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• Valeria Alejandra Gallegos Paredes

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CESFAM Puerto Natales

Manual de Toma de Muestra

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Nombre Enfermera Ignacia Tobar

Cargo Enfermera Encargada de la Unidad Toma de Muestras

Fecha Septiembre 2016 Actualización: Mayo 2019

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INDICE I. II. III. IV. V. VI.

Introducción Objetivo Ámbitos de responsabilidad: Grupo de trabajo Aplicabilidad Contenido. Solicitud de Examen y Rotulado de los Tubos Tubos y Envases utilizados Procedimiento para toma de muestra Punción venosa Punción venosa paciente adulto Punción venosa paciente pediátrico Punción cutánea Norma interna de toma de muestras Instrucciones para la toma de muestra Ayuno del paciente Exámenes de orina aislada Examen de orina de 24 horas Examen tiempo de sangría Exámenes bioquímicos Ácido láctico Ácido úrico Ácido úrico muestra de orina aislada Ácido úrico en orina de 24 horas Glutámico oxaloacético transaminasa (GOT) Glutámico pirúvico transaminasa (GPT) Albúmina Amilasa Amonio Bilirrubina total y directa Calcio Calcio en orina aislada Colesterol total Colesterol HDL Triglicérido Creatincinasa total (CK Total) Creatincinasa total (CK MB) Creatinina Creatinina en orina muestra aislada Clearence de creatinina (Aclaramiento de creatinina)

4 5 5 5 5 6 6 7-9 9 9 9 - 10 10 11 12 13 13 13 14 14 15 15 16 17 18 19 19 20 21 22 23 24 25 26 27 28 29 30 31 32 33 2

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Electrolitos Electrolitos orina de 24 horas Fosfatasa Alcalina (ALP) Fósforo Gama Glutamil Transpéptidasa (GGT) Glucosa Glucosa orina muestra aislada Hemoglobina Glicosilada (HBA1C) Hierro Lactato Deshidrogenasa (LDH) Lipasa Magnesio Microalbuminuria Aislada Nitrógeno Ureico Sanguíneo (BUN) Nitrógeno Ureico orina muestra aislada Orina Completa Proteínas Totales Proteínas Totales orina muestra aislada Proteína C Reactiva (PCR) Test de Tolerancia a la Glucosa y Curva de Insulina Exámenes Hematológicos Hemograma Velocidad Sedimentación Globular (VHS) Exámenes de Coagulación Factor V Fibrinógeno Tiempo de protrombina (TP) Tiempo de Tromboplastina Parcial Activa (TTPA) Exámenes de Inmunoquimica Antígeno Prostático Específico Total (PSA Total) Hormona Gonadotrofina Corionica (HGC) Hormona Tetrayodotironina Libre (T4 LIBRE) Hormona Tiroestimulante (TSH) Hormona Triyodotironina (T3) Exámenes Parasitológicos Hemorragias ocultas o Test de Weber Identificación macroscópica de parásitos (diagnóstico macroscópico de parásitos) Parasitológico seriado de deposiciones (PSD) Test de GRAHAM

Examen VDRL Referencias bibliográficas

34 35 36 37 38 39 40 41 42 43 44 45 46 47 48 49 50 51 52 53– 55 56 56–57 58 59 59 60 61 62 63 63 64 65 66 67 68 68 69 70 71 72 73 - 74

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I. INTRODUCCION La toma de muestra, es una herramienta primordial para el área médica, ya que por medio de éste se diagnostican distintas patologías y además se realizan estudios para establecer el tipo de tratamiento que se debe administrar al paciente, al igual que el seguimiento del mismo. Es por este motivo la importancia de confeccionar un manual de toma de muestra, como un elemento de apoyo para nuestros usuarios internos y externos, que participan en la etapa preanalítica de un examen, la cual es fundamental en la obtención de resultados confiables y oportunos. Esto no solo depende de un procedimiento analítico correcto, sino también de una correcta toma de muestra y junto a esto una serie de factores como: preparación del paciente, horario de punción, traslado, conservación de la muestra, identificación correcta, entre otros. Es por esto, que en el presente manual se delimitaran todos los pasos a seguir para una correcta toma de muestra.

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II.

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OBJETIVO

Entregar información fidedigna y actualizado sobre:  Conocer el funcionamiento general del Laboratorio.  Conocer los exámenes disponibles tanto en rutina en el CESFAM de Puerto Natales.  Conocer las normas del laboratorio como las condiciones del paciente para realizar examen.  Tipo de frasco o tubo, utilización de anticoagulante, etc.  Cantidad de sangre requerida.  Datos complementarios del paciente  Como obtener de manera correcta la muestra.  Conocer el horario de recepción de muestras.  Comprobar la correcta rotulación de los frascos y adjuntar la orden de solicitud al ser enviadas las muestras al laboratorio.  Informar al personal encargado del transporte de las muestras, sobre las medidas de seguridad en el manejo de estas  Al recibir el informe de los resultados controlar los resultados, y al presentar alteraciones citar al usuario para un control de morbilidad. III.

AMBITOS DE RESPONSABILIDAD:

Enfermera responsable de la unidad de toma de muestra, del CESFAM de Puerto Natales. IV.

GRUPO DE TRABAJO

Enfermera a cargo de toma de muestra, administrativo de rayen (encargado del registro digital de las tomas de muestra diaria), TENS (en conjunto con enfermera realizan la toma de muestra). V.

APLICABILIDAD

Ante toda solicitud de examen prescrita por un profesional de la salud.

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VI.

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CONTENIDO.

SOLICITUD DE EXAMEN Y ROTULADO DE LOS TUBOS Solicitud de Examen Consiste en un documento normalizado que emite el profesional solicitante y es remitido al Laboratorio o a la Sala de Toma de Muestras para la realización de los análisis. La solicitud de examen debe completar los siguientes antecedentes:  Nombres del paciente (2)  Apellidos del paciente (2).  Nº de Rut.  Edad del paciente  Diagnóstico probable y diagnostico actual (si los posee).  Exámenes solicitados.  Fecha de solicitud.  Nombre y firma del profesional solicitante.  Antecedentes de tratamiento si corresponde.  En el caso de Baciloscopía agregar dirección y teléfono.  En el caso de realizar un examen de test de Elisa, se debe tener consentimiento, consejería y resguardo con el paciente, (se les pide dos direcciones y numero de contacta), confidencialidad total. Rotulado de los Tubos Los tubos o frascos deben ser rotulados con: 1. 2. 3.

Nombre completo del paciente. Nº de Rut. Numero de tubo, (orden de llegada).

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Tubos y Envases utilizados Frascos:

Material de estudio

Orina

Deposición

Color Tapa o Envase

Aditivo

Utilización

Frasco Estéril

Orina Completa, Urocultivo

Frasco con PAF, para fijación de parásitos

Parasitológico seriado de deposición.

Deposición

Ninguno

Leucocitos fecales, Test de Hemorragias oculta (Guayaco o Weber)

Cultivo Corriente

Medio Stuart

Cultivo de Herida, Abscesos.

Coprocultivo

Medio Cary Blair

Cultivo de deposición.

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Tubos: Material de estudio

Color Tapa o Envase

Plasma

Aditivo

Utilización

EDTA K2

Hematología e Inmunohematología

o EDTA K3 Plasma

Inhibidor de la Glicolisis (Fluoruro de Sodio) y Anticoagulante (Oxalato de Potasio)

Glucosa, PTGO

Plasma

Citrato de Sodio al 3.2% proporción 1/9

Pruebas de Coagulación

Suero

Activador del Coagulo con gel separador

Químico

Recomendaciones: La secuencia de llenado de los tubos es la siguiente:      

Tubos sin anticoagulante: Suero Tubos con anticoagulantes. Tubo con Citrato de Sodio al 3.2% Tubo con EDTA K2 o EDTA k3 Tubo Plasma con Inhibidor de la Glicolisis, Glucosa o PTGO Los tubos con anticoagulante se deben mezclar por inversión suave. 8

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El orden de llenado de los tubos mejora la calidad de las muestras, la exactitud y finalidad de los resultados. La estandarización de las técnicas de extracción permite trabajar con criterios de calidad. PROCEDIMIENTO PARA TOMA DE MUESTRA

1)

PUNCION VENOSA

OBJETIVO: Obtener a través de una punción una muestra de sangre venosa, adecuada en cantidad y calidad, para su posterior análisis en el laboratorio. Responsables de la ejecución Enfermera Ayudante enfermería (TENS) Materiales Guantes de procedimientos Antiséptico para la piel (Alcohol 70º) Tórulas limpias Tubos según el examen Aguja múltiple Camisa Holder Jeringa y aguja Mariposa según necesidad. Parche venopunción o cinta quirúrgica Riñón limpio o bandeja limpia Torniquete o ligadura Caja desecho corto punzante Receptáculo para desechos Pinza Kelly 2) PACIENTE ADULTO       

Explicar al paciente claramente el procedimiento. Verificar los datos y exámenes solicitados en la solicitud médica. Tubos rotulados (nombre y dos apellidos). Lavarse las manos. Colocarse los guantes de procedimiento. Colocar el torniquete en el brazo, 7 a 10 cm. por sobre el lugar donde se puncionará, para favorecer el llene venoso. Pedir al paciente que empuñe la mano. 9

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            

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Localizar una vena adecuada, que sea visible y fácilmente palpable. Aplicar antiséptico con movimiento rotatorio del centro hacia la periferia, esperar que la piel esté seca. Estirar la piel, con la mano no dominante, para fijar la vena. Canalizar la vena con la aguja en la misma dirección de ella y, con el bisel hacia arriba y en ángulo de 45°. Soltar el torniquete, una vez canalizada la vena, y proceder a llenar los tubos correspondientes. Colocar un algodón seco sobre la zona puncionada y retirar la aguja aplicando presión suave. Dejar el algodón e instruir al paciente para mantener la presión por un par de minutos. Llenar los tubos, vaciando la sangre por las paredes de éstos (en caso de usar jeringa). Mezclar suavemente (8 veces) los tubos que contengan anticoagulante y aditivos. Colocar parche venopunción u otro en el sitio de punción. Descartar el material según norma. Retirarse los guantes. Lavarse las manos. Realizar registro correspondiente en solicitud médica (fecha, hora e identificación de quien tomó la muestra), y enviar las muestras con su respectiva solicitud al laboratorio. 3)

PACIENTE PEDIÁTRICO    

        

Verificar las órdenes de exámenes con los datos del paciente. Llamar al paciente verificando tubos y solicitud médica. Explicar el procedimiento al paciente en un lenguaje entendible de acuerdo a su edad y solicite su cooperación. Explicar el procedimiento a los padres o acompañantes y solicitar su cooperación al menos a uno, con el fin de inmovilizar al paciente, siempre y cuando su condición de salud y estabilidad emocional no interfiera con el procedimiento. Si el paciente no coopera, según su edad, debe asistir en el procedimiento al menos 3 personas. Reunir el material necesario. Lavarse las manos. Usar guantes de procedimientos. Elevar la extremidad alrededor de 5 cm. para facilitar el llenado de la vena. Ligar, seleccionar el sitio de la punción y limpiar la piel con tórula con alcohol de 70°, desde el centro a la periferia, con movimientos rotatorios. Una vez seca la piel puncionar en dirección de la vena con el bisel hacia arriba en un ángulo de 30° con mariposa 23 ó 25G según necesidad. Lugo de llenar los tubos. Dejar de presionar el sitio de punción sólo una vez que se ha verificado el cese del sangramiento, protéjalo con una tórula y tela adhesiva hipoalergénica. Descartar el material corto punzante y los desechos según la norma. Retirarse los guantes. 10

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  

4)

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Lavarse las manos. Realizar registro correspondiente en orden médica (fecha, hora e identificación de quien tomó la muestra), y enviar las muestras con su respectiva orden al laboratorio. En caso de paciente ambulatorio, entregue documentos correspondientes al paciente e informar fecha y lugar de retiro de los resultados. PUNCION CUTANEA

Para Monitoreo de Exámenes (Ej. glucosa, colesterol, etc.) OBJETIVO: Obtener una gota de sangre, a través de punción cutánea, para determinar en forma inmediata el valor del examen solicitado (glicemia, colesterol, hematocrito, etc.). Responsable de la ejecución Enfermera Ayudante enfermería (TENS) Materiales Fotómetro de reflexión (Ej. Glucómetro) Tira reactiva. Tórulas secas o humedecidas con agua. Percutor y lancetas. Procedimiento  Explicar al paciente claramente el procedimiento.  Lavarse las manos.  Usar guantes de procedimientos.  Preparar el equipo para el procedimiento según las instrucciones del fabricante.  Seleccionar la zona a puncionar según las condiciones del paciente. Preferentemente seleccionar los dedos de las extremidades superiores.  Limpiar la zona con una tórula con alcohol.  Realizar la punción en el costado del dedo, obtenga una gota de sangre adecuada y deposítela en la zona indicada de la tira. Verifique que la cantidad es suficiente para realizar la lectura.  Eliminar los materiales, limpie el equipo y guárdelo.  Retirarse los guantes.  Lavarse las manos.  Registrar el resultado obtenido en la ficha clínica o en orden médica respectivamente. Observaciones No comprimir el sitio de punción para obtener mayor flujo.

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NORMA INTERNA DE TOMA DE MUESTRAS 1.- Correcto lavado de manos al ingresar y retirarse de la unidad, entre cada paciente, y en caso de contacto con algún fluido. 2.-Uso de uniforme completo correspondiente, lo cual incluye delantal, pantalón y zapatos o zapatillas cerradas sin abertura en la parte superior. 3.-No se debe usar: joyas en manos y muñecas, aros largos, pelo suelto, uñas largas y pintadas. 4.-Al rotular debe ir nombre y dos apellidos, rut y número de orden, además no debe tener errores ni ser “borroneado”. 5.- Siempre llamar al usuario por su nombre y dos apellidos, verificar siempre el rut antes de tomar la muestra. 6.- En cada orden debe indicar las iniciales de quien toma la muestra y si corresponde a muestra de orina describirlo. 7.-En ordenes tipo VIH y hormonales registrar dos direcciones y dos teléfonos, además no deben tener número de orden. Los tubos irán rotulados con el código de la orden. 8.- Mantener en orden área limpia y área sucia. 9.- Uso de guantes de procedimiento en ambas manos para tomar la muestra venosa. 10.-Uso de guantes de procedimiento en manejo de frascos de orina y deposiciones. El usuario es quien manipula los frascos hasta introducirlos al dispositivo de recolección de muestras. 11.-En caso de baciloscopías, se debe ventilar toda la unidad, usar guantes y mascarilla. 12.-Retiro de material cortopunzante se debe realizar siempre con pinza Kelly. 13.-Desinfectar palangana con alcohol y torulas de algodón entre cada usuario. 14.-Respetar orden numérico de tubos en las bandejas. 15.- Uso de guantes de procedimiento al ir a dejar las muestras al laboratorio. 16.-Al finalizar toma de muestra, siempre se debe: o o o o

Lavar las palanganas, llevarlas a esterilización y traer a la unidad 4 palanganas esteriles. Reponer insumos como jeringas, mariposas, torulas, entre otros. Dejar ordenada la unidad. Un TENS siempre debe ir a dejar las muestras al laboratorio, junto con la planilla diaria de pacientes atendidos. 12

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INSTRUCCIONES PARA LA TOMA DE MUESTRA AYUNO DEL PACIENTE Para la toma de muestra de los exámenes que necesitan ayuno, el paciente previamente debe seguir las siguientes instrucciones: I. II. III. IV. V. VI.

No debe ingerir alimentos sólidos o líquidos (excepto agua) durante 8 a 12 horas antes del examen. El día anterior a la toma de la muestra, no debe beber alcohol, fumar ni comer después de las 22 horas. No debe esperar de pie, ni cargar objetos pesados mientras espera. Los pacientes no deben tomar sus medicamentos hasta después de obtenida la muestra a menos que el médico tratante indique otra cosa. Los pacientes diabéticos deben indicar su condición al momento de presentarse a la toma de muestra. Antes de la toma de la muestra no debe caminar más de 500 metros, en caso contrario debe descansar sentado por lo menos 20 minutos.

EXÁMENES DE ORINA AISLADA Para la correcta interpretación de los resultados es muy importante su colaboración y es fundamental que usted recolecte la primera orina de la mañana: No forzar la obtención de la muestra mediante ingestión de líquidos ya que esto diluye la orina, alterando el recuento de microorganismos. Antes de la recolección de la orina debe realizar un aseo de la zona genital. 

Paciente mujer: Lave los genitales, separando cuidadosamente los labios mayores, con un algodón embebido en agua y limpiando de adelante hacia atrás una sola vez. Repita el procedimiento con otro algodón. Enjuague con abundante agua y seque la zona con un paño seco y limpio. Evite recolectar la muestra si está en su período menstrual.



Paciente hombre: Retraiga la piel anterior del pene (prepucio) y lave la zona con algodón embebido en agua jabonosa. Enjuague con agua y no toque la zona aseada. Seque con un paño seco y limpio. Recolección de orina Luego del aseo genital, elimine el primer chorro de orina y sin cortar la micción, recolecte el segundo chorro de orina en un frasco o tubo (estériles para Urocultivo). Llene más de la mitad y tápelo .Escriba su nombre y dos apellido en el tubo.

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EXAMEN DE ORINA DE 24 HORAS Durante el período de recolección, el paciente debe beber líquidos en forma normal a menos que haya recibido otra indicación. No debe beber alcohol. Los pasos a seguir son los siguientes:  

 

El día previo al examen, a una hora determinada, de preferencia al levantarse, debe vaciar la vejiga orinando a fondo y desechar esa orina. Recoger, a partir de ese momento, en un recipiente (botella) limpio y seco, toda la orina que elimine durante las 24 horas siguientes, incluyendo la primera orina de la mañana siguiente. - Mantener refrigerada la orina que se ha sido recolectada. Una vez finalizada la recolección identificar cada uno de los envases. La identificación debe contener el nombre y los dos apellidos escritos con letra legible. Debe llevar toda la orina recolectada a la Toma de Muestra del Laboratorio Central, el mismo día que terminó la recolección. Antes de 2 horas de la última recolección. No contaminar la orina con papel higiénico, deposiciones o flujo menstrual. En este último caso, la recolección de orina debe realizarse una vez finalizado el período menstrual.

EXAMEN TIEMPO DE SANGRÍA  

Suspender por 7 días aspirinas. Tomar un desayuno liviano.

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EXÁMENES BIOQUÍMICOS ÁCIDO LÁCTICO     

Tipo de muestra: sangre. Método: enzimático colorimétrico. Intervalo de referencia adultos: 4.5 – 19.8 mg/dl. Tipo de tubo: tapa roja o verde Volumen necesario: 4 ml, o el volumen que indique el tubo. Observaciones: Debe tener reposo, por lo menos 30 minutos antes de la prueba. Evitar el ejercicio intenso el día antes de la prueba. Se requiere ayuno de mínimo 8 horas. Condiciones de transporte: Los tubos se deben transportar, tapados, en posición vertical, en un recipiente y dentro de un contenedor sólido a prueba de derrames. Evitar la agitación para prevenir la hemólisis. Tiempo de transporte 4 horas desde la toma de muestra. Utilidad diagnostica: Los valores elevados son indicativos de hipoxia celular, se produce en patologías como alcoholismo, coma hepático, shock, hipernatremia, diabetes mellitus, neoplasias y peritonitis. Se ve disminuido en hiponatremia. Limitaciones: La hemólisis invalida la prueba. Fármacos que interfieren: epinefrina (altas dosis), etanol, fructosa, glucosa, metilprednisolona, terbutalina, provocan un aumento en la concentración de lactato. Azul de metileno, morfina provocan una disminución.

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ÁCIDO ÚRICO   

Tipo de muestra: sangre. Método: colorimétrico, uricasa. Intervalo de referencia adultos: Hombres: 3.5 - 7.2 mg/dl Hombres: 3.4 - 7.0 mg/dL (adultos)(Hospital Pto. Natales)

Mujeres: 2.6 - 6.0 mg/dl Mujeres: 2.4 – 5.7 mg/dL (adultos)  

Tipo de tubo o contenedor: tubo tapa roja o verde. Volumen mínimo necesario: 4 a 2 ml según indique el tubo. Observaciones:



Ayuno de 8 horas antes de la prueba. Evitar el consumo de café y otros alimentos ricos en cafeína.

Condiciones de transporte: Los tubos se deben transportar, tapados, en posición vertical, en un recipiente y dentro de un contenedor sólido a prueba de derrames. Evitar la agitación para prevenir la hemólisis. Tiempo de transporte 4 horas desde la toma de muestra. Utilidad diagnóstica: 

Se utiliza para el diagnóstico y tratamiento de numerosos desórdenes renales y metabólicos, entre los que se incluyen gota, leucemia, psoriasis, falla renal, mieloma múltiple, linfoma, policitemia, toxemia de embarazo, entre otros.

Limitaciones: Muestras lipémicas y muy hemolizadas invalidan la prueba. Fármacos que interfieren: bloqueadores badrenérgicos, cisplatino, corticosteroides, furosemida, tiazidas, epinefrina, etanol, hidroxiurea, teofilina, cafeína producen un aumento del ácido úrico sérico.

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ACIDO ÚRICO MUESTRA DE ORINA AISLADA     

Tipo de muestra: orina. Método: Uricasa. Intervalo de referencia adultos: 37 – 92 mg/dl Tipo de tubo o contenedor: Frasco tapa roja entregada por some central del CESFAM. Volumen mínimo necesario: 10 ml según indique el tubo.

Observaciones: El usuario, debe traer la orina de su domicilio, se le informa que ésta debe ser la primera orina de la mañana. Mujeres: Se sugiere que no cursen con su período menstrual o leucorrea al momento de recolectar la orina, en caso contrario deben cubrir la zona vaginal con un tapón de algodón para evitar que la orina se contamine. Antes de la recolección de la orina se procede a un aseo con agua y jabón de la zona que rodea el meato urinario, posteriormente se seca la zona evitando que queden restos de fibra en la zona. Se elimina el primer chorro de orina y se recolecta la porción media en el recipiente, la porción final también se elimina. Hombres: Se le indica que retraiga el prepucio para lavar con agua y jabón la porción distal del pene que rodea el meato urinario, posteriormente se seca la zona evitando que queden restos de fibra en la zona. Se elimina el primer chorro de orina y se recolecta la porción media en el recipiente, la porción final también se elimina. Condiciones de transporte: Los frascos deben transportar en posición vertical, tapados, en un contenedor o gradilla a temperatura ambiente. Utilidad diagnóstica: Se utiliza para valorar el origen hiper-uricosúrico de los cálculos eliminados en la orina. Limitaciones: Medicamentos que alteran el resultado: cafeína, aminofilina y vitamina c.

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ÁCIDO ÚRICO EN ORINA DE 24 HORAS     

Tipo de muestra: orina de 24 horas. Método: uricasa. Intervalo de referencia adultos: 200 – 1000 mg/24 horas. Tipo de tubo o contenedor: Frasco tapa roja entregada por some central del CESFAM. Volumen mínimo necesario: 10 ml según indique el tubo

Observaciones: La recolección de la orina debe ser completa. Durante el período de recolección, el paciente debe beber líquidos en forma normal a menos que haya recibido otra indicación. No debe beber alcohol. Los pasos a seguir son los siguientes: 1. El día previo al examen, a una hora determinada, de preferencia al levantarse, debe vaciar la vejiga orinando a fondo y desechar esa orina. 2. Recoger, a partir de ese momento, en un recipiente limpio y seco, toda la orina que elimine a lo largo del día, la noche siguiente, incluyendo la primera orina de la mañana siguiente al levantarse. 3. Mantener la orina que se va recolectando refrigerada (en lo posible). Una vez finalizada la recolección identificar cada uno de los envases. Condiciones de transporte: Los frascos deben transportar en posición vertical, tapados, en un contenedor o gradilla a temperatura ambiente. Utilidad diagnóstica: Se utiliza para valorar el origen hiper-uricosúrico de los cálculos eliminados en la orina. Limitaciones: Medicamentos que alteran el resultado: cafeína, aminofilina y vitamina C.

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GLUTÁMICO OXALOACÉTICO TRANSAMINASA (GOT) GLUTÁMICO PIRÚVICO TRANSAMINASA (GPT)   

Tipo de muestra: sangre Método: ifcc modificado, sin piridoxalfosfato. Enzimático uv. Intervalo de referencia adultos: GOT: Hombres: 5 - 34 u/l hombres: < 37 u/l Mujeres: 5 - 34 u/l mujeres: < 31 u/l

 

GPT: Hombres: 0 - 55 u/l hombres: < 41 u/l Mujeres: 0 - 55 u/l mujeres: < 31 u/l

Tipo de tubo o contenedor: tubo con gel activador de la coagulación, tapa roja o verde. Volumen mínimo necesario: 2 a 4 ml según indique el tubo.

Observaciones: Ayuno mínimo de 8 horas antes de la prueba. Condiciones de transporte: Los tubos se deben transportar tapados, en posición vertical, en un recipiente o gradilla, dentro de un contenedor sólido a prueba de derrames y a temperatura ambiente. Evitar la agitación para prevenir la hemólisis, tiempo de transporte: hasta 4 horas desde la toma de muestra. Utilidad diagnóstica: Para el diagnóstico, pronóstico y valoración de afecciones hepáticas. Estas enzimas se elevan significativamente en afecciones agudas, como en hepatitis y necrosis hepática de diferente etiología y en menor nivel en cirrosis, ictericia obstructiva, carcinoma metastásico, congestión hepática y colestasia intrahepática. Puede haber elevación ligera en IAM y pancreatitis aguda, aunque la elevación de la GOT en el IAM es más significativa. Limitaciones: La hemólisis y la lipemia invalidan las pruebas. Fármacos que interfieren: isoniazida, fenotiazinas, eritromicina, esteroides anabólicos opiáceos y salicilatos producen un aumento de GOT en el suero.

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ALBÚMINA      

Tipo de muestra: sangre. Método: colorimétrico púrpura de bromo cresol Intervalo de referencia: Adultos: 60 años 3.4 – 4.8 g/dl Tipo de tubo o contenedor: tubo con tapa roja o verde. Volumen mínimo necesario: 2 a 4 ml según indique el tubo.

Observaciones: El paciente debe venir en ayuna de 8 horas antes de la prueba. Consumir una dieta baja en grasas el día antes del examen. Condiciones de transporte: Los tubos se deben transportar tapados, en posición vertical, en un recipiente o gradilla, dentro de un contenedor sólido a prueba de derrames y a temperatura ambiente. Evitar la agitación para prevenir la hemólisis, tiempo de transporte hasta 4 horas desde la toma de muestra. Utilidad diagnóstica: Es una determinación aproximada de las dos fracciones sanguíneas, aumenta en edemas y disminuye en cirrosis, colitis ulcerosa, deshidratación, daño renal, inflamación, infección entre otras. Limitaciones: Muestras lipémicas, ictéricas y muy hemolizadas invalidan la prueba. Fármacos que interfieren: Progesterona produce un aumento de la albúmina. Alopurinol, clorpropamida, cisplatino, estrógenos, ibuprofeno, nitrofurantoína, anticonceptivos orales, fenitoina, prednisona, ácido valproico, fenilbutazona, producen una disminución de la albúmina.

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AMILASA   

Tipo de muestra: sangre. Método: degradación de sustrato. Intervalo de referencia adultos: < 70 años 25 – 125 u/l > 70 años 20 – 170 u/l

 

28 – 100 U/L

Tipo de tubo o contenedor: tubo con tapa roja o verde Volumen mínimo necesario: 2 a 4 ml según indique el tubo.

Observaciones: Ayuno de 8 horas antes de la prueba. No ingerir alcohol por lo menos 24 horas antes de la prueba. Condiciones de transporte: Los tubos se deben transportar tapados, en posición vertical, en un recipiente o gradilla, dentro de un contenedor sólido a prueba de derrames y a temperatura ambiente. Evitar la agitación para prevenir la hemólisis tiempo de transporte hasta 4 hrs desde la obtención de la muestra. Utilidad diagnóstica: Su determinación es útil en el diagnóstico de pancreatitis aguda, elevándose sus niveles 2 horas después de inicio de ésta, alcanzando el máximo a las 24 horas y recuperando sus niveles normales 2 a 3 días después. Aumenta también en edemas, cáncer pancreático, pulmonar, cetoacidosis diabética, colecistitis aguda, embarazo ectópico, entre otras. Disminuye en absceso hepático, caquexia, cirrosis, colitis ulcerosa, deshidratación, daño renal, alcoholismo, fibrosis quística avanzada, toxemia del embarazo, entre otras. Limitaciones: Muestras lipémicas y muy hemolizadas invalidan la prueba. Fármacos que interfieren: alcohol, captopril, cimetidina, corticosteroies, estrógenos, furosemida, ibuprofeno, indometacina, ácido mefenámico, metildopa, nitrofurantoína, anticonceptivos orales, sulfonamidas, tetraciclina, ácido valproico, producen un aumento de la amilasa sérica.

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AMONIO     

Tipo de muestra: sangre Método: determinación enzimática. Intervalo de referencia adultos: 31 – 123 µg/dl Tipo de tubo o contenedor: Tubo con anticoagulante EDTA, tapa lila Volumen mínimo necesario: 2 a 4 ml, o el volumen que indique el tubo.

Observaciones: Se requiere ayuno. No fumar 8 a 10 horas antes de la prueba. Evitar el estrés y el ejercicio extenuante antes de la prueba. Condiciones de transporte: Los tubos se deben transportar tapados, en posición vertical, en un recipiente o gradilla, dentro de un contenedor sólido a prueba de derrames y a temperatura ambiente. Evitar la agitación para prevenir la hemólisis tiempo de transporte hasta 4 hrs desde la obtención de la muestra. Utilidad diagnóstica: Se observa concentraciones elevadas de Amonio en insuficiencias hepáticas graves, como en el síndrome de Reye, la hepatitis vírica o la cirrosis. Limitaciones: La hemólisis invalida la prueba. Fármacos que interfieren: sales de amonio, barbitúricos, furosemida, tiazidas, acetazolamida, etanol, ácido valproico producen aumento del amonio en sangre. Kanamicina, lactulosa, levodopa, neomicina, cigarrillo, producen una disminución del amonio en sangre.

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BILIRRUBINA TOTAL Y DIRECTA   

Tipo de muestra: sangre Método: colorimétrico. Sal de diazonio Intervalo de referencia adultos: Bilirrubina total: 0.2 – 1.2 mg/dl. 35 mg/dl Mujeres: > 40 mg/dl

 

Tipo de tubo o contenedor: tubo con gel activador de la coagulación, tapa roja o verde. Volumen mínimo necesario: 2 a 4 ml, según indique el tubo.

Observaciones: Ayuno de 8 horas antes de la prueba. No ingerir alcohol 24 horas antes de la prueba. Consumir una dieta estable en colesterol tres semanas antes de la prueba. La cena anterior a la prueba debe ser con bajo contenido graso y no contener alimentos ricos en colesterol. Condiciones de transporte: El tubo debe ser transportado tapado, en posición vertical, en un recipiente o gradilla, dentro de un contenedor sólido a prueba de derrames y a temperatura ambiente. Evitar la agitación para prevenir la hemólisis. Utilidad diagnóstica: Medición del riesgo de ateroesclerosis e hipercolesterolemia, enfermedad coronaria entre otros. Se asocia a exámenes como colesterol total, colesterol ldl y triglicéridos. Limitaciones: la hemólisis y la lipemia invalidan la prueba.

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TRIGLICÉRIDOS     

Tipo de muestra: sangre Método: gpo-pad. Intervalo de referencia adultos: 20 años 40 – 150 u/l (adultos) Mujeres > 15 años 40 – 150 u/l (adultos)

 

Tipo de tubo o contenedor: tubo con gel activador de la coagulación, tapa roja o verde. Volumen mínimo necesario: 2 a 4 ml, según indique el frasco.

Observaciones: Ayuno de 10 a 12 horas antes de la prueba. Condiciones de transporte: El tubo debe ser transportado tapado, en posición vertical, en un recipiente o gradilla, dentro de un contenedor sólido a prueba de derrames y a temperatura ambiente. Evitar agitar para prevenir hemolisis. Utilidad diagnóstica: La fosfatasa alcalina se encuentra en el hueso, hígado, intestino y placenta, se eleva durante períodos de crecimiento óseo, enfermedad hepática y obstrucción de las vías biliares, en colestasis intra o extrahepática (hepatitis, cirrosis biliar, drogas hepatotóxicas, colédoco litiasis, carcinoma de la cabeza del páncreas, carcinoma hepático), en enfermedades óseas como osteítis, raquitismo, osteomalacia, fracturas de consolidación, tumores osteoblásticos e hiperparatiroidismo. También puede elevarse en insuficiencia cardiaca, mononucleosis infecciosa, perforación del intestino y septicemia. Limitaciones: La hemólisis y la lipemia invalidan la prueba. La falta de ayuno o la exposición de la muestra a temperaturas ambiente por tiempos prolongados, producen resultados falsamente elevados.

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FÓSFORO     

Tipo de muestra: sangre. Método: fosfomolibdato uv Intervalo de referencia adultos: 2.3 – 4.7 mg/dl Tipo de tubo contenedor: tubo con gel activador de la coagulación, tapa roja o verde. Volumen mínimo necesario: 2 a 4 ml, según indique tubo.

Observaciones: Ayuno de 8 horas antes de la prueba. Condiciones de transporte: El tubo debe ser transportado tapado, en posición vertical, en un recipiente o gradilla, dentro de un contenedor sólido a prueba de derrames y a temperatura ambiente. Evitar agitar para prevenir hemolisis. Utilidad diagnóstica: El fósforo inorgánico constituye solo un tercio del fósforo disponible. Es importante para la formación ósea, almacenamiento y liberación de energía, amortiguamiento urinario acido base y en el metabolismo de los carbohidratos. Aumenta en acidosis respiratoria y láctica, cetoacidosis diabética, enfermedad renal aguda o crónica entre otras; Disminuye en alcalosis respiratoria, alcoholismo agudo, desnutrición, diálisis, entre otras. Limitaciones: La hemólisis y la lipemia invalidan la prueba. Evitar el consumo excesivo de antiácidos y laxantes/enemas que contengan fosfato de sodio. Los valores séricos varían a lo largo del día, siendo los más bajos en la mañana.

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GAMA GLUTAMIL TRANSPEPTIDASA (GGT)   

Tipo de muestra: sangre. Método: enzimático colorimétrico. Intervalo de referencia adultos: Hombres: 12 – 64 u/l (adultos). 8 – 61 U/L (Adultos). Mujeres: 9 – 36 U/L (Adultos). 5 – 36 U/L (Adultos).

 

Tipo de tubo o contenedor: Tubo con gel activador de la coagulación, tapa roja o verde. Volumen mínimo necesario: 2 a 4 ml, según indique tubo.

Observaciones: Ayuno de 8 horas antes de la prueba y abstinencia de alcohol 24 horas antes de la prueba. Condiciones de transporte: El tubo debe ser transportado tapado, en posición vertical, en un recipiente o gradilla, dentro de un contenedor sólido a prueba de derrames y a temperatura ambiente. Evitar agitar para prevenir hemolisis. Utilidad diagnóstica: Se observan aumentos importantes en enfermedades hepáticas obstructivas y obstrucción post hepática, colestasis intrahepática, cirrosis biliar primaria, atrasia infantil de vías biliares. Aumentos moderados cursan en lesiones ocupantes de espacio y mononucleosis infecciosa; detección de alcoholismo y colestasis durante o inmediatamente después de la gestación. Limitaciones: La hemólisis, bilirrubina y la lipemia invalidan la prueba. Los medicamentos que aumentan la GGT son: fenitoína, fenitoína sódica, fenobarbital, glutetimida y metacualona.

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GLUCOSA   

Tipo de muestra: sangre. Método: enzimático (hexoquinasa).uv Intervalo de referencia adultos: < 60 años: 70 – 105 mg/dl > 60 años: 80 – 115 mg/dl > 70 años: 80 – 110 mg/dl

 

Tipo de tubo o contenedor: Tubo tapa ploma para glucosa control (anticoagulante Fluoruro de sodio) Volumen mínimo necesario: 2 a 4 ml, según indique tubo.

Observaciones: Ayuno de 8 a 12 horas antes de la prueba. No administrar hipoglicemiantes orales hasta la obtención de la muestra. Condiciones de transporte: El tubo debe ser transportado tapado, en posición vertical, en un recipiente o gradilla, dentro de un contenedor sólido a prueba de derrames y a temperatura ambiente. Evitar agitar para prevenir hemolisis. Utilidad diagnóstica: Para el diagnóstico y seguimiento de trastornos en el metabolismo de los hidratos de carbono (diabetes mellitus, hipoglicemia idiopática etc.). Limitaciones: En pacientes diabéticos, la muestra sanguínea debe obtenerse antes del tratamiento con insulina o con hipoglucemiantes orales. Muestras muy hemolizadas y lipémicas invalidan la prueba.

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GLUCOSA EN ORINA AISLADA     

Tipo de muestra: Orina. Método: enzimático (hexoquinasa). Intervalo de referencia adultos: 1– 15 mg/dl. 6 – 20 mg/dL Tipo de tubo o contenedor: contenedor entregado por el some central. Volumen mínimo necesario: 10 ml.

Observaciones: Usuarias: se sugiere que no cursen con su período menstrual o leucorrea al momento de recolectar la orina, en caso contrario deben cubrir la zona vaginal con un tapón de algodón para evitar que la orina se contamine. Antes de la recolección de la orina se procede a un aseo con agua y jabón de la zona que rodea el meato urinario, posteriormente se seca la zona evitando que queden restos de fibra en la zona. Se elimina el primer chorro de orina y se recolecta la porción media en el recipiente, la porción final también se elimina. Usuarios: se le indica que retraiga el prepucio para lavar con agua y jabón la porción distal del pene que rodea el meato urinario, posteriormente se seca la zona evitando que queden restos de fibra en la zona. Se elimina el primer chorro de orina y se recolecta la porción media en el recipiente, la porción final también se elimina. Condiciones de transporte: El frasco debe ser transportado tapado, en posición vertical, en un recipiente o gradilla, dentro de un contenedor sólido a prueba de derrames y a temperatura ambiente. Tiempo de transporte hasta 4 hrs desde la obtención de la muestra. Utilidad diagnóstica: La glucosuria aparece cuando el nivel de glucosa en la sangre excede la capacidad de reabsorción de los túbulos renales; es decir el filtrado glomerular contiene más glucosa que la que el túbulo puede reabsorber. La causa más importante de glucosuria es la diabetes mellitus, pero también se observa en otras patologías como: pancreatitis, trombosis coronaria, glucosuria alimenticia, cáncer pancreático, dolor, excitación, hipertiroidismo, tirotoxicosis, gigantismo, acromegalia, síndrome de Cushing, traumatismo encéfalo craneano. Limitaciones: Fármacos que interfieren: carbamazepina, corticosteroides, furosemida, tiazidas, EDTA, carbonato de litio, ácido nicotínico producen un aumento de la glucosa urinaria. Aspirina, ácido ascórbico, levodopa, dipirona, disminuyen su concentración urinaria.

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HEMOGLOBINA GLICOSILADA (HBA1C)   

Tipo de muestra: sangre Método: inmunoturbidimétrico. Intervalo de referencia adultos: No diabéticos: 4.0. – 6.0 % Diabéticos con tratamiento: 6.0. – 8.0 %

 

Tipo de tubo o contenedor: tubo con anticoagulante edta, tapa lila Volumen mínimo necesario: 2 a 4 ml, según indique el tubo.

Observaciones: Ayuno mínimo de 8 hrs. Condiciones de transporte: El tubo debe ser transportado tapado, en posición vertical, en un recipiente o gradilla, dentro de un contenedor sólido a prueba de derrames y a temperatura ambiente. Evitar agitar para prevenir Hemolisis. Utilidad diagnóstica: Seguimiento a largo plazo de la glicemia en pacientes con Diabetes Mellitus. Proporciona un pronóstico de la evolución de complicaciones diabéticas (neuropatías, retinopatías) en pacientes diabéticos. En su empleo clínico de rutina, por lo general basta en realizar la prueba cada 3 o 4 meses. En situaciones como la diabetes gestacional o al modificar el tratamiento puede ser conveniente medir la HBA1C en intervalos de 2 a 4 semanas Limitaciones: Cualquier situación que produzca una reducción en la vida media de los eritrocitos (anemia hemolítica, embarazo, hemorragias crónicas o agudas recientes de gran magnitud) disminuirá los valores de HBA1C. La lipemia invalida la prueba.

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HIERRO   

Tipo de muestra: sangre. Método: ferrozina sin desproteinización. Intervalos de referencia adulto: Hombre: 31 – 144 µg/dl Mujer: 25 – 156 µg/dl

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Tipo de tubo o contenedor: tubo con gel activador de la coagulación, tapa roja o verde. Volumen mínimo necesario: 2 a 4 ml, según indique el tubo.

Observaciones: Ayuno de 8 horas antes de la prueba. Condiciones de transporte: El tubo debe ser transportado tapado, en posición vertical, en un recipiente o gradilla, dentro de un contenedor sólido a prueba de derrames y a temperatura ambiente. Evitar agitar para prevenir Hemolisis. Utilidad diagnóstica: Disminuye en patologías como anemia ferropénica, artritis reumatoide, carcinoma, embarazo, etapa post operatoria. Aumenta en patologías como: anemia aplásica, anemia hemolítica, anemia perniciosa, entre otras. Limitaciones: La hemólisis y la lipemia invalidan la prueba. La vitamina B12 y la ingesta de fierro en las últimas 48 horas antes de la prueba puede elevar los resultados.

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LACTATO DESHIDROGENASA (LDH)     

Tipo de muestra: sangre. Método: lactato/piruvato estandarización ifcc (nadh) Intervalo de referencia adultos: 125 - 243 u/l Tipo de tubo o contenedor: Tubo con gel activador de la coagulación, tapa roja o verde. Volumen mínimo necesario: 2 a 4 ml, según indique el tubo.

Observaciones: Ayuno de 8 horas antes de la prueba. Condiciones de transporte: El tubo debe ser transportado tapado, en posición vertical, en un recipiente o gradilla, dentro de un contenedor sólido a prueba de derrames y a temperatura ambiente. Evitar agitar para prevenir Hemolisis. UTILIDAD DIAGNÓSTICA: La LDH se mide principalmente para diagnosticar condiciones en las cuales hay daño tisular. Se puede encontrar elevada principalmente en hepatitis, mononucleosis infecciosa, tumores malignos, linfomas, anemias distrofia muscular, infarto agudo al miocardio, pancreatitis, cirrosis y necrosis del hígado. Los niveles disminuidos no son clínicamente importantes. LIMITACIONES: Una leve hemólisis invalida la prueba. Oxalatos y salicilatos inhiben la LDH.

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LIPASA     

Tipo de muestra: sangre Método: enzimático colorimétrico Intervalo de referencia adultos: 8 – 78 u/l Tipo de tubo o contenedor tubo con gel activador de la coagulación, tapa roja o verde. Volumen mínimo necesario: 2 a 4 ml, según indique tubo.

Observaciones: No requiere ayuno. Condiciones de transporte: El tubo debe ser transportado tapado, en posición vertical, en un recipiente o gradilla, dentro de un contenedor sólido a prueba de derrames y a temperatura ambiente. Evitar agitar para prevenir Hemolisis. Utilidad diagnóstica: La lipasa sérica aumenta rápidamente en pacientes con pancreatitis aguda y recurrente, absceso pancreático o pseudoquístico, trauma pancreático, cáncer pancreático, obstrucción del ducto biliar común e ingestión de drogas tóxicas al páncreas. También aumenta por varias condiciones inflamatorias de la cavidad abdominal, enfermedades del tracto biliar, absceso abdominal y falla renal. Se describe que la lipasa es más específica que la amilasa total en el diagnóstico de pancreatitis aguda. Limitaciones: La muestra se debe refrigerar si no se procesa inmediatamente. Por períodos prolongados, el suero se debe congelar.

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MAGNESIO     

Tipo de muestra: sangre. Método: colorimétrico. Intervalo de referencia adultos: 2.0 – 2.8 mg/dl Tipo de tubo o contenedor: tubo con gel activador de la coagulación, tapa roja o verde. Volumen mínimo necesario: 2 a 4 ml, según indique tubo.

Observaciones: Ayuno de 8 horas antes de la prueba. Condiciones de transporte: El tubo debe ser transportado tapado, en posición vertical, en un recipiente o gradilla, dentro de un contenedor sólido a prueba de derrames y a temperatura ambiente. Evitar agitar para prevenir Hemolisis. Utilidad diagnóstica: Evaluación de alteraciones por mala absorción, pancreatitis, desórdenes de la depuración renal y control del tratamiento de la toxemia del embarazo. Valores aumentados se pueden encontrar en la deshidratación, insuficiencia renal aguda o crónica, diabetes mellitus descompensada, insuficiencia adrenocortical, enfermedad de Addison, trauma tisular, hipotiroidismo, LES, mieloma múltiple, pacientes con ingesta de antiácidos que contienen Magnesio, mujeres en tratamiento con sulfato de Magnesio por pre-eclampsia o eclampsia. Valores disminuidos se asocian con una ingesta inadecuada y/o una absorción anómala, pancreatitis aguda, hipoparatiroidismo y alcoholismo crónico. Limitaciones: La hemólisis invalida la prueba. Fármacos que interfieren: Aspirina (terapia prolongada), Litio, Progesterona, Triamtereno, Vitamina D y sales de Magnesio (antiácidos y laxantes), provocan un aumento de Magnesio en el suero. Salbutamol, Aldosterona, Aminoglicósidos, sales de Calcio, Cisplatino, Ciclosporina, Digoxina, Furosemida, diuréticos Tiazídicos, Etanol, Glucagón, Insulina (altas dosis en coma diabético) Anticonceptivos orales y Fenitoina, provocan una disminución de Magnesio en el suero.

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MICROALBUMINURIA AISLADA     

Tipo de muestra: orina Método: inmunoturbidimétrico. Intervalo de referencia adulto: 3 – 20 mg/l Tipo de tubo o contenedor: frasco tapa roja entregado por some central del CESFAM. Volumen mínimo necesario: 10 ml

Observaciones: En el caso de las usuarias: se sugiere que no cursen con su período menstrual o leucorrea al momento de recolectar la orina, en caso contrario deben cubrir la zona vaginal con un tapón de algodón para evitar que la orina se contamine. Antes de la recolección de la orina se procede a un aseo con agua y jabón de la zona que rodea el meato urinario, posteriormente se seca la zona evitando que queden restos de fibra en la zona. Se elimina el primer chorro de orina y se recolecta la porción media en el recipiente, la porción final también se elimina. En el caso de los usuarios: se le indica que retraiga el prepucio para lavar con agua y jabón la porción distal del pene que rodea el meato urinario, posteriormente se seca la zona evitando que queden restos de fibra en la zona. Se elimina el primer chorro de orina y se recolecta la porción media en el recipiente, la porción final también se elimina. Condiciones de transporte: El frasco debe ser transportado tapado, en posición vertical, en un recipiente o gradilla, dentro de un contenedor sólido a prueba de derrames y a temperatura ambiente. Tiempo de transporte hasta 4 hrs desde la obtención de la muestra. UTILIDAD DIAGNÓSTICA: Constituye un marcador de enfermedad renal temprana que permite actuar a fin de evitar la progresión de la enfermedad hacia estados más avanzados. Las complicaciones en el paciente con diabetes pueden tener consecuencias graves como la ceguera, infarto del miocardio, amputaciones y diálisis renal. Todas estas complicaciones pueden detectarse y tratarse a tiempo si se realizan exámenes periódicos de microalbuminuria. LIMITACIONES: Para interpretar los resultados se deben considerar factores que pueden modificar los niveles de albúmina en la orina, tales como el ejercicio físico, la infección urinaria, fiebre, etc.

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NITRÓGENO UREICO SANGUÍNEO (BUN)   

Tipo de muestra: sangre. Método: enzimático (ureasa). Intervalo de referencia adultos: Mujer < 50 años: 7.0 – 18.7 mg/dl Mujer > 50 años: 9.8 – 20.1 mg/dl

Hombre < 50 años: 8.9 – 20.6 mg/dl Hombre > 50 años: 8.4 – 25.7 mg/dl

6 – 20 mg/dL (Adultos).  

Tipo de tubo o contenedor: Tubo con gel activador de la coagulación, tapa roja verde. Volumen mínimo necesario: 2 a 4 ml, según indique el tubo.

Observaciones: Ayuno de 8 horas antes de la prueba. Condiciones de transporte: El tubo debe ser transportado tapado, en posición vertical, en un recipiente o gradilla, dentro de un contenedor sólido a prueba de derrames y a temperatura ambiente. Evitar agitar para prevenir hemólisis. Utilidad diagnóstica: Constituye una ayuda diagnóstica para diferenciar entre las diversas causas de insuficiencia renal. Indicador muy útil de función de hígado y riñón. La concentración aumenta con la edad y es mayor en hombres que en mujeres. Valores aumentados se observa en la insuficiencia renal cuando el valor del filtrado glomerular se ha reducido 1/5 del normal, en insuficiencia cardíaca congestiva, shock, hemorragias gastrointestinales, stress, IAM, enfermedad renal intrínsica aguda o crónica, dieta con alto contenido proteico. Valores disminuidos se observan en el embarazo, acromegalia, infancia, daño hepático severo, dieta baja en proteínas y alta en carbohidratos. Limitaciones: Hemólisis y lipemia invalidan la prueba. Fármacos que interfieren: Alopurinol, aminoglicósidos, cefalosporinas, cisplatino, furosemida, indometacina, metotrexato, metildopa, aspirina, anfotericina B, bacitracina, neomicina, probenecid, vancomicina, rifanpicina, propnolol, espironolactona, tetraciclina, diuréticos triazídicos, aumentan el BUN. Cloranfenicol, estreptomicina, disminuyen el BUN.

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NITRÓGENO UREICO EN ORINA MUESTRA AISLADA     

Tipo de muestra: orina. Método: enzimático (ureasa). Intervalo de referencia adultos: 10- 20gr/día Tipo de tubo o contenedor: frasco tapa roja entregado por some central del cesfam. Volumen mínimo necesario: 10 ml

Observaciones: Para el caso de las usuarias: se sugiere que no cursen con su período menstrual o leucorrea al momento de recolectar la orina, en caso contrario deben cubrir la zona vaginal con un tapón de algodón para evitar que la orina se contamine. Antes de la recolección de la orina se procede a un aseo con agua y jabón de la zona que rodea el meato urinario, posteriormente se seca la zona evitando que queden restos de fibra en la zona. Se elimina el primer chorro de orina y se recolecta la porción media en el recipiente, la porción final también se elimina. En el caso de los usuarios: se le indica que retraiga el prepucio para lavar con agua y jabón la porción distal del pene que rodea el meato urinario, posteriormente se seca la zona evitando que queden restos de fibra en la zona. Se elimina el primer chorro de orina y se recolecta la porción media en el recipiente, la porción final también se elimina. Condiciones de transporte: El frasco debe ser transportado tapado, en posición vertical, en un recipiente o gradilla, dentro de un contenedor sólido a prueba de derrames y a temperatura ambiente. Tiempo de transporte hasta 4 hrs desde la obtención de la muestra. Utilidad diagnóstica: Se realiza para determinar el equilibrio proteico, la cantidad de proteína en la dieta. Determinar el catabolismo proteico en respuesta post- traumática. Limitaciones: Hemólisis y lipemia invalidan la prueba.

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ORINA COMPLETA   

Tipo de muestra: orina. Método: incluye la determinación físico-química y la observación microscópica del sedimento urinario. Intervalos de referencia adultos: Aspecto: Transparente Densidad: 1015 – 1025gr/dl. Glucosuria: Normal (