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CONVENIENCE PROGRAM

J. Martin Silva MVZ

Diagnóstico diferencial de las principales enfermedades respiratorias de las aves Temas por abordar.

CONVENIENCE AUDIT

1.

Principales enfermedades respiratorias en pollo de engorda y postura comercial.

2.

Epidemiología de las enfermedades de las enfermedades respiratorias.

3.

Sintomatología

4.

Diagnóstico diferencial.

5.

Estrategias de control

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Migración linfocitaria Day 1 – 21: Harderian Gland Thymus

Spleen Peyers Patches and GALT Bone Marrow

Avian Immune System

Interacción entre patógenos e inmunosupresión en relación a las enfermedades respiratorias

IMUNOSUPRESOR I

IMUNOSUPRESOR II FACTORES COMPLICANTES

IBDV CIAV ILT MICOTOXINAS MDV E. coli ORT

PATÓGENO PRIMÁRIO

NDV - IBV – MG

Agentes inmunosupresores e interacción con factores diversos Programa de vacunación

Mala Alimentación (NUTRICION) Desafío de campo (BIOSEGURIDAD)

Manejo (STRESS)

MDV

IBDV

CIAV

Antimicrobianos micotoxinas (TOXICIDAD)

INMUNOSUPRESION COLIBACILOSIS

PASTEURELOSIS NDV IBV ILTV APV MG MS ORT

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Enfermedades respiratorias Agentes infecciosos Bacterias

Avibacterium paragallinarum. Ornitobacterium rhinotracheale

Micoplasmas

Mycoplasma gallisepticum. Mycoplasma synoviae

Virus

Enfermedad de Newcastle Bronquitis Infecciosa Metapneumovirus. Laringotraqueitis aviar Influenza aviar J. Martin Silva MVZ

Tomar en consideración

1.

Bioseguridad

2.

Prevalencia de patógenos en la región/compañía

3.

Programa de monitoreo (laboratorio).

4.

Asegurar una adecuado procedimiento de vacunación

5.

Realizar un adecuado diagnóstico.

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Deprimidas

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Dx Clínico- Cuadro Respiratorio

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Dx Clínico- Cuadro Respiratorio

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Dx Clínico- Aves postradas y con cuellos torcidos

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Dx Clínico- Cuellos torcidos

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Dx Clínico- Cuadro Respiratorio

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Enfermedad de Newcastle • Género: Paramyxovirus Avian paramyxoviruses - 9 serotipos - Tipo 1 virus (PMV-1) más importante alberga al Newcastle disease viruses (NDV) • RNA de cinta simple • Actividad hemaglutinante. • Clasificación de las cepas: pruebas – Prueba de patogenicidad – Mortalidad de embriones de gallina – Índice de patogenicidad intracerebral – Índice de patogenicidad endovenoso – PCR

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Clasificación por su grado de patogenicidad patotipos Las cepas del PMV-1 se dividen en 5 patotipos  Lentogénico  Mesogénico  Velogénico Neurotrópico  Velogénico Viscerotrópico  Cepas “Asintomáticas” – e.g. virus entéricos

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• Transmisión • • • •

Inhalación Ingestión Excreción del vírus a través de las heces Transmisión vertical no comprobada

• Período de incubación • 5-6 días

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• Patogénesis • Por lo menos 236 especies son susceptíbles • Gallinas son altamente susceptíbles • Patos y gansos: pocos o ausencia de signos clínicos

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Tipos de presentación  Velogénica viscerotrópica (Doyle).- Forma altamente virulenta con lesiones hemorrágicas en tracto intestinal.  Velogénica neurotrópica.(Beach)- Forma con alta mortalidad seguida de signos respiratorios y nerviosos.  Mesogénica.(Beaudette)- Causa signos respiratorios y en ocasiones nerviosos con baja mortalidad.  Lentogénica respiratoria.(Hitchner)- Causa una suave o inaparente infección respiratoria.  Asintomática entérica.- Causa una infección entérica inaparente. J. Martin Silva MVZ

• Forma Hitchner

• Forma Beaudette

• Leve

• Forma menos patogénica de EN neurovirulenta

• Infección respiratória poco aparente • Causada por vírus lentogénico

• Forma Beach

• Forma de Doyle

• Aguda, muchas • Infección aguda veces letal letal • Signos respiratórios • Lesiones severos • Mortalidad hemorrágicas en apenas entre aves • Signos el trato digestivo más jóvenes neurológicos • Causada por • Causada por vírus velogénico • Causada por vírus vírus velogénico neurotrópico mesogénicos viscerotrópico

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• Signos clínicos - Patotipo vvNDV

• Lesiones del patótipo vvNDV

• Graves signos respiratórios • Edemas alrededor de los ojos y la cabeza • Diarrea verde • Temblores musculares • Torticulis • Parálisis de piernas y alas • Opistótonos • Mortalidad de hasta 100%

• Lesiones hemorrágicas en el intestino (proventrículo, ciegos e intestino delgado) • Lesiones hemorrágicas y congestión de la tráquea • Aerosaculitis • Yema de huevo en la cavidad abdominal • Hemorrágias en los órganos reproductivos

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• Diagnóstico • Serología – VN – HI – ELISA • Inmunofluorescencia • Aislamiento del virus en combinación con pruebas de patogenicidad • PCR

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Patotipificación biológica  Tiempo promedio de muerte embrionaria.  Indice de patogenicidad intracerebral.

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IPI- Patogenicidad intracerebral 50 ul dilusión 1:10 NDv/sol Salina

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Inmediatamente post-inoculación

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Controles y lentogénicos a 24 Hrs

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Mesogénicos 24 Hrs

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Velogénicos viscerotrópicos

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Patotipos de las cepas del virus de la EN  Tiempo medio de muerte embrionaria (TME)  Indice Intra cerebral de patogenicidad (IICP)  Indice Intravenoso de patogenicidad (IIVP)  Habilidad de formar placas en cultivos  celulares de fibroblastos de pollo

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Patotipos de las cepas del virus de la EN TM E

I I CP

I I VP

P lacas

< 60 hr

> 1.2

2.0 – 3.0

Si

Mesogénico 60- 90 hr

0.8-1.2

0.0-0.5

Si?

Lentogénico

> 90 hr

90 hr

< 0.2

0.0

No

Velogénico

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Ejemplo de las pruebas de patogenicidad Cepa

Patotipo

IICP

IIVP

TME

Ulster Hitchner B1 LaSota

Lentogénica Lentogénica Lentogénica

0,00 0,15 0,37

0,00 0,00 0,00

> 150 120 103

Clone 30 C2

Lentogénica Lentogénica

0,24 0,00

Roakin Beaudette

Mesogénica Mesogénica

1,45 1,60

0,00 1,45

68 62

GB Texas Herts 33/56

Velogénica Velogénica

1,75 2,00

2,70 2,70

55 48

J. Martin Silva MVZ

Detección y patotipificación muestra

J. Martin Silva MVZ

Para que nos sirve ? Diagnóstico definitivo y Epidemiología molecular

J. Martin Silva MVZ

J. Martin Silva MVZ

¿Cómo proteger a las aves contra la Enfermedad de Newcastle? • ALTA INMUNIDAD • Vacunaciones – Vacunas vivas – Vacunas inactivadas • Usando el programa correcto de vacunación

J. Martin Silva MVZ

ALTAMENTE CONTAGIOSA, AFECTA AVES DE TODAS LAS EDADES, PATOGENO AFECTANDO

RESPIRATÓRIA

RENAL

REPRODUCTIVA

ENTÉRICA

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Dr. C. Ardila

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Porqué BI continúa siendo un problema    

  

Altamente infecciosa Persistente en las aves Rápida diseminación Virus RNA - muta fácilmnte - recombinaciones Diferentes tipos de enfermedad Muchos serotipos diferentes Variantes

Dr. C. Ardila

J. Martin Silva MVZ

SITUACIÓN MUNDIAL DE BRONQUITIS INFECCIOSA 4/91, locales

4/91, QX, Q1, IT1, D274

4/91, QX, Q1, LX4, LDL, Locales.

Ark, GA08, GA98, De, Conn

Locales

Ark, Conn, Locales

4/91, QX, Q1, It2, Ark

Q1, QX, 4/91, D274, It2, Ark y locales

• •

Evolución constante del virus (mutaciones, recombinaciones…) Presencia continua de cepas variantes

SITUACIÓN MUNDIAL DE BRONQUITIS INFECCIOSA 4/91, locales

4/91, QX, Q1, IT1, D274

4/91, QX, Q1, LX4, LDL, Locales.

Ark, GA08, GA98, De, Conn

Locales

Ark, Conn, Locales Q1, QX, 4/91, D274, It2, Ark y locales

4/91, QX, Q1, It2, Ark

Bronquitis Infecciosa

Agente causal

• Coronavírus (RNA) - Reportada en 1931 por schalk y hawn • Diferentes serotipos

– La patogenicidad puede diferir entre los diferentes serotipos y cepas

Hospedero • Gallinas de todas las edades J. Martin Silva MVZ

Transmisión

- horizontal. - no ocurre transmisión vertical.

Período de Incubação - 18 a 36 horas Distribución mundial

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Efectos de la enfermedad

• Tracto respiratorio • Tracto urogenital • Reproductor • Intestinal • El virus puede ser aislado a partir de otros órganos hasta 50 días pos-infección. J. Martin Silva MVZ

Patogénesis

Aves jóvenes • Signos respiratórios • Dificultades respiratorias, tos, estertores y corrimiento nasal • Mortalidad de hasta 30% dependiendo de la ocurrencia de infecciones secundarias.

Aves adultas • Signos respiratórios • Caída en la producción de huevos • Alteración de la calidad externa e interna de los huevos J. Martin Silva MVZ

BRONQUITIS INFECCIOSA EFECTO DE UNA INFECCIÓN EN PONEDORAS EN DIFERENTES EDADES

INFECCIÓN POR IB PUEDE CAUSAR FALSAS PONEDORAS

INFECCIÓN POR IB CAUSA: - CAIDA DE PRODUCCIÓN - SIGNOS RESPIRATÓRIOS - CAíDA EN CALIDAD DE HUEVOS

RECRíA 1-14 DíAS

18 A 80 SEMANAS

INFECCIÓN POR BI - PROBLEMAS RESPIRATORIOS J. Martin Silva MVZ

Lesiones • Exsudato seroso, catarral o caseoso en la traquea, sinos y pasajes nasales • Sacos aéreos turbios, eventualmente con material amarillento caseoso • Aves en postura presentan material fluido de yema en la cavidad abdominal. Hay reducción de peso y tamaño del oviducto • Daño permanente (obliteración, cistos) del oviduto dando como resultado falsas ponedoras principalmente en aves de menos de dos semanas de edad • Los riñones se presentan inchados y pálidos, con ureteres distendidos conteniendo cristales de ácido úrico

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Diagnóstico

• Aislamiento del vIrus • Serología - serotipificación - IH - VSN - ELISA • PCR J. Martin Silva MVZ

Métodos serológicos

• Precipitación en gel de Agar (AGP) • Neutralización de vIrus – en embriones de gallina

– en cultivos celulares de riñón – en cultivos de tráquea • Inibición de hemaglutinación • ELISA

Grupo específico Serotipo específico

Serotipo específico Serotipo específico

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Clasificación por serotipos • (basada en pruebas serológicas de VN) • • • • • • • •

Francia Chile USA Inglaterra Bélgica Alemania Itália Austrália

88021, PL84084, 793B Australes Arkansas, Connecticut UK11, 13, 16, 20, 4/91 B1648 60/88 624/1 Holte, Gray

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Vacunas - vacunación

• Mundialmente la mayoria de las vacunas se basan en el serotipo Massachusetts (vivas e inactivadas). • Vivas - H120 - H52 - Ma5 • Inactivadas - M41

• Periodo mínimo entre aplicación de dos vacunas vivas: 2 semanas • Periodo mínimo de aplicación de vacunas vivas e inactivadas: 4 – 6 semanas • La utilización de vacunas inactivadas contra BI será efectiva después de una primovacinación adecuada con vacunas vivas

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Por resolver



El periodo de vida de un pollo es corto;



Se deben proteger las aves contra diversas enfermedades;



Algunas vacunas no son totalmente compatibles, principalmente las vacunas vivas (fenómeno de interferencia, reacciones pos-vacunales fuertes);



Algunas cepas dan inmunidad corta y desuniforme, exigiendo revacunaciones.

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IBV- D388 (QX) – The Netherlands

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IBV- D388 (QX)

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IBV- D388 (QX)

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IBV- D388 (QX)

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IBV- D388 (QX) – Middle East

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IBV- D388 (QX)

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IBV- D388 (QX)

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IBV- D388 (QX) - Germany

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IBV- D388 (QX)

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IBV- D388 (QX)

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IBV- D388 (QX) – Middle East

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IBV- D388 (QX) - Indonesia

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IBV- D388 (QX) - Mexico

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Metapneumovírus Aviar

Familia : Paramyxoviridae Género : Pneumovírus VÍRUS SINCICIAL RESPIRATÓRIO (RSV) RINOTRAQUEÍTE DAS AVES (TRT/SHS)

Todos los aislados - ÚNICO SEROTIPO Subgrupos (serotipos) - A, B, C y D Virus RNA

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• 1 serotype • 4 subtypes: – A: Pavos, gallinas (Africa, Asia, Europe, South America) – B: Pavos, gallinas (Africa, Asia, Europe, South America) – C: 2 sub clusters • pavos, gansos salvajes USA • Pato moskovita y pekin Francia (cuadro respiratorio, caida de postura)

– D: pavo, gallinas (France)

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Transmisión

• Horizontalmente por contacto directo y por el aire. • Vectores? • Vertical : No constatada.

Susceptibles

• • • • • •

Pavos Gallinas Guineas Faisanes Patos Gansos

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Síndrome de Cabeza Hinchada Pollos de Engorde: • entre 4-6 semanas de edad • duración de 2-3 semanas • mortalidad 1-4% (hasta 20%)

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Signos clínicos

• • • • • • • •

Morbilidad y mortalidad variables Mucosidad traqueal Secreción ocular Inflamación de los senos infra y periorbitales Torticulis Incoordenación motora Caída en la producción y perdida en la incubación Cuadros severos de salpingitis

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Síndrome de Cabeza Hinchada Reproductoras Pesadas: • entre 24-52 semanas de edad • caída de postura entre 1-10% por 1 -2 semanas

Signos clínicos • ronroneos leves • rinitis • conjuntivitis, edema facial • desorientación y tortículis

• puede haber caída de incubabilidad

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Bacterias aisladas de brotes de Rinotraqueitis aviar (RU)

• • • • • • •

Escherichia coli Bordetella bronchiseptica Alcaligenes faecalis (B. avium) Moraxella SPP Pasteurella SP Klebsiella SP Pseudomonas

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Concentración del aMPV en diferentes tejidos y excreción viral 7

Vírus/g de tecido

6 5 4

Días post-desafio

3 2 1 0 1

3 Nariz

5 Pulmón

Sacos aéreos

7

10 Tráquea

14 Signos

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Métodos usados para el aislamiento del aMPV

• Cultivo en anillos traqueales : – gallina – pavos • Cultivo de riñones de galinha (CEK) • Cultivo de hígado de embriones (CEL) • Cultivo de fibroblastos (CEF) • Huevos embrionados - saco de la yema • Vero, BS-C1

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Métodos serológicos aMPV

• ELISA • Seroneutralización • Inmunofluorescencia • PCR

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Factores que agravan las infecciones por Metapneumovirus Aviar

• Infecciones secundárias : nível de contaminación, patogenicidad de los agentes. • Grado de protección para otros agentes de tropismo respiratório : Bronquitis Infecciosa, Newcastle, MG, MS, etc. • Factores de inmunosupresión: Anemia, Gumboro, Marek, Reovírus, micotoxinas, leucosis (J).

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Diagnóstico diferencial

• • • • •

Bronquitis Infecciosa Micoplasma (MG) Coriza Infecciosa Enfermedad de Newcastle Influenza aviária

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Prevención

•

Vacunación con vacunas vivas (una o dos dosis por vía respiratória) e inativadas

•

LIMPEZA y desinfección rigurosa

•

Reforzar bioseguridad

•

Mejorar el programa de vacinación contra Bronquitis Infecciosa

•

Vacunación contra Pasteurela (Cólera aviar) J. Martin Silva MVZ

Laringotraqueitis Características del virus de importancia  Herpesvirus DNA – Patógeno primario. - Un solo serotipo / diferentes patotipos - Virus neurotrópicos –estado de latencia Virus envuelto – Sensible a desinfectantes.  Termolábil – Sensible al calor.  Ciclo de replicación lenta – vacuna terapéutica.  Latencia – recrudecimiento.  Transmisión horizontal aérea y/o mecánica  Período de incubación – 6 a 12 días  Aves comerciales y no comerciables susceptibles.  Descrito en USA-1924  Distribución Mundial J. Martin Silva MVZ

Transmisión • Horizontal • Altamente infeccioso • Infección a través del tracto respiratorio superior y conjuntiva ocular • Contacto directo entre aves afectadas y susceptibles • Diseminación entre galpones es más lenta que otras enfermedades respiratorias • Vertical: no fue comprobada • Incubación: 6 - 12 días

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Morbilidad y Mortalidad

Forma aguda - Aves jóvenes o adultas Morbidad: Mortalidad:

50 - 90 % 5 - 20 %

Depende de las infecciones secundarias y/o Deficiencias en el manejo

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Signos clínicos en gallinas Forma aguda La tráquea es el principal órgano afectado • Caída en el consumo de ración • Caída elevada en la producción de huevos sin alteración de la calidad de la cáscara • Tos, estornudos • Exudado sanguinolento a través de la tráquea • La infección persiste en el galpón por un período de 2 a 6 semanas

Forma suave Cepas de baja patogenicidad • Diseminación lenta • Conjuntivitis y tos • Mortalidad ausente o reducida • Caída en la producción de huevos • Tiempo de recuperación: 2 a 3 semanas

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Laringitis de sorosa a caseosa

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Laringotraqueítis

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Lesiones Varían de acuerdo a la severidad del brote: • Traqueítis hemorrágica; • Presencia de tapones caseosos o coágulos en la tráquea; • Exceso de moco; • Conjuntivitis; • Corpúsculos de inclusión nuclear en las células epiteliales de la tráquea. • La infecciones secundarias pueden determinar el aparecimiento de otras lesiones en los sacos aéreos y pulmones.

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Diagnóstico • Signos clínicos y lesiones • Pruebas sorológicas (AGP, inmunodifusión en gel y ELISA) • Aislamiento e identificación del agente • Reconocimiento de corpúsculos de inclusión intranucleares en la tráquea (aparecen solamente en el período entre 3-6 días pos-infección) • Huevos embrionados SPF - formación de placas opacas en la MCA. • Sistemas más sensibles: células hepáticas de embriones (CEL), células de riñones de pollitos (CK) o células de riñones de embriones (CEK).

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Diagnóstico  Clínico  Serología positiva  Histopatología: - Tráquea - Laringe - Conjuntiva ocular - Cuerpos de inclusión intranucleares  Molecular PCR

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DIAGNOSTICO PCR

HISTOPATOLOGIA Positivo / Negativo

Positivo / Negativo VACUNAL

CEO

CAMPO

Un día

4 días

TCO J. Martin Silva MVZ

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Prevención y control

• Limpieza y desinfección • Bioseguridad • Vacío sanitario • Mejorar programas de vacunación contra otros agentes respiratorios y disminuir la presencia de agentes inmunosupresores

• VACUNACIÓN J. Martin Silva MVZ

Tipos de vacunas • Vacunas en cultivos de tejidos

• Vacunas en huevos embrionados

– Más atenuadas

– Menos atenuadas

– Poca reacción pos-vacunal

– Moderada reacción posvacunal

– Poca diseminación horizontal

– Diseminación horizontal

– Protección moderada

– Excelente protección

– No recomendada en áreas con cuando agudo de la enfermedad

– Únicas recomendadas en áreas con cuadro agudo de la enfermedad – Leve conjuntivitis transitoria

• Interacciones: No pueden ser aplicadas en asociación a otras vacunas de tropismo respiratorio. Debe mantenerse un intervalo de 14 días entre vacunaciones

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• Vacunas recombinantes (Viruela) – Sin reacción pos-vacunal – Protección irregular – Posibilidad de ser neutralizada por la inmunidad contra la viruela – No recomendada en zonas donde ocurren brotes de viruela

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Coriza Infecciosa

Coriza infecciosa es una enfermedad respiratória aguda o crónica de aves de todas las edades clinicamente más severa en aves adultas • Avibacterium paragallinarum • Agente causal aislado en 1931 por el Dr. Blieck. • La bactéria fue denominada: - Bacillus haemoglobinophilis coryza gallinarum

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Agente causal • Avibacterium paragallinarum - Gram – - No móvil - forma cocoide - pleomórfica • Tres serotipos diferentes: – EUA – Japão • • • • • •

A B* C Bv 1 - 2

Cepas NAD dependientes o independentes Crecimento en agar sangre o chocolate Crecimento satelital (cepa alimentadora de staphylococcus) *variantes Microaerófilo 5% CO2 No esporula

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Período de Incubación

• Período de incubación 1- 4 días • Morbidad alta • Mortalidad baja

Transmisión

• Horizontal • Principal reserva de infección: • Aves con enfermedad crónica, infección latente o portadores sanos. • vectores

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CLASIFICACION Avibacterium paragallinarum

Page

Serovares A, B y C

Kume

Serogrupos I, II y III y 7 serovares HA

Blackall

Serogrupos A, B y C con serovares A1, A2, A3, A4, B1, C1, C2, C3 y C4.

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Signos clínicos

• • • • •

Senos edemaciados Edema facial Descarga nasal serosa a mucosa Conjuntivitis Caída en el consumo de agua y ración • Caída en la producción - hasta 40%

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Efecto de coriza infecciosa y como se propaga en un lote

100

% prod. huevos/hembra/día

90 80 70 60 50 40 23 24 25 26 27 28 29 30 31 32 33 34 35 36 37 38 Edad en semanas Hilera 1-24 Hilera 49-72

Hilera 25-48 Hilera 73-96

Universidad de Califórnia, 1994 J. Martin Silva MVZ

Coriza infecciosa • -

El cuadro se asocia a infecciones secundarias MG Bronquitis Infecciosa aPMV Laringotraqueítis E. coli

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Diagnóstico

• Exámen bacteriológico • Serología

– Prueba de HI para detectar anticuerpos y sorotipificar. – Solo hay correlación de títulos de HI y protección para el serotipo A

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Bacteriología

Cepas NAD dependientes o independientes Crescimento em ágar sangre o chocolate Crescimento satélite (cepa alimentadora de Staphylococcus aureus)

R134E_00_152

Diagnóstico diferencial • • • • • • • • •

Micoplasmosis Enfermedad de Newcastle Bronquitis Infecciosa Síndrome da cabeza hinchada Laringotraqueítis Metapneumovirus / SHS E. coli Viruela Cólera

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Prevención y control

1- Higiene y Sanitización • A. paragallinarum es rápidamente inactivado fuera del cuerpo del hospedero. • Fácil desinfección. • Sistema all-in - all-out requerido para la erradicación de la enfermedad. J. Martin Silva MVZ

Prevención y control

2- Tratamiento • • • • •

Sulfonamidas (no en ponedoras) Estreptomicina Tetraciclinas Eritromicina Desventajas: - resíduos y toxicidad (sulfonamidas)

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Prevención y control

3 - Vacunación • •

Vacuna inactivada 2 dosis (6 – 8 y 16 –18 semanas de edad)

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Infecciones por M.gallisepticum

Comúnmente designadas como “Enfermedad Crónica Respiratoria” en pollos y gallinas (CRD) o “Sinusitis Infecciosa” en pavos Distribución: Mundial

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Serotipos del Mg • Solamente un serotipo • Diferentes patotipos

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Hospedadores Naturales • Gallinas, pollos • Pavos • Patos

• Gansos • Faisanes • Codornices

Otras aves domésticas o silvestres

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Pérdidas económicas debidas a infecciones por M.gallisepticum

1. Directas

- Mortalidad embrionaria - Mortalidad en los pollos - Crecimiento lento - Decomisos - Caídas de producción/huevos

5 - 20% 5 - 10% 8 - 25% 5 - 10% 8 - 20%

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Pérdidas económicas debidas a infecciones por M.gallisepticum 2. Indirectas

Incremento en la sensibilidad a:

- Infecciones por E.coli - Infecciones por H.paragallinarum - Bronquitis Infecciosa - Enfermedad de Newcastle - Virus vacunales - Mal manejo - Depresión del sistema inmune

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Transmisión • • • • •

Vertical Contacto directo con portadores infectados Aire (polvo y aerosoles) Equipo contaminado Semen

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Signos Clínicos en pollos/gallinas • • • •

Ronroneos, estornudos, descarga nasal Caída en el consumo de piensos Pérdida de peso Caída en la producción de huevos

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Signos clínicos en pavos • • • • • •

Descarga nasal con formación de espuma en los ojos Ronroneos y estornudos Hinchazón del seno paranasal / sinusitis Ojos cerrados Caída en la producción de huevos Alteraciones del sistema nervioso central en pavitos

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Morbilidad y Mortalidad Aves jóvenes Morbilidad: Mortalidad:

70 - 90 % 5 - 30 %

Depende de las infecciones secundarias y/o el mal manejo

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Lesiones • Exudado catarral en los cornetes nasales, traquea, bronquios y sacos aéreos • Sinusitis • Aerosaculitis con exudado caseoso

Casos severos: • Pericarditis fibrinosa y perihepatitis

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061719_168

061719_169

Diagnóstico Diferencial: gallinas/pollos • • • • • •

CRD por E. Coli EN BI • OR Coriza • LT Cólera • MS Viruela • Pneumovirus

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Diagnóstico diferencial: Pavos • • • • • • •

Cólera M.synovie Ornithosis Influenza Aviar Pneumovirus OR Deficiencia de vitamina A

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Diagnóstico • Signos clínicos y lesiones • Pruebas serológicas • Aislamiento e identificación del agente (PCR)

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Diagnóstico Serología • Prueba de aglutinación rápida en placa (diluciones > 1:8) • I.H.A. Test (títulos de 1:16 positivos) • Elisa

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Diagnóstico Serología: 90/539 CEE 60 muestras por lote (95% de confianza y 5% de prevalencia) • Prueba de aglutinación rápida en placa • Lectura en 2 minutos • En caso de dar positivo, hacer diluciones en base 2 y también IHA Se considera un lote como positivo cuando como mínimo el 15% de las muestras no diluidas son positivas y como mínimo el 3% de las muestras son positivas en una dilución 1:8 (título 3). J. Martin Silva MVZ

Prueba de aglutinación rápida en placa • Una gota de suero + una gota de antígeno • Positivo si la aglutinación ocurre dentro de 2 minutos • Reacciona ante la presencia de IgM (rápido) • Se recomienda calentar el suero a 56°C durante 30 minutos • El suero puede ser diluido

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Diagnóstico Serología: Falsos positivos en la ARP

• Suero o antígeno ha estado congelado • Vacunas inactivadas • Suero turbio o contaminado

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Control de Mg 1. Erradicación - (campañas nacionales) 2. Uso de Antibióticos 3. Vacunaciones - Bacterinas (inactivadas) - vacunas vivas (F, 6/85, TS11)

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Prevención y control Erradicación por • Eliminando la transmisión vertical • Previniendo la transmisión horizontal – reproductoras libres de MG (control serológico) – higiene y desinfección – sistema todo dentro - todo fuera J. Martin Silva MVZ

Balance entre la salud y la enfermedad

Ambiente

Enfermedad

Agente

Aves

Puntos de importancia. • • • • • • • • • • • •

Conocer la situación sanitaria de la región Evaluar el nivel de desafío de las enfermedades Evaluar el riesgo de intrpoducir enfermedades Conocer las instalaciones Conocer las características de la vacuna Conocer compatibilida dentre vacunas Conocer las limitacionesd elos métodos de vacunación Entrenamiento al personal en el uso correcto de los biolóigicos Acatar las recomendacions del fabricante Revisar regularmente el programa de vacunación Usar solo vacunas que se requieran Cuando pase algo mantenener la calma

Gracias por su confianza trabajamos con usted para hacer de su empresa avícola un negocio más rentable Jesús Martín Silva Castro. MVZ. EPAA Poultry Key Account Manager +507 65503931 martí[email protected] [email protected]