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• Sergio Alvarez

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19/05/2013

Cultivos Auxiliares Profesor: Biólogo Víctor Vera

Universidad Nacional del Callao Facultad de Ingeniería Pesquera y de Alimentos Departamento Académico de Ingeniería Pesquera Asignatura: MARICULTURA Semestre Académico: 2013 A

CONTENIDO 1.¿Porqué auxiliares? 2. Nutrición larval 3. Técnicas de cultivo 4. Conclusiones

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ECLOSERÍA DE PECES MARINOS

12,5 mts

OFICINA

PASAJE Sala de Lavado y Esterilizado

SS.HH SS.HH

Alim ento Vivo

Eclosería

Larvicultura Biensayos

y Sala de Inducción a la reproducción

Acondicionam iento Reproductores

Eclosería

Cultivo Interm edio de Microalgas

Microscopia Cepas Microalgas

Sala

Alm acen de Reactivos,

ALMACEN GENERAL

ECLOSERÍA DE PENEIDOS

25 mts

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PROTOCOLO DE ALIMENTACIÓN (Crustaceos)

ECLOSERÍA DE MOLUSCOS

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larvi 2005

4th fish & shellfish larviculture symposium ghent university, belgium september 5 - 8, 2005

Table II. Installed infrastructure, current and future market of Peruvian hatcheries per specie Actual level per Annual Projected Cost Number of batch of seeds demand demand of of seeds Species production of seeds seeds to 2015 hatcheries (US$x103) 6 (x106) (x106) (x10 ) L.vannamei 1 50 2.2 720-1200 9 600- 10 800 M. rosenbergii 5 0.5-0.7 20 1 10 A. purpuratus 4 8 5-10 120 1200 P. brachypomus 7 0.5 70-100 4 8 C. 7 0.5 70-100 4 8 macropomum V. Vera, J. Bautista, M. Quispe, R. Vicencio and G. Alvarez. 2005. Current Status of Larviculture in Peru. Larvi 2005-Fish & Shellfish Larviculture Symposium, p. 546-549.

2. NUTRICIÓN LARVAL

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ALIMENTACIÓN EXÓGENA

Falta de alimento

Nivel molecular

Nivel tejido

Nivel morfológico

Cascada de acontecimientos

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ALIMENTACIÓN EXÓGENA 2.1 Tamaño adecuado de la presa • Microalgas [2 – 30 µm] • Rotíferos [100 – 340 µm] • Artemia [396 – 515 µm]

2.2 Composición nutricional • Proteínas • Lípidos

2.3 Atractabilidad

• Estímulo químico (aa libres: prolina, alanina, metionina) • Movimiento

2.1 Tamaño adecuado de la presa

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460,0

450,0

Longitud del nauplio de 9 poblaciones de Artemia del Perú (µm)

440,0

430,0

420,0

410,0

400,0

390,0

380,0

370,0

360,0 COL

VIRR

GUAD

MB

CHIM

VENT

HIP

MIL

AREQ

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2.2 Composición nutricional

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Changes in DHA/EPA ratio of rotifers in different algal media

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Intra-strain variability of 20:5n-3 (EPA) content in Artemia. Values represent the range (area percent) and coefficient of variation of data as compiled by Léger et al. (1986). Cyst source

20:5n-3 range (area %)

Coefficient of variation (%)

San Francisco Bay, CAUSA

0.3-13.3

78.6

Great Salt Lake (South arm), UT-USA

2.7-3.6

11.8

Great Salt Lake (North arm), UT-USA

0.3-0.4

21.2

Chaplin Lake, Canada

5.2-9.5

18.3

Macau, Brazil

3.5-10.6

43.2

Bohai Bay, PR China

1.3-15.4

50.5

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HUFA levels in 24-h Super Selco®-enriched Artemia metanauplii during storage at 10 and 25°C

2.3 Atractabilidad

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3. TÉCNICAS DE CULTIVO

3.1 CRITERIOS DE SELECCIÓN Microalgas

• Tamaño celular apropiado • Valor nutricional de la especie • Potencial de cultivo masivo • Facilidad de manejo • Digestibilidad celular

Rotíferos

• Tamaño • Crecimiento poblacional • Resistencia al estrés

Artemias

• Tamaño • Valor nutricional • Eclosionabilidad

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3.2 MICROALGAS Más de 40 especies, aisladas en diferentes partes del mundo y cultivadas como cepas puras:

Chlorella spp. Thalassiosira pseudonana Chaetoceros gracilis Isochrysis spp var. tahitiana Nannochloris atomus

Skeletonema costatum Chaetoceros calcitrans Isochrysis galbana Monochrysis luthery Nannochloropsis oculata

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Aislamiento y mantenimiento de cepas axénicas

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CEPAS

MATRACES

BOTELLAS

Cultivo inicial

Cultivo intermedio BOMBONAS

FLUJO DE PRODUCCIÓN

Cultivo masivo TANQUES

SALA DE MICROALGAS

La sala de cultivo de microalgas produce un promedio de 80 a 220L día-1, distribuidos entre 4 a 12 bombonas de 20L c/u respectivamente. Según los requerimientos los cultivos se masifican a 700L semanales, distribuidos en 2 tanques de 300L (2003)

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Algal production cost as a function of the production capacity for 8 bivalve hatcheries. Filled and unfilled symbols represent data obtained from academic and commercial hatcheries, respectively. The dotted line connects the estimates from one company

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3.3 ROTIFEROS

CICLO DE VIDA

hembra amíctica

PARTENOGENESIS Diploide ameiotico (2n)

estímulo eclosión

huevo amíctico

Mixis Induction Protein

estímulo mixis quiste (2n)

hembra míctica (2n)

SEXUAL fertilización

Mate Reconigtion Protein

mitosis

meiosis

esperma (n)

macho (n)

sin fertilización

huevo Mictico (n)

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CEPARIO STRAIN CODE

SPECIES

ORIGIN

INSTITUTION

SS2

Brachionus rotundiformis

Torreblanca sur (CastellónSpain)

Valencia University

L1

B. plicatilis sensu stricto

Torreblanca sur (CastellónSpain)

Valencia University

TP

Brachionus sp

Bocapan –Tumbes-Peru

IMARPE-LBE

PM

Brachionus sp

SEA WORLD

CICESE (Mexico)

CA

Brachionus sp

Comercial Strain (USA)

Agraria La Molina University

VL

Brachionus sp

Ventanilla-Lima-Peru

IMARPE-LBE

CHL

Brachionus sp

Chilca- Lima-Peru

IMARPE-UIA

PVL

Brachionus sp

Puerto Viejo-Lima -Peru

IMARPE-UIA

MS

Brachionus sp

University of Coquimbo (Chile)

Morro Sama Aquaculture Center-FONDEPES

Caracterización Morfológica

L

SS

S

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CEPARIO

CEPARIO PREPARACION DE AGUA DE MAR ARTIFICIAL Salinidad: 35 y 12 g . L-1 Sal marina artificial de la Marca MARINEX diluida en agua filtrada por osmosis inversa y esterilizada por luz ultravioleta, y ozonizada

SEMBRADO DE MICROALGAS Cepa: Nannochloris maculata Condiciones de cultivo: 35 g . L-1, 20ºC, 3000 Lux Medio de cultivo: F/2 modificado de Guillard

PREPARACION DEL CONCENTRADO DE MICROALGAS Concentracion por centrifugación a 3700 rpm por 20 min Almacenamiento en oscuridad a 4 ºC Concentracion promedio obtenida: 10 . 108 cell . mL-1

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CEPARIO PREPARACION DEL MEDIO DE CULTIVO Conteo y calculo del concentrado de microalgas Dilucion a 10-20 x 106 cell . mL-1

SEMBRADO DE ROTIFEROS Densidad inicial: 2 rot . mL-1 Densidad microalgal: 15 x 106 cell . mL-1 Temperatura: 25 ºC Salinidad: 12 y 35 g . L-1 Iluminacion: 2500 lux

MONITOREO Observacion del estado de condicion del cultivo de rotiferos: • número de huevos por hembra • presencia/ausencia de machos • actividad MOTILITY

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PROTOCOLO DE CULTIVO PARÁMETROS DE CULTIVO

• Temperatura: 25º C • Luz: 2000 lux (01 fluorescente), 24 horas luz (artif - natural) • Aireación : Moderada (60 -100 litros de aire/ minuto/ m³) • Salinidad: 25%0 • pH: 7.5 – 8.5 • Oxígeno : > 2 ppm • Amonio: < 1mg/l

PROTOCOLO DE CULTIVO • Número de Hembras con presencia de Huevos •

•

(huevos totales) debe mantenerse en un 20 -30 % de la población. Observación de Color y Olor: Estos factores indican presencia de agentes contaminantes. El cultivo debe presentar un color claro (ligeramente blanco) y sin presencia de olores extraños. Movilidad: El rotífero debe ser dinámico, con desplazamiento rápido. Un desplazamiento lento indica presencia de contaminación y/o manifestación de alguna enfermedad.

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•

• •

Sistema Semi-continuo En este sistema las siembras se realizan con un intervalo de 08 días, efectuándose a partir del quinto día 04 cosechas sucesivas diarias. Los volúmenes de siembra y cosecha están establecidos en 150 y 350 litros respectivamente. La reinoculación o resiembra se efectúa con un volumen de rotíferos procedentes de la última cosecha sucesiva inmediata, el cual es destinado a un nuevo tanque programado.

• •

•

Sistema Batch En este sistema las siembras y cosechas se efectúan en forma peródica cumpliendo un período de cultivo total de 05 días, al término del cual se cosecha todo el cultivo y parte de ello es destinado a la reinoculación del próximo tanque previamente programado. Los volúmenes de siembra y cosecha están establecidos en 150 y 350 litros respectivamente.

Dosificación • Levadura : • Microalga : Nannochloris) Raciones • Levadura : • Microalga :

1g/millón de rotíferos 30 ml/ litro (Isochrysis ,

04 raciones/ día 01 ración/ día

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Estimuladores de crecimiento y Nutrición Lecitina de Soya: • Se emplea para levantar y acelerar el cultivo, se debe agregar una cápsula (1200 mg) por cada tanque de 350 litros. Microalgas : • Se emplea 30 ml/ litro/ día hasta el final de la cosecha o sólo en su etapa inicial o arranque (16 litros por tanque de 350 litros). Vitamina B-12 : • Se adiciona al tanque a razón de 1.4 µg / ml o también según criterio. Con esto presentan un 70% de incremento en la tasa reproductiva.

Densidades de siembra y cosecha Producción

Siembra

Cosecha

Bajas Medias Altas

100 rot / ml 200 rot / ml 300 - 400 rot / ml

150 - 200 rot / ml 500 - 600 rot / ml 1000 rot / ml

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Tiempo de los cultivos

• El tiempo de los cultivos es variable y depende mucho de las condiciones del medio y del manejo propio.

• El tiempo promedio estimado para un cultivo (350 litros) es de 05 días para un sistema batch y de 8-9 días para un sistema semi-continuo.

• Cultivos a altas densidades tienen un tiempo de duración corta, respecto a los cultivos a bajas densidades.

• Cultivos alimentados con microalgas tienen un tiempo de duración mayor respecto a los cultivos alimentados con levadura.

RECOMENDACIONES

• Se debe renovar la cepa de rotíferos por cada campaña

• •

•

(anualmente) Al momento extraer la cepa, se debe seleccionar el tanque de cultivo que se encuentre en excelentes condiciones (fase exponencial) El manejo del cultivo debe ser realizado por una sola persona con dedicación exclusiva, ya que otros manejos o criterios podrían alterar la producción. El adicionar poquísima o nula aireación al tanque, produce proliferación de fouling.

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Los rotíferos no degradan los ácidos grasos con que son enriquecidos

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Hikari Rotifers Frozen Food * Packed in pure water and available in "no touch" cube packs,

* Bio-Pure frozen foods provide maximum nutrition with minimum mess for you at feeding time.

4, 29 USD / 50 g 81 000 – 417 000 rot. 52, 9 – 10, 3 USD / 106 rot.

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CICLO DE VIDA

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ECLOSIÓN DE QUISTES DECAPSULADOS DE ARTEMIA EN HATCHERY DE LANGOSTINOS

TANQUE DE 5 M3

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ESQUEMA DE BIOENCAPSULACION (Sorgeloos, P. and P. Léger, 1992)

Uso de biomasa enriquecida en el sector de maduración de peneidos Colesterol

Fosfolípidos

Comprende hasta un 22 % de los lípidos totales en el ovario de crustáceos. Precursor en las síntesis de hormonas esteroideas. Calamar, bivalvos.

Mejora la producción de nauplios, la eclosión y la espermatogénesis. Su deficiencia produce retardo en la maduración. Lecitina de soya.

Triacilgliceridos Fuente de energía en huevos y nauplios para afrontar la embriogénesis, la eclosión y el desarrollo naupliar. Se incrementa de 8,3 % a 33, 8 % en ovarios. Aceites de origen marino

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DATOS DE PRODUCCION FUENTE/ORIGEN

BIOMASA

QUISTES

Salgado

1 000 Kg./Ha/mes

24 Kg/Ha/año

Acarau-Brasil

450-600 Kg./Ha/mes

7.5-15 Kg./Ha/mes

MARPESA

2 000 Kg./mes

6 Kg./Ha/mes

YOCKTER S.A.

1 300 Kg./Ha/mes

S.I.

Vietnam

S.I.

1 000 Kg./año

GLS TE (%) 90 80 70 60 50

n/g

BSF TE (%)

240,000 216,000 80 190,000 165,000 140,000

n/g

280,000

CHINA TE (%) 80 70 60 50

n/g

190,000 165,000 145,000 120,000

RUSIA TE (%)

70 60 50 40

n/g

140,000 120,000 100,000 80,000

CIS -INVE TE (%)

75 70

n/g PREMIUM A B C

440 micras

425 micras

+ 440 micras

+ 440 micras

+ 490 micras

270,000 q / g

350,000 q / g

237,000 q / g

200,000 q / g

260,000 q / g

1 Caja / 12 libras

1 Caja / 12 libras

20 Cajas / 12 libras

20 Cajas / 12 libras

Slow DHA metabolism after enrichment

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Biomasa Artemia

Kg. (US Dollar)

Kg. caja

Caja (US Dollar)

No Enriquecida

5.50

50

264.00

Enriquecida OMEGA

9.00

50

432.00

500 kg. Mínimo (10 cajas)

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