Analisis Microbiologico -Agua de Mesa

PRODUCCION DE AGUA DE MESA A PARTIR DE AGUA POTABLE ANALISIS MICROBIOLOGICO I. Bacterias Indicadoras de Contaminación

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PRODUCCION DE AGUA DE MESA A PARTIR DE AGUA POTABLE

ANALISIS MICROBIOLOGICO I.

Bacterias Indicadoras de Contaminación

Las condiciones bacteriológicas del agua son fundamentales desde el punto de vista sanitario. La norma bacteriológica de calidad establece que el agua debe estar exenta de patógenos de origen entérico y parasitario intestinal que son los responsables de transmitir enfermedades como salmonelosis, shigelosis, amebiasis, etc. Los microorganismos indicadores de contaminación deben cumplir los siguientes requisitos: fáciles de aislar y crecer en el laboratorio; ser relativamente inocuos para el hombre y animales; y presencia en agua relacionada, cuali y cuantitativamente con la de otros microorganismos patógenos de aislamiento más difícil. Tres tipos de bacterias califican a tal fin:   

Coliformes fecales: indican contaminación fecal. Aerobias mesófilas: determinan efectividad del tratamiento de aguas. Pseudomonas: señalan deterioro en la calidad del agua o una re contaminación.

Desde el punto de vista bacteriológico, para definir la potabilidad del agua, es preciso investigar bacterias aerobias mesófilas y, coliformes totales y fecales. La gran sensibilidad de las bacterias aerobias mésófilas a los agentes de los agentes de cloración, las ubica como indicadoras de la eficacia del tratamiento de potabilización del agua. Las bacterias coliformes habitan el tracto intestinal de mamíferos y aves, y se caracterizan por su capacidad de fermentar lactosa a 35°C. Los géneros que componen este grupo son Escherichia, Klebsiella, Enterobacter, Serratia, Citrobacter y Edwardsiella. Todas pueden existir como saprofitas independientemente, o como microorganismos intestinales, excepto el género Escherichia cuyo origen es sólo fecal.

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Esto ha llevado a distinguir entre coliformes totales (grupo que incluye a todos los coliformes de cualquier origen) y coliformes fecales (término que designa a los coliformes de origen exclusivamente intestinal) con capacidad de fermentar lactosa también a 44,5°C. La existencia de una contaminación microbiológica de origen fecal se restringe a la presencia de coliformes fecales, mientras que la presencia de coliformes totales que desarrollan a 35°C, sólo indica existencia de contaminación, sin asegurar su origen. Los enterococos fecales cuyo desarrollo ocurre a 35°C se usan como indicadores complementarios de contaminación fecal. La validez de todo examen bacteriológico se apoya en una apropiada toma de muestra (recipiente estéril de boca ancha y metodología precisa), y en las adecuadas condiciones de transporte desde el lugar de la fuente de agua hacia el laboratorio (refrigeración, tiempo). El sistema de conservación de la muestra debe ser confiable, y la misma analizada inmediatamente o al cabo de un corto período entre extracción y análisis. El análisis cuantitativo de bacterias indicadoras de contaminación en una muestra de agua puede realizarse por dos metodologías diferentes: 

Recuento directo de microorganismos cultivables por siembra de la muestra sobre o en un medio de cultivo agarizado.



Recuento indirecto (basado en cálculos estadísticos) después de sembrar diluciones seriadas de la muestra en medios de cultivos líquidos específicos. Se considera, al cabo de una incubación adecuada, los números de cultivos «positivos» y negativos». Esta metodología se denomina «Técnica de los Tubos Múltiples» y los resultados se expresan como número más probable (NMP) de microorganismos. Además de otros métodos, se puede recurrir a aquellos en los que se aplica biología molecular como por ejemplo, la técnica de hibridación in situ por fluorescencia (FISH) utilizando sondas marcadas en base a secuencia nucleotídica del gen 16S. En este capítulo sólo se describirá el primer método en el cual la muestra se concentra por filtración sobre membrana, denominada

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«Técnica de la Membrana Filtrante». En ella, se procede a filtrar un volumen determinado de muestra (normalmente 100 mL) a través de membranas de ésteres de celulosa generalmente con diámetro de poros de 0,45 µm y en algunos casos de 0,22 µm. Posteriormente, la membrana se deposita sobre un medio de cultivo selectivo y bajo condiciones favorables (temperatura y tiempo de incubación) y sobre la membrana desarrollan colonias aisladas con aspectos característicos que permiten la identificación y el recuento. Conociendo el volumen de muestra filtrada es posible determinar el número de UFC por unidad de volumen. La obtención de resultados confiables requiere un intercambio de nutrientes a través de los poros de la membrana, por ello se debe evitar la filtración de aguas con alto contenido de material en suspensión que pueden obstruir las membranas. Además, el número de colonias desarrolladas sobre la membrana debe ser inferior a un determinado valor (variable según los microorganismos y la composición del medio que condiciona el tamaño de las colonias) generalmente comprendido entre 80 y 100. A valores superiores, la proximidad de las colonias, puede conducir a resultados inexactos. Los medios de cultivos usados, las temperaturas y tiempos de incubación, y el color de las colonias típicas de bacterias indicadoras de contaminación se detallan en la tabla.

Medios Tabla de cultivo, temperaturas y tiempos de incubación, y color de las colonias de algunas bacterias indicadores de contaminación. La importancia de conocer las especies presentes en los sistemas acuosos naturales y el comportamiento en su ambiente, radica en la INDUSTRIA DE LOS PROCESOS QUIMICOS INORGANICOS 3

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posibilidad de desarrollar nuevas tecnologías que logren su eliminación y de esta manera controlar enfermedades de origen hídrico.

II.

Calidad microbiológica del agua embotellada

El agua embotellada puede ser cualquier fuente de agua potable que recibe tratamientos físicos y químicos, y que está libre de agentes infecciosos. Las fuentes pueden ser pozos profundos, deshielos de las montañas o bien el suministro municipal de agua. Como cualquier otro producto alimenticio, debe ser procesada, empacada y almacenada de manera sanitaria y libre de contaminación. Además de su uso general, ésta puede ser utilizada para la preparación de formulas infantiles, en los asilos de ancianos y para reconstituir alimentos en hospitales, o además, para la limpieza de lentes de contacto y el llenado de los humidificadores del ambiente. Como casi todos los productos alimenticios, el agua embotellada no es un producto libre de microorganismos, específicamente de bacterias que se encuentra en forma natural en los suministros de agua (Chaidez, 2 002). Se tiene la percepción de que una vez que el agua es embotellada, el producto es estéril, pero en realidad, el agua que es usada para envasado puede contener grandes cantidades de cuenta total bacteriana, que puede alcanzar números de hasta 10 5 unidades formadoras de colonias por mililitro (UFC/ml) (Chaidez, 2 002). Si no se toman las precauciones sanitarias adecuadas, el agua embotellada puede contener bacterias, las cuales originan antes del envasado, y que después de haberse envasado, éstas se reproducen a concentraciones que podrían representar un riesgo a la salud. Se ha demostrado que las fuentes de agua pueden contener niveles de hasta 105 a 107 UFC/ml (Chaidez, 2 002). Algunas empresas utilizan agua potable como fuente principal, y las bacterias que residen en el agua pueden aparecer en el producto final una vez que el agua es procesada. Además, las prácticas higiénicas deficientes del personal que participa en el procesamiento del agua, aunado al manejo inadecuado de los envases, dan como resultado un aumento de la población bacteriana en el producto final (Burgos, 2 011). INDUSTRIA DE LOS PROCESOS QUIMICOS INORGANICOS 4

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Las fuentes de agua embotellada generalmente contienen una microflora muy variada, que incluye las siguientes especies: Achromobacter spp., Aeromonas spp., Flavobacterium spp., Alcaligens spp., Acinetobacter spp., Cytophaga spp., Moraxella spp., y Pseudomonas spp. Estas bacterias se encuentran en pequeñas cantidades, pero pueden multiplicarse rápidamente durante el envasado y almacenamiento del agua. Existe mucha controversia sobre el efecto que pueda tener la microflora del agua para consumo humano. La mayoría de estos organismos no son patogénicos en condiciones normales, pero han sido responsables de infecciones oportunistas en pacientes hospitalizados, siendo los de más alto riesgo aquellos con tratamiento de antibióticos e inmunodeprimidos. La presencia de bacterias oportunistas patógenas en agua para consumo está bien documentada. 30 UFC/100 ml en agua almacenada (Chaidez, 2 002). Slade y colaboradores (1986) encontraron que 43% de lasmuestras de agua embotellada analizadas conteníanAeromonas hydrophila, yWarburton y colaboradores (1994)mostraron que esta bacteria puede sobrevivir y reproducirse enagua a niveles de 10 5UFC/100 ml en agua almacenada(Chaidez,2002). La presencia de bacterias oportunistas patógenas en aguade consumo humano, representa un problema latente a la población en general. Sin embargo, los más afectados son los inmunodeficientes, recién nacidos y personas de la tercera edad (Burgos,2011).

III.

Contaminantes microbiológicos:

Microorganismos indicadores e índices Los análisis microbiológicos incluidos en el monitoreo operativo y de verificación (incluida la vigilancia) se limitan habitualmente a la detección de microorganismos indicadores, ya sea para medir la eficacia de las medidas de control o como índices de contaminación fecal (OMS,2006). El uso de la presencia de microorganismos indicadores como indicio de contaminación fecal es una práctica bien establecida en la evaluación de la calidad del agua de consumo. Se determinó que estos indicadores, además de no ser patógenos, debían cumplir los criterios siguientes:

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     

Estar universalmente presentes, en grandes concentraciones, en las heces de personas y animales. No proliferar en aguas naturales. Tener una persistencia en agua similar a la de los agentes patógenos fecales. Estar presentes en concentraciones mayores que las de los agentes patógenos fecales. Responder a los procesos de tratamiento de forma similar a los agentes patógenos fecales. Poder detectarse fácilmente mediante métodos sencillos y baratos.

Estos criterios dan por supuesto que el mismo microorganismo indicador puede utilizarse como índice de contaminación fecal y como indicador de la eficacia de un tratamiento o proceso. No obstante, se ha comprobado que un solo indicador no puede cumplir ambas funciones. Se ha prestado una creciente atención a las limitaciones de los indicadores tradicionales, como E. coli, como indicadores indirectos de la presencia de protozoos y virus entéricos, y se ha sugerido el uso de otros indicadores para estos agentes patógenos, como bacteriófagos y esporas bacterianas. Además, se asigna una creciente fiabilidad a parámetros que pueden utilizarse como indicadores de la eficacia de los tratamientos y procesos diseñados para eliminar agentes patógenos fecales, como bacterias, virus, protozoos y helmintos (OMS, 2 006). Es importante distinguir entre los análisis microbiológicos realizados para detectar la presencia de agentes patógenos fecales y los que miden la eficacia de tratamientos o procesos. Como primer paso, se ha propuesto el uso de dos términos diferentes: índice e indicador, que se definen así: • Un microorganismo índice es el que señala la presencia de microorganismos patógenos; por ejemplo, como índice de agentes patógenos fecales • Un microorganismo indicador es el que se utiliza para medir la eficacia de un proceso; por ejemplo, un indicador de proceso o un indicador de desinfección.

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Estos términos pueden aplicarse también a parámetros no microbiológicos; así, la turbidez puede utilizarse como indicador de filtración (OMS, 2 006).

IV.

Cepas patógenas de Escherichia coli

 Descripción general Escherichia coli está presente en grandes concentraciones en la microflora intestinal normal de las personas y los animales donde, por lo general, es inocua. Sin embargo, en otras partes del cuerpo E. coli puede causar enfermedades graves, como infecciones de las vías urinarias, bacteriemia y meningitis. Un número reducido de cepas entero patógenas pueden causar diarrea aguda. Se han determinado varios tipos de E. coli entero patógenas, basándose en diferentes factores de virulencia: E. coli entero hemorrágica (ECEH), E. coli entero toxígena (ECET), E. coli entero patógena (ECEP), E. coli 34 Entero invasiva (ECEI), E. coli entero agregativa (ECEA) y E. coli de adherencia difusa (ECAD) (OMS, 2 006).  Efectos sobre la salud humana Los serotipos de ECEH, como E. coli O157:H7 y E. coli 0111, producen diarrea que puede ser desde leve y no hemorrágica hasta altamente hemorrágica, siendo esta última indistinguible de la colitis hemorrágica. Entre el 2% y el 7% de los enfermos desarrollan el síndrome hemolítico urémico (SHU), que puede ser mortal y se caracteriza por insuficiencia renal aguda y anemia hemolítica. Los niños menores de cinco años son los que tienen más riesgo de desarrollar el SHU. La infectividad de las cepas ECEH es sustancialmente mayor que la de otras cepas: tan solo 1 000 bacterias pueden causar una infección. ECET produce entero toxinas de E. coli termolábiles o termoestables, o ambas simultáneamente, y es una causa importante de diarrea en países en desarrollo, sobre todo en niños de corta edad. Los síntomas de la infección por ECET son diarrea acuosa ligera, cólicos, náuseas y cefalea (OMS, 2006).35 La infección por ECEP se ha asociado con diarrea no hemorrágica crónica e intensa, vómitos y fiebre en los lactantes. Las infecciones por ECEP son poco frecuentes en países desarrollados, pero comunes en países en desarrollo, donde produce desnutrición, pérdida de peso y retraso del crecimiento en los lactantes. ECEI produce diarrea acuosa y, en INDUSTRIA DE LOS PROCESOS QUIMICOS INORGANICOS 7

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ocasiones hemorrágica; estas cepas invaden las células del colon mediante un mecanismo patógeno similar al de Shigella (OMS, 2 006).  Fuentes y prevalencia Las E. coli enteropatógenas son microorganismos entéricos y las personas son el reservorio principal, sobre todo de las cepas de ECEP, ECET y ECEI. El ganado, como las vacas y ovejas y, en menor medida, las cabras, los cerdos y los pollos, son una fuente importante de cepas de ECEH, las cuales también se han asociado con hortalizas crudas, como los brotes de frijoles. Estos agentes patógenos se han detectado en diversos ambientes acuáticos (OMS, 2 006).  Vías de exposición La infección se asocia con la transmisión de persona a persona, el contacto con animales, los alimentos y el consumo de agua contaminada. La transmisión de persona a persona es particularmente frecuente en comunidades donde hay personas en proximidad estrecha, como en residencias y guarderías (OMS, 2 006).  Relevancia de su presencia en el agua de consumo La transmisión de cepas patógenas de E. coli por medio de aguas recreativas y de agua de consumo contaminada está bien documentada. Recibió gran atención el brote de transmisión por el agua de la enfermedad causada por E. coli 0157:H7 (y Campylobacter jejuni) en la población agrícola de Walkerton, en Ontario, Canadá. El brote tuvo lugar en mayo de 2 000 y ocasionó siete muertes y más de 2 300 casos de enfermedad. El agua de consumo se contaminó por agua de escorrentía que contenía excrementos de ganado. En un PSA, pueden aplicarse las siguientes medidas de control para hacer frente al riesgo potencial de E. coli enteropatógenas: protección de las fuentes de agua bruta de los residuos humanos y animales, tratamiento adecuado y protección del agua durante su distribución. No hay ningún indicio de que la respuesta de las cepas enteropatógenas de E. coli a los procedimientos de tratamiento y desinfección del agua sea diferente de la de otras cepas de E. coli. Por lo tanto, los análisis convencionales de E. coli (o bien de bacterias coliformes termotolerantes) son un índice adecuado de la presencia de serotipos enteropatógenos en el agua de consumo. Esto es cierto, a pesar de que los análisis normales generalmente no detectan las cepas de ECEH (OMS, 2 006). INDUSTRIA DE LOS PROCESOS QUIMICOS INORGANICOS 8

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Usando la técnica de agar en placa sumada a la de microscopía electrónica, Hamilton y Rosenberg (1 991) mostraron que la bacteria E. coli adherida en los bidones de agua embotellada comprados en supermercados, siguió el aumento de números en el biofilm. De la misma manera, cuando estos contenían el agua, presentaron un aumento rápido de cuentas bacteriales. Este aumento sigue un crecimiento típico, que declina hasta que el material orgánico se ha agotado. Si el agua es almacenada a temperatura ambiente, como es común en supermercados y a menudo en la casa, esto no tomará más que unos días para que las concentraciones sean tan altas como 10 4 a 10 5 CFU/mL (CFU 38 = Colony Forming Unit/millilitre, unidad formadora de colonia / mililitro). La refrigeración retarda este proceso (Díaz, 2 007).

V.

Total de bacterias coliformes

 Descripción general El “total de bacterias coliformes” o “coliformes totales” incluye una amplia variedad de bacilos aerobios y anaerobios facultativos, gramnegativos y no esporulantes capaces de proliferar en presencia de concentraciones relativamente altas de sales biliares fermentando la lactosa y produciendo ácido o aldehído en 24 h a 35–37 °C. Escherichia coli y los coliformes termotolerantes son un subgrupo del grupo de los coliformes totales que pueden fermentar la lactosa a temperaturas más altas. Los coliformes totales producen, para fermentar la lactosa, la enzima β-galactosidasa (OMS, 2 006). Tradicionalmente, se consideraba que las bacterias coliformes pertenecían a los géneros Escherichia, Citrobacter, Klebsiella y Enterobacter, pero el grupo es más heterogéneo e incluye otros géneros como Serratia y Hafnia. El grupo de los coliformes totales incluye especies fecales y ambientales (OMS, 2 006).  Valor como indicador El grupo de los coliformes totales incluye microorganismos que pueden sobrevivir y proliferar en el agua. Por consiguiente, no son útiles como índice de agentes patógenos fecales, pero pueden utilizarse como indicador de la eficacia de tratamientos y para evaluar la limpieza e integridad de sistemas de distribución y la posible presencia de INDUSTRIA DE LOS PROCESOS QUIMICOS INORGANICOS 9

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biopelículas. No obstante, hay mejores indicadores para estos fines (OMS, 2 006). El análisis de los coliformes totales, como indicador de desinfección, es mucho más lento y menos fiable que la medición directa de la concentración residual de desinfectante. Además, los coliformes totales son mucho más sensibles a la desinfección que los protozoos y virus entéricos (OMS, 2 006).  Fuentes y prevalencia Las bacterias pertenecientes al grupo de los coliformes totales (excluida E. coli) están presentes tanto en aguas residuales como en aguas naturales. Algunas de estas bacterias se excretan en las heces de personas y animales, pero muchos coliformes son heterótrofos y capaces de multiplicarse en suelos y medios acuáticos. Los coliformes totales pueden también sobrevivir y proliferar en sistemas de distribución de agua, sobre todo en presencia de biopelículas (OMS, 2 006).  Aplicación en la práctica Los coliformes totales se miden generalmente en muestras de 100 ml de agua. Existen diversos procedimientos relativamente sencillos basados en la producción de ácido a partir de la lactosa o en la producción de la enzima β-galactosidasa. Los procedimientos incluyen la filtración del agua con una membrana que después se incuba en medios selectivos a 35–37 °C; transcurridas 24 h, se realiza un recuento de colonias. Otros métodos son los procedimientos de «número más probable» en los que se utilizan tubos de ensayo o placas de micro valoración y pruebas de presencia/ausencia (P/A) (OMS, 2 006).  Relevancia de su presencia en el agua de consumo Debe haber ausencia de coliformes totales inmediatamente después de la desinfección, y la presencia de estos microorganismos indica que el tratamiento es inadecuado. La presencia de coliformes totales en reservas de agua almacenada puede revelar una reproliferación y posible formación de biopelículas, o bien contaminación por la entrada de materias extrañas, como tierra o plantas (OMS, 2 006).

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VI.

LIMITES MAXIMOS PERMISIBLES:

ANEXO I: http://www.digesa.minsa.gob.pe/publicaciones/descargas/reglamento_calidad_a gua.pdf

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VII. MEDIOS DE CULTIVOS PARA LAS BACTERIAS

1. Escherichia coli: Medio de cultivo: E.M.B. Agar Este medio es utilizado para el aislamiento selectivo de bacilos Gram negativos de rápido desarrollo y escasas exigencias nutricionales. Permite el desarrollo de todas las especies de la familia Enterobacteriaceae. Fórmula (en gramos por litro) Peptona

10.0

Lactosa

5.0

Sacarosa

5.0

Fosfato dipotásico

2.0

Agar

13.5

Eosina

0.4

Azul de metileno

0.065

Instrucciones

Suspender 36 g del polvo en un litro de agua destilada. Reposar 5 minutos; mezclar, calentando a ebullición durante 1 o 2 minutos hasta su disolución. Esterilizar en autoclave a no más de 121 C durante 15 minutos. Enfriar a agitando

45

C

y

distribuir

suavemente pH final: 7.2 0.2

2. Vibrio cholerae: Medio de cultivo: TCBS Agar. En el medio de cultivo, el extracto de levadura, la peptona de carne y la tripteína aportan nutrientes para el desarrollo bacteriano. Es este, el medio selectivo más adecuado para el aislamiento de las especies de Vibrio, e inhibidor para la mayoría de las enterobacterias. Esta inhibición INDUSTRIA DE LOS PROCESOS QUIMICOS INORGANICOS 12

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se basa en las altas concentraciones de tiosulfato y citrato, la presencia de bilis y un pH fuertemente alcalino. La degradación de la sacarosa es variable entre las especies de Vibrio y las colonias son verdes para las cepas que no la utilizan y amarillas para aquellas que producen ácido a partir de este azúcar. Esto es debido al viraje del color de los indicadores de pH azul de timol y azul de bromotimol, del color azul al amarillo en medio ácido. Es importante tener en cuenta, que la proporción de sacarosa en el medio está equilibrada de forma tal que no inhiba el crecimiento bacteriano por exceso de ácido. El cloruro de sodio favorece el crecimiento de microorganismos. El tiosulfato de sodio aporta azufre y junto con el citrato férrico permiten la detección de producción de ácido sulfhídrico. Aumentando la concentración de cloruro de sodio y disminuyendo la temperatura de incubación, pueden aislarse especies marinas sin importancia sanitaria. Fórmula (en gramos por litro)

Extracto de levadura

5.0

Peptona de carne

5.0

Tripteína

5.0

Citrato de sodio

10.0

Tiosulfato de sodio

10.0

Bilis de buey

Sacarosa

Instrucciones

Suspender 89 g del polvo en un litro de agua destilada. Calentar hasta ebullición y hervir de 1 a 2 minutos. NO AUTOCLAVAR. Distribuir en placas de Petri estériles.

8.0

20.0

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Cloruro de sodio

Citrato férrico

10.0

1.0

Azul de bromotimol

0.04

Azul de timol

0.04

Agar

15.0

pH final: 8.6 ± 0.2

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VIII. MATERIALES Y METODOS

MATERIALES Y EQUIPOS         

Muestra de agua antes y después de tratar. Instrumental de muestreo Pipetas bacteriológicas de 1 ml y 10 ml estériles Incubadora regulada a 30ºC Contador de colonias Balanza analítica Mechero bunsen Diluyente (solución salina al 0.85%) E.M.B. Agar (0.72g), TCBS Agar (1.78g). para una solución de 20 ml

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IX.

PROCEDIMIENTO EXPERIMENTAL (IDENTIFICACION DE COLIFORMES)



Se prepara una solución salina al 0.8%.



Se prepara la solución patrón: 10 ml de muestra de agua sin tratar



y de agua de mesa, en 90ml en solución salina,(10-1) Luego se toma 1ml de la solución patrón y se le agrega 9ml de



solución salina (10-2), se homogeniza la muestra. Luego se prepara las demás disoluciones.

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Se siembra en una placa petri cada dilución por separado utilizando como medio de cultivo E.M.B. Agar y T.C.B.S Agar.

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Dejamos incubar un promedio de 72 horas.

Pasando

el

tiempo

de

incubación procedemos a leer las placa Selección de Placas

Escoger la placa correspondiente a la dilución de 10-2 y hacer el recuento de todas las colonias. INDUSTRIA DE LOS PROCESOS QUIMICOS INORGANICOS 18

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X.

RESULTADOS MICROBIOLOGICOS

ANALISIS PARA AGENTE MICROBIANO: ESCHERICHIA COLI y COLIFORMES.

Identificación

: AGUA SIN TRATAR

Lugar De Muestreo: LOPU Fecha: 19/11/2014 Lote:

Hora: 11:00 a.m.

T°: 20°C

Muestreado por: JAVIER LUNA

Identificación

: AGUA DE MESA

Lugar De Muestreo: LOPU Fecha: 19/11/2014 Lote:

Hora: 11:00 a.m.

T°: 20°C

Muestreado por: JAVIER LUNA

a) SOLICITUD DE ENSAYO N° 001

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ANALISIS

: MICROBIOLOGICO

MUESTRA

: AGUA SIN TRATAR

FECHA DE MUESTREO

: 19/11/2014

FECHA DE EJECUCION

: 19/11/2014

MUESTRA

AGUA TRATAR

SIN

N° DE COLONIAS E.COLI

N° DE COLONIAS COLIFORMES

77 *10^3

22 *10^3

AGUA DE 0 0 MESA A ANALISIS PARA AGENTE MICROBIANO: VIBRIO CHOLERAE

b) SOLICITUD DE ENSAYO N° 002

ANALISIS

: MICROBIOLOGICO

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MUESTRA

: AGUA DE MESA

FECHA DE MUESTREO

: 19/11/2014

FECHA DE EJECUCION

: 19/11/2014

MUESTRA

AGUA TRATAR

N° COLONIAS SIN

AGUA DE MESA A

XI. -

-

-

DE

1*10^3 0

CONCLUSIONES:

A partir de los resultados obtenidos, podemos asegurar que nuestra agua de mesa se encuentra libre de microorganismos entero patógenos, causantes de enfermedades digestivas. Los resultados muestran que la dosificación de UV mas la ozonización del agua, asegura la limpieza microbiana del agua, dando un producto de calidad. En comparación con los limites máximos permisibles para microorganismos obtenidos de digesa-minsa reglamento de

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calidad de agua, nuestra agua cumple con lo reglamentado en dicha resolución, por tanto es apta para consumo humano.

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