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FACULTAD DE FARMACIA Y BIOQUÍMICA

Farmaconogsia Práctica N°4 TAMIZAJE FITOQUÍMICO. METABOLITOS PRIMARIOS. Identificación de Polisacáridos a partir de drogas naturales.

Sección y Grupo: FB6M2-A

Docente: Mág. Marilu Ricardina Jaramillo Briceño

Integrantes:  Calderon Curi, Adira  Cueva Quispe,Daniel  Del Castillo Purizaca, Cecilia  Rivera Leon, Daniela  Rivera Salazar, David

Ciclo:

Turno: VI

Mañana

2019-II 1. INTRODUCCIÓN: Los principios activos son sustancias que se encuentran en las distintas partes u órganos de las plantas y que alteran o modifican el funcionamiento de órganos y sistemas del cuerpo humano y animal. La investigación científica ha permitido descubrir una variada gama de principios activos, de los cuales los más importantes desde el punto de vista de la salud, son los aceites esenciales, los alcaloides, los glucósidos o heterósidos, los mucílagos y gomas, y los taninos. Existen en las plantas otros principios activos relevantes denominados nutrientes esenciales, como las vitaminas, minerales, aminoácidos, carbohidratos y fibras, azúcares diversos, ácidos orgánicos, lípidos y los antibióticos. El tamizaje fitoquímico o screening fitoquímico es una de las etapas iniciales de la investigación fitoquímica, que permite determinar cualitativamente los principales grupos químicos presentes en una planta y a partir de allí, orientar la extracción y/o fraccionamiento de los extractos para el aislamiento de los grupos de mayor interés. El tamizaje fitoquímico consiste en la extracción de la planta con solventes apropiados y la aplicación de reacción de color y precipitación. Debe de permitir la evaluación rápida, con reacciones sensibles, reproducibles y de bajo costo. Los resultados del tamizaje fitoquímico constituyen únicamente en una orientación y debe de interpretarse en conjunto con los resultados del screening farmacológico. Así cuando una planta revela acción sobre el sistema nervioso central durante el tamizaje farmacológico y presencia de alcaloides en el tamizaje fitoquímico, es bastante probable que la acción farmacológica se deba a la fracción alcaloidal. De la misma manera, el hecho de evidenciarse acción antiinflamatoria en el tamizaje farmacológico y la presencia de flavonoides en el tamizaje fitoquímico, puede dar lugar a procesos de aislamiento y sometimiento a pruebas más específicas de estos compuestos. Efectos catárticos pueden ser asociados a las antraquinonas. La presencia de glicósidos cianogénicos durante la marcha fitoquímica puede dar lugar a la descartación de la planta por su alta toxicidad. La confirmación de la actividad farmacológica o antimicrobiana justifica la continuación de los estudios. El screening fitoquímico proporciona datos preeliminares sobre los constituyentes químicos de la planta que, junto con los resultados del tamizaje farmacológico, pueden orientar la continuación de los estudios. Diversos métodos de tamizaje fitoquímico están descritos en la literatura.

2. MARCO TEÓRICO: 2.1.

TAMIZAJE FITOQUÍMICO El tamiz fitoquímico es una herramienta en la investigación del potencial biológico y farmacológico que poseen las plantas. En este trabajo se describe la forma en que se puede llevar a cabo el estudio de los compuestos químicos presentes en las plantas a partir de la identificación de los grupos químicos específicos para cada molécula bioactiva; se hace especial énfasis en el tamiz fitoquímico y en las estructuras y generalidades de grupo químico de interés biológico.

2.2.

METABOLITOS PRIMARIOS Son metabolitos primarios de las plantas los compuestos químicos que intervienen en los procesos mencionados: los aminoácidos destinados a la formación de proteínas, los nucleótidos, los azúcares, los acilglicéridos.

2.3.

POLISACÁRIDOS Los polisacáridos son biomoléculas formadas por la unión de una gran cantidad de monosacáridos. Se encuentran entre los glúcidos, y cumplen funciones diversas, sobre todo de reservas energéticas y estructurales.

2.4.

DROGAS NATURALES Las drogas naturales, cuentan con la característica de no haber recibido ningún tratamiento químico en su elaboración, llamándose, en ocasiones, drogas crudas o drogas brutas. Dentro de las drogas naturales, se encuentran distintos tipos de sustancias, con diferentes tipos de efectos cada una. Los diferentes tipos de drogas naturales son: el café, el cacao, el tabaco, la belladona, los derivados del cannabis como la marihuana y el hachís, los hongos y el peyote. Las drogas naturales, cuentan con la característica de no haber recibido ningún tratamiento químico en su elaboración, llamándose, en ocasiones, drogas crudas o drogas brutas.

2.5.

HOMOPOLISACÁRIDOS Formados por un solo tipo de monosacárido, caso del almidón, glucógeno, célulosa, quitina y pectina.

2.6.

HETEROPOLISACÁRIDOS Formados por más de un tipo de monosacáridos, como la hemicelulosa, agar-agar, gomas y mucopolisacáridos.

2.7.

REACCIÓN DE MOLISH La reacción de Molisch es una reacción que tiñe cualquier carbohidrato presente en una disolución; es llamada así en honor del botánico austríaco Hans Molisch.

2.8.

REACCIÓN DE SELIWANOFF La reacción de Seliwanoff detecta la presencia de cetohexosas. Con el mismo principio de la reacción anterior, esta se basa en la formación de derivados furfúricos. En este caso el 5- hidroximetilfurfural, producto de la deshidratación de las cetohexosas, reacciona con el resorcinol (derivado fenólico) produciendo un compuesto de color rojo. El resultado es positivo tanto

para

las

cetohexosas

en

forma

monomérica,

como

para

oligosacáridos que contengan cetohexosas en su estructura.

2.9.

REACCIÓN DE BENEDICT Esta reacción nos indica si un azúcar es o no reductor. Para tal fin el carbohidrato se hace reaccionar con el ión cúprico (Cu++) en medio alcalino a una temperatura de 100°C. El carbohidrato, a través de su hemiacetal libre en el carbono 1, se oxida favoreciendo la reducción del cobre a oxido cuproso (Cu2O) el cual se presenta como un precipitado rojo ladrillo en el fondo del tubo.

3. COMPETENCIAS:  Realiza el análisis Botánico Macroscópico de la especie vegetal a investigar.  Reconoce morfológicamente los diferentes órganos de la especie.  Reconoce y caracteriza los principales órganos de la planta a nivel microscópico mediante cortes histológicos (Raíz, Tallo, Hojas, Flor, Fruto y semilla) con ayuda de las técnicas de tinción.

4. RESULTADOS: Tabla Nro. 1. Descripción de obtención de Muestras biológicas MUESTRA PROBLEMA Papa (ALMIDON)

Algodón (CELULOSA)

Manzana (PECTINAS)

Linaza (MUCÍLAGOS)

OBTENCIÓN DE LA PREPARACIÓN

Tabla Nro. 2. Resultados de reacciones de identificación según el tamizaje fitoquímico de los polisacáridos extraídos.

REACCIÓN

+/-

CARACTERÍSTICAS

POLISACÁRIDOS HOMOGÉNEOS

Solución de yodo 2.5% (ALMIDON DE PAPA)

+

Complejo azul desaparece por calor y reaparece por enfriamiento.

Yodo en ácido sulfúrico (FIBRAS DE ALGODÓN)

+

Coloración azul oscuro

Solubilidad en H2SO4 (FIBRAS DE ALGODÓN)

+

Soluble

Solubilidad en KOH 5% (FIBRAS DE ALGODÓN)

+

Insoluble

POLISACÁRIDOS HETEROGÉNEOS

NaOH 3N (PECTINAS)

+

Precipitado amarillo gelatinoso

Formación de gel (PECTINAS)

+

Formación de gel incoloro

Acetato de Plomo básico (MUCÍLAGOS)

+

Precipitado gelatinoso blanco

Lugol (MUCÍLAGOS)

+

Presencia de almidones (azul) y dextrinas (rojo)

FUNDAMENTO: POLISACARIDO HOMOGENEO:

Solución de Yodo 2,5%: X gotas de MP (almidón de papa) + V gotas de yodo 2,5% -

Reacción Química rápida y eficaz, cambio de color instantáneo, el yodo ayuda a reconocer la presencia o alteración del almidón, en este caso, nuestra prueba experimental nos salió negativo, no llego a la coloración azul.

Yodo en Ácido Sulfúrico: Fibras de Algodón + V gotas lugol, secar + gotas de H2SO4 cc. -

Reacción Química rápida, reacción exotérmica, cambio de coloración, al añadir el lugol, hay desprendimiento de Yodo, mediante esta reacción podemos ver una coloración clara, si es +, coloración oscura, si es -; nos ayuda a reconocer polisacáridos.

Solubilidad de H2SO4: Fibras de algodón + V gotas de H2SO4 cc

-

Reacción Química rápida y eficaz, descomposición instantánea del algodón, hay solubilidad, la solución o la reacción es positiva en solubilidad, es un compuesto polar absoluto.

Solubilidad de KOH 5%: Fibras de algodón + V gotas de KOH 5% -

Reacción Química lenta, sin ninguna reacción, no hay presencia de solubilidad, la base no es soluble con el polisacárido, es un compuesto apolar en reconocimiento de polisacáridos, la prueba salió negativa, el compuesto es insoluble.

5. CUESTIONARIO: 1) Explique una de las reacciones químicas de la determinación de polisacáridos. La prueba del yodo es una reacción química usada para determinar la presencia o alteración de almidón u otros polisacáridos. Una solución de yodo - diyodo disuelto en una solución acuosa de yoduro de potasio - donde los iones I3- se sitúan dentro de la macromolécula de almidón cocido (estrictamente de la amilosa) produciendo un efecto óptico de color azul (con solución de Lugol diluída) pasando por púrpura profundo hasta llegar al negro en soluciones concentradas. Este tipo de prueba puede realizarse con cualquier producto que contenga almidón como ser patatas, pan o determinados frutos. Esta reacción es el resultado de la formación de cadenas de poliyoduro a partir de la reacción del almidón con el yodo presente en la solución de un reactivo llamado Lugol. La amilosa, el componente del almidón de cadena lineal, forma hélices donde se juntan las moléculas de yodo, formando un color azul oscuro a negro. La amilopectina,1 el componente del almidón de cadena ramificada, forma hélices mucho más cortas, y las moléculas de yodo son incapaces de juntarse, obteniéndose un color entre naranja y amarillo. Al romperse o hidrolizarse el almidón en unidades más pequeñas de carbohidrato, el color azul-negro desaparece. En consecuencia, esta prueba puede determinar el final de una hidrólisis, cuando ya no hay cambio de color constituyendo una evidencia experimental ampliamente utilizada.

2) Mediante una Tabla mencione 8 especies medicinales endémicas o nativas del Perú que contengan polisacáridos. Tabla Nro. 3. Tabla de descripción de especies medicinales endémicas o nativas del Perú que contengan polisacáridos. Nombre Común

Nombre Científico

Familia/ Fotografía

Verbenaceae Cedrón

Aloysia citrodora Paláu

Usos

Para afecciones respiratorias, nerviosas1 , gastrointestinales y como eupéptico (que favorece la digestión

Dibujo

Guanába na

Annona muricata L.

Annonacea e

La guanábana ha sido usada para evitar los vómitos y para facilitar el alumbramiento ; las hojas remojadas en agua, aplicadas tópicamente, se usan como tranquilizante o para mantenerse sobrio ; la tintura de las semillas pulverizadas en aguardiente ha sido usada como un emético potente; el cocimiento como emplasto se coloca en los pies hinchados e inflamados; las hojas masticadas han sido utilizadas después de cirugías con el fin de atenuar las cicatrices; las hojas machacadas son aplicadas como cataplasma para aliviar eccemas y otras afecciones dérmicas, y reumatismo; la savia de las hojas frescas se ha usado para tratar

erupciones cutáneas.

Pucshuy uyo

Begonia fischeri Schrank

Begoniacea e

Para la tos

Chiric sanango

Brunfelsi a grandiflo ra D. Don

Solanaceae

Es una planta ampliamente usada en la Amazonía peruana. La raíz es usada como antirreumático 21,10,9 y para la sífilis; el cocimiento de la hoja se usa para tratar la artritis y el reumatismo10, 9. Se usa también como sudorífico, para curar resfríos11, mordedura de serpiente, fiebre amarilla y enfermedades venéreas

Colle

Buddleja coriacea Remy

Scrophulari aceae

Para el lavado de heridas, antigonorreico, para aliviar los dolores que se producen al orinar

Ortiga colorada

Caiophor a cirsiifolia C. Presl

Loasaceae

Para la hemorragia nasal, neumonía, curar la ciática, tos persistente y como desinflamante

Cetico

Cecropia engleria na Snethl

Urticaceae

Febrifugo

Chiri chiri

Grindelia boliviana Rusby

Asteraceae

Para curar llagas y heridas (junto con hojas de coca)

6. CONCLUSIONES: 7. REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS: 

Hoffmann (2014). Atlas Ilustrado de Plantas Medicinales. Susaeta ediciones S.A. Primera edición en castellano. Madrid.



Vicuña Z. (2011). Inventario de las Plantas Medicinales del Tahuantinsuyo. Primera edición. Tomo I y II. Lima.



Valla, J. (2011). Botánica. Morfología de las plantas superiores. Primera Edición. Editorial Hemisferio Sur.



Ventura O. (2010). Las Plantas Aromáticas y Medicinales. Primera Edición. Lima



Osorio E (2009). Aspectos Básicos de Farmacognosia. Universidad de Antioquía. Colombia.

8. CONCLUSIONES: 9. REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS: 

Hoffmann (2014). Atlas Ilustrado de Plantas Medicinales. Susaeta ediciones S.A. Primera edición en castellano. Madrid.



Vicuña

Z.

(2011).

Inventario

de

las

Plantas

Medicinales

del

Tahuantinsuyo. Primera edición. Tomo I y II. Lima. 

Valla, J. (2011). Botánica. Morfología de las plantas superiores. Primera Edición. Editorial Hemisferio Sur.



Ventura O. (2010). Las Plantas Aromáticas y Medicinales. Primera Edición. Lima



Osorio E (2009). Aspectos Básicos de Farmacognosia. Universidad de Antioquía. Colombia.