tubos de ensayo

- Balanza

-

1 probeta de 100ml

- incubadora

-

3 cajas Petri

- autoclave

-

4 pipetas de 2ml

-

1 pipeta de 10ml

-

Solución fisiológica

-

1gradilla

- Agar PCA

-

1 bolsa de Stomacher

- muestra ( hamburguesa)

-

1 mechero

-

Cucharilla, encendedor

-

Toalla, franela

-

Rotulador

-

Desinfectante al 15%

-

Alcohol al 70%

REACTIVOS

METODOLOGIA 

Preparar el agar PCA 100 ml



Preparar 260 ml de solución fisiológica

 Limpiar el mesón y las manos con desinfectante y alcohol 

Esterilizar todo el material, cuchara, pipetas, probeta, agar, sol. Fisiológica en el autoclave por 15 min. a 121°C



Con una pipeta de 10 ml pipetear a cada tubo 9 ml y rotular -2, -3, -4 respectivamente



Homogenizar la muestra dentro la bolsa, pesar 25 gr de muestra en una bolsa de Stomacher con una cuchara cerca del mechero.



Añadir 225 ml de la solución fisiológica a la muestra previamente antes dejar enfriar a 40°C y homogenizar, esa será la muestra madre (solución -1), dejar reposar



Rotulamos -2, -3 y -4en las placas respectivamente



Cerca del mechero pipeteamos 1ml de la solución madre (solución-1) agregamos 1ml al tubo -2 y desechamos la pipeta



Homogenizamos el tubo -2 y pipeteamos 2ml del cual 1ml agregamos a la placa -2 y 1 ml al tubo -3 desechamos la pipeta.



Homogenizamos el tubo -3 y pipeteamos 2ml del cual 1ml se agregó a la placa - 3 y por ultimo 1ml al tubo -4 desechamos la pipeta.



Homogenizamos el tubo -4 y pipeteamos 1ml se agrego a la placa -4 .



Esperamos que el agar enfríe a 50-60°C aproximadamente



Vertimos el agar PCA aproximadamente 25ml a cada placa y homogenizamos en forma circula a ambos sentidos, esperamos que gelifique para después incubar



Una vez gelificado llevamos las placas invertidas a incubar por 24-48hrs a 37°C



Lavamos todos los materiales usados y desinfectamos el mesón



Pasada las 24 y 48hrs realizamos el recuento total de bacterias para hacer cálculos y hallar resultados

DATOS, CÁLCULOS Y RESULTADOS

Parámetro: RTBAM

Rango: 25-250 colonias

Medio: PCA

Muestra: apanado de carne

Primer conteo:

-2

-3

116

19

-4 6

Segundo conteo:

-2

-3

250

23

Cálculos.- primer conteo RTBAM = Nº de colonias*dilución 3

RTBAM = 532*10

RTBAM = 5.32*105 UFC/g Segundo conteo: RTBAM = Nº de colonias*dilución 3

RTBAM = 620*10

RTBAM = 6,2*105 UFC/g

-4 12

Resultados.NUMERO DE

PARAMETROS

RESULTADOS

LIMITE

NORMA DE

NORMA DE

DE ENSAYO

*(UFC/gr)

(UFC/gr)

REFERENCIA

ENSAYO

DE LIMITE

Recuento: NB – 32003

Bacterias mesofilas aerobias

6,2*105

1 × 107

NB - 310017

OBSERVACIONES Pasado las 24 horas se pudo observar en nuestras placas Petri estaba bien homogenizado el agar en la placa -2 se podía contar las colonias en la placa -3 se podía contar pero en esta caja ya no había un exceso de colonias y por último en la caja -4 se podría observar pequeñas colonias que ya no entraban al rango . 



Según el rango de colonias establecida para este parámetro se observó que en la placa -2 es contable y entra en el rango de las colonias placa-3 es contable acercándose al rango de las colonias y por último la caja -3 se podría observar algunas colonias pero no entraba al rango de las colonias La muestra que se analizó sobrepasa las normas establecido lo cual sería lo recomendable bajar las carga microbiana con buenas prácticas de mano factura.

CONCLUSIONES  

Pudimos determinar correctamente la calidad higiénica de nuestra muestra (hamburguesa). Comparando con el análisis microbiológico nuestro hamburguesa no está en estado de putrefacción rango de nuestro RTBAM es aceptable según la norma peruana.

COLIFORMES TOTALES Y FECALES OBJETIVOS OBJETIVO GENERAL 

Evaluar la calidad sanitaria de la hamburguesa mediante la búsqueda de microorganismos coniformes totales y coniformes fecales.

OBJETIVO ESPECÍFICA 

Por medio de la técnica recuento en placas determinar la cantidad de coniformes hallado en la hamburguesa observando los medios de cultivo.



Utilizar adecuadamente los materiales y equipos para analizar los microorganismos.



Realizar de manera correcta el recuento de bacterias típicas en las placas de crecimiento Detectar si la muestra traída es apta para el consumo humano.



FUNDAMENTO TEÓRICO Los coniformes fecales son subgrupos de los coniformes totales, capaces de fermentar la lactosa a 44.5 grados en vez de 37 grados como lo hacen los coniformes totales. Aproximadamente el 95%de los grupos de los coniformes presentes en heces están formados por escherichia coli y ciertas especies de de klebsiella .ya que los coliformes fecales se encuentran casi exclusivamente en las heces de los animales de sangre caliente, se consideran que reflejan mejor la presencia de contaminación fecal. Estos últimos se denominan termo tolerantes por su capacidad de soportar temperaturas más elevadas. Esta es las características que diferencia a coliformes totales y fecales. Cuando los coliformes llegan a los alimentos, no sólo sobreviven, sino que se multiplican, por lo que en los alimentos el grupo coliforme adquiere un significado distinto al que recibe en el agua. En productos alimenticios que han recibido un tratamiento térmico (pasteurización, horneado, cocción, etc.), se utilizan como indicadores de malas prácticas sanitarias. El grupo de bacterias coliformes totales comprende todos los bacilos Gramnegativos aerobios o anaerobios facultativos, no esporulados, que fermentan la lactosa con producción de gas en un lapso máximo de 48 h. a 35°C ± 1ºC. El grupo de coliformes fecales, está constituido por bacterias Gram-negativas capaces de fermentar la lactosa con producción de gas a las 48 h. de incubación a 44.5 ± 0.1°C. Este grupo no incluye una especie determinada, sin embargo la más prominente es Escherichia coli. Su presencia se interpreta como una indicación de que los organismos patógenos pueden estar presentes y su ausencia indica que el agua o el alimento estudiado se hallan de organismos productores de enfermedades.

MATERIALES

EQUIPOS

-

6 tubos de ensayo

- Balanza

-

1 probeta de 100ml

- incubadora

-

3cajas Petri

- autoclave

-

5 pipetas de 2ml

-

1 pipeta de 10ml

-

2 matraces de 500 y 250ml

- Solución fisiológica

-

1gradilla

- Agar VRBL

REACTIVOS

-

1 bolsa de Stomacher

-

1 mechero

-

Cucharilla, encendedor

-

Toalla, franela

-

Rotulador

-

Desinfectante al 15%

-

Alcohol al 70%

- muestra (hamburguesa ) - caldos CVBB y EC

METODOLOGIA 

Preparar el agar VRBL 100 ml



Preparar 80 ml de caldo CVBB y EC



Preparar 290 ml de solución fisiológica

 Limpiar el mesón y las manos con desinfectante y alcohol 

Esterilizar todo el material, cuchara, pipetas, probeta, agar, sol. Fisiológica en el autoclave por 15 min. a 121°C



Con una pipeta de 10 ml pipetear a cada tubo 9 ml y rotular -2, -3, -4 respectivamente



Homogenizar la muestra dentro la bolsa, pesar 25 gr de muestra en una bolsa de Stomacher con una cuchara cerca del mechero.



Añadir 225 ml de la solución fisiológica a la muestra previamente antes dejar enfriar a 40°C y homogenizar, esa será la muestra madre (solución -1), dejar reposar



Rotulamos -1, -2 y -3 en las placas respectivamente



Cerca del mechero pipeteamos 2ml de la solución madre (solución-1) agregamos 1 ml a la placa -1 y 1ml al tubo -2 y desechamos la pipeta



Homogenizamos el tubo -2 y pipeteamos 1ml al tubo -3, desechamos la pipeta



Agregar 1ml a la placa -3 del tubo -3



Esperamos que el agar enfríe a 50-60°C aproximadamente



Vertimos el agar VRBL aproximadamente 20ml a cada placa y homogenizamos en forma circula a ambos sentidos, esperamos que gelifique para después incubar



Una vez solidificado verter un poco más de agar para que cubra toda la placa y los microorganismos crezcan en medio anaeróbico



Una vez gelificado llevamos las placas invertidas a incubar por 24 hrs a 35 ± 2 °C



Lavamos todos los materiales usados y desinfectamos el mesón



Pasada las 24 hrs realizamos el recuento total de bacterias típicas (color rojo purpura con un halo de precipitado)



Elegir tres colonias típicas para sembrar en los caldos



Tomar un poco de la colonia elegida con un asa previamente esterilizada en el mechero al rojo vivo, sembrar primero en el caldo EC y después volver a tomar la muestra para sembrar sin quemar en el caldo CVBB, repetir el mismo procedimiento para las tres colonias elegidas



Incubar el caldo CVBB A 35 ± 2 °C y el caldo EC a 44.5 °C durante 24 – 48°C



Pasado el tiempo de incubación realizar los cálculos y resultados

DATOS, CÁLCULOS Y RESULTADOS

.Parámetro: COLIFORMES Y FECALES

Rango: 15 – 150 colonias

Medio: VRBL

Muestra: apanado de carne

-1

-2

Incontable

65

Caldo EC

Caldo VBB

-3 18

24

CF

negativo

Positivo

Negativo

48

CF

negativo

Positivo

positivo

24

CT

Positivo

Positivo

Positivo

Caldo de triptona

24 horas

Indol(E. colis

Negativo

negativo

positivo

Cálculos.CF O CT = N de colonias ×

𝑡𝑢𝑣𝑜𝑠 𝑝𝑜𝑠𝑖𝑡𝑖𝑣𝑜𝑠 𝑡𝑢𝑣𝑜𝑠 𝑡𝑜𝑡𝑎𝑙𝑒𝑠

× dilucion

3

CF =18× × 103 3

CF=1.8× 104 UFC/g 3

CT =18× × 103 3

CT=1.8× 104 UFC/g EC= N de colonias × 3

1

3

3

EC =68× × × 102 Resultados.-

𝑡𝑢𝑣𝑜𝑠 𝑝𝑜𝑠𝑖𝑡𝑖𝑣𝑜𝑠 𝑡𝑢𝑣𝑜𝑠 𝑡𝑜𝑡𝑎𝑙𝑒𝑠

×

𝑖𝑛𝑑𝑜𝑙 ± 𝑔𝑎𝑠 𝑝𝑜𝑠𝑖𝑡𝑖𝑣𝑜

EC =2.27× 103 UFC/g

× 𝑑𝑖𝑙𝑢𝑐𝑖𝑜𝑛

NUMERO DE

PARAMETROS

RESULTADOS

LIMITE

NORMA DE

NORMA DE

DE ENSAYO

*(UFC/gr)

(UFC/gr)

REFERENCIA

ENSAYO

DE LIMITE

Recuento: NB – 32005

E. coli

2.27× 103

2

5*10

NB - 310017

OBSERVACIONES 



Pasado las 24 horas se pudo observar que en la placa -1 era incontable en la placa -2 se podía apreciar mejor las colonias típicas que son rojo purpuras con un precipitado donde si entraba al rango y por último en la placa -3 también entraba al rango de las colonias. Después se tomó de la PLACA -3 tres colonias típicas donde se sembró a los caldos calco ECOLI y CALDO VBB donde pasado las 24 horas solo reaccionaron dos tubos con presencia de gas los cual se esperó otras 24 horas para ver si reaccionara el ultimo tuvo.

Par la determinación de EC. se tomó los tubos que tenían presencia de gas de los caldos ecolis donde se sembró en las placas que tenían agar EMB por estría Pasado las 24 horas se pudo observar que en la placa -1 no estaban distribuidos tan bien en placa -2 se podía apreciar mejor las colonias típicas que son verde metálicos des pues se sembró en agua de triptona en tres tubos en lo cual solo dio en un tubo indol positivodonde se pudo apresiar en la parte superior una cinta de color rojo.

CONCLUSIONES 

Comparando con el rango de aceptabilidad según la norma BOLIVIANA nuestro resultado sobrepasa el rango establecido asi que el alimento analizado no está dentro de la norma sanitaria establecida y no es recomendable el consumo.

MOHOS Y LEVADURAS OBJETIVOS OBJETIVO GENERAL  

Realizar adecuadamente mediante el método de conteo de placas, el número de mohos y levaduras presentes en la hamburguesa destinado al consumo humano. Identificar las características macroscópicas de mohos y levaduras.

OBJETIVO ESPECIFICO



Determinar la calidad higiénica de la hamburguesa.



Comprender el fundamento de todas las etapas del método de detección y cuantificación de mohos y levaduras en alimentos.



Realizar de manera correcta el recuento de mohos y levaduras en las placas de crecimiento.

FUNDAMENTO TEÓRICO Se considera como moho determinado tipo de hongo multicelular filamentoso, dotado de micelios verdaderos y microscópicos, mientras que las levaduras son aquellos hongos con células independientes que cresen formando agregados y que pueden presentar diferentes aspectos celulares, desde globosas hasta cilíndricas, pasando por formas alargadas u ovoides. Las levaduras en medio solido generan colonias semejantes a las que se aprecian en las bacterias. Otra diferencia entre ambos grupos resiste en su identificación. Las levaduras al igual que las bacterias, pueden ser sometidas a diferentes pruebas bioquímicas que permita su identificación. Sin embargo los mohos raramente pueden ser clasificados de acuerdo a este criterio, siendo más habitual su clasificación de acuerdo a caracteres morfológicos observados por microscopia. Los hongos y las levaduras se encuentran ampliamente distribuidos en el ambiente, pueden encontrarse como flora normal de un alimento o como contaminante en equipos mal sanitizados.ciertas especies de hongos y levaduras son útiles en la elaboración de algunos alimentos, sin embargo también pueden ser causantes de la descomposición de los alimentos.

ESTRUCTURA Y APARIENCIA; Las levaduras son organismos que están formados por una célula, que en general es redonda u ovalada, mientras que los mohos tienen una estructura completamente multicelular que, visto a simple vista es completamente diferente al de las levaduras. Los mohos tienden a ser mucho más colorido y pueden tener una textura lanosa o velluda mientras que una colonia de levaduras es incolora y generalmente lisa. Los hongos y levaduras pueden utilizar ciertos sustratos como pectinas, carbohidratos como polisacáridos, ácidos orgánicos, proteínas y lípidos. También pueden causar problemas a través de: (a) síntesis de metabolitos tóxicos (micotoxinas), (b) resistencia al calor, congelamiento, antibióticos o irradiación y (c) habilidad para alterar sustratos no favorables permitiendo el crecimiento de bacterias patógenas. Pueden también causar malos olores y sabores y la decoloración de las superficies de alimentos

MATERIALES

EQUIPOS

-

2 tubos de ensayo

- Balanza

-

1 probeta de 100ml

- incubadora

-

4 cajas petri

- autoclave

-

5 pipetas de 2ml

-

1 pipeta de 10ml

REACTIVOS

-

2 matraces de 500 y 250ml

- Solución fisiológica

-

1gradilla

- Agar PDA

-

1 bolsa para Stomacher

- muestra (hamburguesa )

-

1 mechero

- Acido tartárico

-

Cucharilla, encendedor

- Oxitetraciclina

-

Toalla, franela

-

Rotulador

-

Desinfectante al 15%

-

Alcohol al 70%

METODOLOGIA 

Preparar el agar PDA 100 ml



Preparar 290 ml de solución fisiológica

 Limpiar el mesón y las manos con desinfectante y alcohol 

Esterilizar todo el material, cuchara, pipetas, probeta, agar, sol. Fisiológica en el autoclave por 15 min. a 121°C



Con una pipeta de 10 ml pipetear a cada tubo 9 ml y rotular -1, -2,-4 respectivamente



Homogenizar la muestra dentro la bolsa, pesar 25 gr de muestra en una bolsa de Stomacher con una cuchara cerca del mechero.



Añadir 225 ml de la solución fisiológica a la muestra previamente antes dejar enfriar a 40°C y homogenizar, esa será la muestra madre (solución -1), dejar reposar



Rotulamos -1, -2 y -4 en las placas respectivamente



Cerca del mechero pipeteamos 2ml de la solución madre (solución-1) agregamos 1 ml a la placa -1 y 1ml al tubo -2 y desechamos la pipeta



Homogenizamos el tubo -2 y pipeteamos 1ml al tubo -3, y un 1ml a la placa -2 desechamos la pipeta



Homogenizamos el tubo -3 y pipeteamos 1ml al tubo -4 desechamos la pipeta.



Homogenizamos el tubo -4 y pipeteamos 1ml a la placa -4 y desechamos la pipeta.



Esperamos que el agar enfríe a 50-60°C aproximadamente y añadimos media capsula de oxitetraciclina y acido tartárico 1.6ml por 100 ml de agar



Vertimos el agar PDA aproximadamente 25ml a cada placa y homogenizamos en forma circula a ambos sentidos, esperamos que gelifique para después incubar



Una vez gelificado llevamos las placas sin invertir a incubar por 3 – 5 o 7 días a 25°C o dejamos al ambiente pero siempre cuidando de dejarlos en un lugar oscuro para favorecer el crecimiento



Lavamos todos los materiales usados y desinfectamos el mesón



Pasada 3 – 5 días realizamos el recuento total de mohos y levaduras para hacer cálculos y hallar resultados

DATOS, CÁLCULOS Y RESULTADOS

Parámetro: MOHOS Y LEVADURAS Medio: PDA

Rango: 10 – 150 colonias Muestra: APANADO DE CARNE

3 DIA

𝟏𝟎_𝟏

𝟏𝟎_𝟐

MOHOS

236

75

LEVADURAS

60

12

5 DIA

𝟏𝟎_𝟏

𝟏𝟎_𝟐

𝟏𝟎_𝟑 8 1

𝟏𝟎_𝟑

MOHOS

245

75

LEVADURAS

64

14

7 DIA

𝟏𝟎_𝟏

MOHOS

2

𝟏𝟎_𝟐

270

75

67

15

LEVADURAS

8

𝟏𝟎_𝟑 8 2

Cálculos.MOHOS O LEVADURAS= Nº de colonias*dilución

7 DIA: MOHOS =75× 102

MOHOS =7.5× 103 UFC/g

LEVADURAS =67× 101

LEVADURAS =6.7× 102 UFC/g

Resultados.NUMERO DE

PARAMETROS

RESULTADOS

LIMITE

NORMA DE

NORMA DE

DE ENSAYO

*(UFC/gr)

(UFC/gr)

REFERENCIA

ENSAYO

DE LIMITE

Recuento: NB – 32003

mohos

7.5× 103

NB - 310017

NB – 32003

levaduras

6.7× 102

NB - 310017

OBSERVACIONES 

Se observó un gran crecimiento de mohos y levaduras hasta los 7 días era un poco más difícil el conteo de los mohos y de las levaduras por que crecieron mucho más .



Las hifas y los micelios de los mohos eran de color blanco o marfil y las levaduras eran cremosas

CONCLUSIONES -

La muestra no es apta para el consumo ya que tiene demasiada cantidad de mohos y levaduras.

INVESTIGACION DE SALMONELLA OBJETIVOS OBJETIVO GENERAL 

Determinar la presencia o ausencia de salmonella en la hamburguesa.

OBJETIVO ESPECIFICO  

Determinar la calidad higiénica de la hamburguesa. Sembrar correctamente en la serie bioquímica

FUNDAMENTO TEÓRICO Salmonella es un género de bacteria, pertenecientes a la familia enterobacteriae, integrado por células en forma de bacilos, no esporuladas y ha bitualmente móviles mediante flagelos peritricos.son bacterias Gram - negativas de metabolismos anaerobio facultativo, que reducen los nitratos a nitritos y que fermentan la glucosa produciendo ácido y gas. Raramente fermentan la lactosa o la sacarosa. La identificación y /o confirmación de las colonias presuntivas de salmonella se realiza mediante pruebas bioquímicas que utilizan medios diferentes como el agar entérico hektoen y el agar xilosa lisina desoxicolato(XLD ). Las colonias típicas de este microorganismo son rosadas, pueden presentar o no un centro negro debido a la producción de ácido sulfhídrico en agar XLD y verdosa o verde azulado con o sin centros negros en el agar hektoen.en algunos casos son completamente negras. Simultáneamente, se puede llevar a cabo en medio de agar triple hierro (TSI) y el agar lisina de hierro (LIA). Prueba como urea, de producción de indol, crecimiento de caldo KCN fermentación de dulcitol o la utilización de malo nato de sodio también sirve como pruebas bioquímicas complementarias.

MATERIALES

EQUIPOS

-

5 tubos de ensayo

- Balanza

-

1 probeta de 100ml

- incubadora

-

21cajas petri

-

1 pipetas de 2ml

-

1 pipeta de 10ml

-

2 matraces de 500 y 250ml

- Solución fisiológica

-

1gradilla

- Agar XLD

-

1 bolsa de Stomacher

- muestra (hamburguesa )

-

1 mechero

- Serie bioquímica

-

Cucharilla, encendedor

-

Toalla, franela

-

Rotulador

-

Desinfectante al 15%

-

Alcohol al 70%

- autoclave

REACTIVOS

METODOLOGIA 

Preparar el agar XLD 70 ml, la serie bioquímica y el caldo de tetrationato



Preparar 290 ml de solución fisiológica

 Limpiar el mesón y las manos con desinfectante y alcohol 

Esterilizar todo el material, cuchara, pipetas, probeta, sol. Fisiológica en el autoclave por 15 min. a 121°C



Preparar el agar y el caldo porque no se autoclavan



Veritr el agar en las placas para que gelifique y guardar en la conservadora hasta usarla

PREENRIQUECIMIENTO 

Homogenizar la muestra dentro la bolsa, pesar 25 gr de muestra en una bolsa de Stomacher con una cuchara cerca del mechero.



Añadir 225 ml de la solución fisiológica a la muestra previamente antes dejar enfriar a 40°C y homogenizar, esa será la muestra madre, dejar reposar



incubar por 24hrs a 35 ± 2 °C para revivificar las bacterias

ENRIQUECIMIENTO 

Pipetear 1 ml de la solución madre a caldo de tetrationato ya preparado(10ml de caldo de tetrationato añadir 0.1ml de verde brillante y 0.2 ml de yodo)



Dejar incubando el caldo de tetrationato a 42.5 °C por 24 hrs

AISLAMIENTO 

Estriar en las placas de XLD con un asa de punta redonda del caldo de tetrationato(antes agitar)



Incubar las placas de XLD en la incubadora a 35±2 °C por 24 a hrs si es que no presenta crecimiento de colonias negras



Elegir una colonia aislada de la placa de XLD para sembrar en las serie bioquímica

CONFIRMACION 

Primero sembrar en KIA (estría, picadura) y luego en LIA ( picadura, estría) sin quemar ni tomar otra vez la colonia



Tomar un poquito de colonia sembrar en MIO (picadura) después en CS (estría) tomando otra vez la colonia



Dejar incubar toda la serie bioquímica a 35±2°C por 24 hrs



Observar los cambios de color, presencia de gas y sulfatación para ver la presencia de salmonella

DATOS, CÁLCULOS Y RESULTADOS

Datos.-

CALDO TETRATIONATO

Parámetro: SALMONELLA Muestra: APANADO DE CARNE

Cálculos.-

SERIE BIOQUIMICA PARA LA DETERMINACION DE LA SALMONELA

      

Para determinar la salmonela en la serie bioquímica lo que determina la presencia de salmonela es kia y lia. KIA glucosa positivo Lactosa negativa Gas positivo Sulfuro positivo LIA Sulfuro positivo Descarboxilacion dela lisina positiva

Resultados.-

SAL = AUSENCIA/25gr NUMERO DE NORMA DE

PARAMETROS RESULTADOS DE ENSAYO

*(UFC/gr)

LIMITE

NORMA DE

(UFC/gr)

REFERENCIA

ENSAYO

DE LIMITE

Recuento: NB ISO -

Salmonella

6579

AUSENCIA

presencia

NB - 310017

/25 gr

OBSERVACIONES  

El estriado en la placa de XLD no estuvo perfectamente realizado Se sobrecargo el asa para sembrar en kia y el medio cambio todo a negro

CONCLUSIONES 

Se determinó correctamente la práctica y el resultado obtenido fue Presencia/25 gr de muestra, esto demuestra el mal estado del alimento analizado y representa un peligro para la sociedad ya que puede causar enfermedades.