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UNIVERSIDAD NACIONAL DE CHIMBORAZO FACULTAD DE CIENCIAS DE LA SALUD CARRERA DE LABORATORIO CLÍNICO E HISTOPATOLÓGICO Asignatura: HEMATOLOGÍA I

INFORME DE LABORATORIO Tema: DESFIBRINACIÓN SANGUÍNEA Y OBSERVACIÓN MORFOLÓGICA DE LAS CÉLULAS SANGUÍNEAS Elaborado por: NOSETercer semestre

Fecha de entrega: 22 de Mayo de 2015 Período: Abril - Agosto 2015

1. OBJETIVOS

1.1 Objetivo General Aplicar la técnica de desfibrinación sanguínea 1.2 Objetivos específicos   

Aplicar la técnica de desfibrinación sanguínea. Obtener una muestra de sangre por punción venosa con jeringuilla. Identificar la morfología de las células sanguíneas en sangre desfibrinada y anticoagulada.

2. FUNDAMENTACIÓN TEÓRICA Es una proteína producida por el hígado que ayuda a detener el sangrado al favorecer la formación de coágulos de sangre. Un examen de sangre se puede llevar a cabo para determinar qué tanto fibrinógeno tiene una persona en la sangre. (fre-ed) Es una proteína soluble del plasma sanguíneo precursor de la fibrina, su longitud es de 46 nm, su peso 340 kDa. Es responsable de la formación de los coágulos de sangre. Cuando se produce una herida se desencadena la transformación del fibrinógeno en fibrina gracias a la actividad de la trombina. Es una molécula fibrilar, que en sus extremos tiene cargas fuertemente negativas. Estos extremos permiten la solubilidad del compuesto y también repelen a otras moléculas del compuesto, previniendo la agregación. Compuesto por tres pares de cadenas de polipéptidos que son, 2 cadenas Aα, 2 Bβ y 2γ (Aα,Bβ,γ)2 unidas por enlaces disulfuro, estas cadenas además están genéticamente ligadas y reguladas en forma coordinada en el ser humano. (Rev Cubana Invest) La desfibrinación consiste en la obtención del suero y elementos formes a partir de sangre total coagulada mediante agitación.

3. MATERIALES Y MÉTODOS Materiales 2 Laboratorio Clínico

       

Equipo de bioseguridad Matraz Erlenmeyer Perlas de cristal Jeringuilla Placas portaobjetos Cubreobjetos Microscopio Equipo de toma de muestra

Muestra 

Sangre desfibrinada y sangre y sangre anticoagulada.

PROCEDIMIENTO 

Punción venosa con jeringuilla:

Abrir la jeringa y revisar que el embolo este suave y ajustar la aguja. Colocar el torniquete. Desinfectar la zona de punción con una torunda con alcohol. Retirar la tapa de la aguja y pinchar estirando la piel. Jalar en embolo. Retirar el torniquete y depositar la torunda con alcohol para evitar sangrados. 

Para obtener sangre desfibrinada:

Colocar 4 ml de muestra suavemente por las paredes del matraz que contiene las perlas de vidrio. Se somete a rotación manualmente a manera de un ocho sobre una base durante 10 minutos. Se obtiene la sangre desfibrinada y se coloca una pequeña gota sobre un portaobjetos y con un cubreobjetos. Se observa al microscopio la morfología celular. 

Para obtener sangre anticoagulada:

3 Laboratorio Clínico

Colocar 2 ml de muestra en un tubo con anticoagulante EDTA (tapa lila) y homogenizar. Colocar una pequeña gota de sangre anticoagulada en el portaobjetos y con un cubreobjetos. Se observa al microscopio la morfología celular.

4. GRÁFICOS Y RESULTADOS

Obtención de sangre líquida por medio de perlas de cristal que atrapan la fibrina.

Sangre desfibrinada

Sangre anticoagulada

De acuerdo al campo observado se obtuvo lo siguiente:

4 Laboratorio Clínico

Células

Sangre desfibrinada

Sangre anticoagulada

Eritrocitos Leucocitos Plaquetas

Si Si (13) no

Si SI (7) si

5. CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES CONCLUSIONES 

Las perlas de cristal tienen mucha importancia ya que el fibrinógeno se pega o se adhiere a estas perlas obteniendo como resultado sangre líquida desfibrinada.



Las perlas de cristal al absorber el fibrinógeno por ende lleva consigo las plaquetas, por lo tanto en sangre desfibrinada no existe coagulación ni presencia de plaquetas.



Se evitó la coagulación con la técnica de desfibrinación y con la utilización de anticoagulante.

RECOMENDACIONES 

De acuerdo al número de ml de sangre que se utilice, de la misma manera las perlas de cristal. Ejemplo para 4 ml de sangre 4 perlas.



Rotular el tubo que se vaya a utilizar después de la extracción sanguínea y no antes, ya que si por algún motivo no se realizó la toma de muestra, se podría confundir si se utiliza el mismo tubo ya rotulado con otro paciente.



En la extracción sanguínea verificar si la jeringuilla está completamente sellada, que no esté caducada y verificar que se mueva el embolo.



Para obtener un buen campo de observación y localización de una muestra tener en cuenta que se tiene que empezar desde el lente de menor aumento.

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6. BIBLIOGRAFÍA fre-ed. (s.f.). Obtenido de http://www.freeed.net/sweethaven/MedTech/Hematology/lessonMain.asp?iNum=0411Facultad de medicina de Londres Rev Cubana Invest. (s.f.). Obtenido de 1. http://www.bvs.sld.cu/revistas/ibi/vol24_3_05/ibi03305.htm Garcia espinoza, Benjamin. Hematología II, Citología, Fisiología y Patología de hematíes y leucocitos .Paraninfo VIVES CORRONS, Joan Luís. Manual de técnicas en el Laboratorio de Hematología. Tercera edición. Masson. 2006

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