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Aporte individual Importancia y objetivos de Fito-mejoramiento Presentado por: Alexander Justino Mejía Yepez_Codigo_1.0

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Aporte individual Importancia y objetivos de Fito-mejoramiento

Presentado por: Alexander Justino Mejía Yepez_Codigo_1.085.934.968

Presentado a: Camilo Andrade Cárdenas

Escuela de Ciencias Agrícolas, Pecuarias y del Medio Ambiente ECAMPA Universidad Nacional Abierta y a Distancia UNAD Junio 2020

Desarrollo del aporte individual. Los sistemas de reproducción en las plantas. 4. Realizar un cuadro comparativo en el que explique las diferencias y similitudes entre las diferentes formas de reproducción asexual y sus variantes, dando ejemplos.

Formas de reproducción Diferencias asexual Bipartición La reproducción se realiza mediante una División de la información genética de la célula madre. Esporulación

Fragmentación

Gemación

Partenogénesis

La reproducción se realiza mediante la producción de esporas que se llaman esporangios. Su reproducción inicia con la selección de una parte del individuo madre, y de este se produce un organismo idéntico Su reproducción se genera con la formación de otro individuo con la misma información genética, que crece como apéndice del organismo inicial. Su reproducción se genera mediante la intervención, del gameto femenino, donde se divide sin la intervención del gameto masculino.

Similitudes

Ejemplos

Presentan un proceso de reproducción.

Protozoos, levaduras

Su reproducción se procede sin la función de células sexuales. Se hace necesaria la información genética.

Algas, helechos

Cada proceso El árbol Colorín, empieza por una las Higueras célula madre o un grupo de células.

Son reproducciones más comunes de los reinos, monera, protista y fungí.

Algunas medusas, corales

Son reproducciones biológicas

Abejas, algunas algas.

Un ser vivo puede generar otro ser vivo de

su misma especie. Información tomada de: (A. 2017,04. Ejemplo de Reproducción asexual.

Revista Ejemplode.com. Obtenido 04, 2017, de https://www.ejemplode.com/36-biologia/4484ejemplo_de_reproduccion_asexual.html) Fuente: https://www.ejemplode.com/36-biologia/4484ejemplo_de_reproduccion_asexual.html#ixzz6PNmPRse5

5. Explica que es la variación soma clonal y como puede ser utilizada en el fitomejoramiento, de algunos ejemplos de plantas en la cual esta técnica ha tenido éxito. “La variación somaclonal es un evento que puede aparecer durante el cultivo in vitro de tejidos vegetales; son modificaciones genéticas en las células y los tejidos cultivados. Esta variación se ha usado en procesos de mejoramiento genético y para ampliar la variación genética natural; sin embargo, cuando el objetivo es la propagación clonal de una variedad, como en el caso de la micropropagación del árbol del caucho (Hevea brasiliensis) mediante embriogénesis somática, la variación somaclonal resulta un fenómeno poco deseado.” Medina C, García I, (2007) “Antes que la embriogénesis somática en Hevea brasiliensis pueda ser explotada en la propagación masiva de material de interés comercial, la fidelidad genética de los embriones somáticos debe ser evaluada, y así mismo, verificar la producción de verdaderos clones, ya que, según Larkin y Scowcroft (3), puede existir una variabilidad genética que surge como consecuencia de las diferenciación celular que ocurre durante el cultivo in vitro. Este fenómeno llamado “variación somaclonal”, se define como la variación fenotípica y genética entre plantas propagadas clonalmente a partir de un clon donador simple (4). La variación somaclonal es de interés práctico debido a su uso potencial en el mejoramiento de plantas; sin embargo, si el principal objetivo es la propagación clonal in vitro o la transformación, este tipo de variación es un fenómeno no deseado (5). En plantas con ciclos de vida largos, este fenómeno constituye una desventaja para la micropropagación, ya que la mutación ocasional sólo puede ser detectada tardíamente, durante los estadios de desarrollo del árbol o aun en su descendencia (6).”Medina C, García I, (2007). Ejemplo y aplicación en fitomejoramiento. Variación somaclonal en seis genotipos de arroz

“El objetivo de la investigación se basó en utilizar Somaclones (S) de 6 genotipos de arroz, Oryza sativa L., mejorando algunas características agronómicas y de calidad de grano a través de variación somaclonal en la variedad CIMARRÓN” y las líneas avanzadas: “CT10310-15-3-2P-4-3 ”, “CT10338-16-1-1-1T”, “CT9682-2-M-14-1-M-1-3PM”, “CT9868-3-2-3-1-4P-M1-3P” y “CT9509-17-3-1-1-M-1-3P-M-3-3P”. Tres S de CT10310-15-3-2P-4-3, de 41 S evaluados en INIA Guárico, presentaron los mejores resultados para calidad de grano (mayor porcentaje de grano entero, centro blanco y yeso reducidos) y uno de estos S presentó además una reducción en la esterilidad de las espiguillas. La caracterización molecular fue realizada con marcadores RAPDs (ADN polimórfico amplificado al azar), llevados a cabo en el Laboratorio de Biotecnología del INIA-CENIAP. La temperatura de gelatinización de CT9868-3-2-3-1-4P-M-1-3P mejoró, encontrándose S con valores intermedios. Cuatro S de CIMARRÓN mostraron menor porcentaje de infección con el virus de la hoja blanca, pasando de 75% de infección a un máximo de 30% de infección en los S. En los S de CT10338-16-1-1-1T no se obtuvo ninguno con resistencia completa al daño directo de sogata (Tagosodes orizicolus), sin embargo, algunos de ellos presentaron reacción intermedia al insecto. El 92,47% de los S de CT9682-2-M-14-1-M-1-3P-M resultaron resistentes al virus de hoja blanca. Los S del CT9509-17-3-1-1-M-1-3P-M-3-3P evaluados en INIA Portuguesa tuvieron un comportamiento agronómico inferior al testigo local” INIA-FUNDARROZ, (2006). Tomado de: Medina C, García I, (2007). Análisis AFLP de variación somaclonal en embriones somáticos de Hevea brasiliensis. Rev. Col. Cienc. Quím. Farm. Vol. 36 (1), 70-80, 2007. Pag 1118. Tomado de: http://www.scielo.org.co/pdf/rccqf/v36n1/v36n1a06.pdf

INIA-FUNDARROZ, (2006).variación somaclonal de seis tipos de arroz. Agronomía tropical. Agronomía Trop. v.56 n.4 Maracay dic. 2006. Tomado de:

http://ve.scielo.org/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0002192X2006000400016 6. Realiza un listado de 10 plantas con sus nombres científicos indicando el grado de autogamia o alogamia que presentan. Si no se tiene información sobre el grado a de alogamia o autogamia de una planta, ¿Cómo haría Usted para determinar dicha condición en la planta?

1. Quinua (Chenopodium, quinua willd): Autogamia: varía desde 1,5%, para una distancia de separación de 20 m hasta 9,9% a 1m de separación.

Fuente: http://www.fao.org/tempref/GI/Reserved/FTP_FaoRlc/old/prior/segalim/prodalim/prodveg/c drom/contenido/libro03/cap6.htm