Anestesia en Animales Acuaticos

Anestesia de animales acuáticos: Prof Lindsay G Ross Institute of Aquaculture University of Stirling Scotland Referenc

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Anestesia de animales acuáticos: Prof Lindsay G Ross Institute of Aquaculture University of Stirling Scotland

Referencias útiles: BSAVA Pesca Ornamental: Editada por W Wildgoose. 2002. Farmacología Pesquera Aplicada: Treves-Brown. Kluwer Academic. 2000. Técnicas de Anestésicos y Sedantes para Animales Acuáticos, Ross y Ross. Segunda Edición. Blackwell Science. 1999.

Que animales acuáticos? Invertebrados: Mollusca & Crustácea Peces:- los mas importantes Anfibios: Ranas Reptiles: Tortugas y Cocodrilos

y Porque utilizar anestesia? Es necesaria para la mayoría de las manipulaciones Reducción de estrés (para el pez y para Ud)

Que es el estrés?: Puede ser a corto plazo Puede ser a largo plazo En animales acuaticos es causado por: – Manipulación – Crowding [alta densidad] – Ambiente fisico y quimico

Como se manifiesta el estrés? Indicadores caracteristicos externos en peces: ATAXIA – Movimiento irregular TACHYVENTILACION – Rapidez del operculum CAMBIO DE COLOR – Mas Oscuro o Mas Pálido

Frecuencia Cardiaca: 1

E s tim u lo

E s tim u lo

Estimulo: golpecito al acuario

Frecuencia Cardiaca: 2 Operación para insertar electrodos estímulo

Efectos hematológicos: Concentración o Dilución Dilatación celular Osmolaridad Niveles de Na/K/Cl Hematocritos Leucocritos No constante

Como reaccionan los peces a los agentes estresantes? Acciones nerviosas – Movimiento – Frecuencia cardiaca – Cambio de color Accion hormonal – Catecholaminas – Esteroides Tejidos endocrinos en peces

Efectos de catecolaminas: Aumenta la glucosa de la sangre Aumenta la lactosa de la sangre Cambio en acidos grasos libres En general: Tachycardia RAPIDO Tachyventilación Vasodilatacion o vasocontracción Aumento de hematocritos Glucogenesis en higado y musculos Aumento peristalsis

Cortisol y el eje HPI: [Hypotálamo – Pituitaria – Interrenal] Acción del Hypotálamo - Liberacion de ACTH del pituitaria - Tejidos interrenales liberan Cortisol Resultados en: Numerosos efectos metabolicos positivos Susceptibilidad a enfermedades Disminucion del crecimiento Alteracion en el proceso reproductivo N.B. puede adaptarse a esto!

Efectos de Cortisol: Movilización de proteínas Aumento de síntesis de proteínas En general: Inhibición del crecimiento LENTO Reducción del uso de carbohidratos Aumento de glucogenesis de las proteínas Deposición de glycogen en el higado Cambios en las membranas celulares Aumento síntesis Na/K ATP-asa

µg Cortisol /100cm3 serum

Producción de Cortisol en Onchorhynchus nerka: 100 80 60 40 20 0 0

20

40

60

80

Time (mins)

100

120

Metodos de reduccion de estres: Reducir la duración de la acción del agente estresante Tener cuidado especial si la temperatura es alta Evitar agentes estresantes simultáneos Usar solución de sal diluida Restringir comida anticipadamente Reducir la densidad poblacional Usar anaestesia suave

Que es la Anestesia? Sedación Anestesia Estados relativos en continuum Provee grados de: – – – –

inmovilización relajación inconsciencia analgesia

Etapas de Anestesia en peces: 1 Etapa Plano I-1 Sedacion ligera – Mocion y ventilacion reducida

Etapa Plano I-2 Sedacion profunda – Como I-1 mas leve analgesia

Etapa Plano II-1 Anestesia ligera – Buena analgesia + perdida parcial del equilibrio

Etapas de Anestesia en peces : 2 Etapa Plano II-2 Anetesia profunda – Tono muscular nulo, perdida de equilibrio y ventilación

Etapa Plano III Anestesia quirúrgica – Ningún tipo de reacción

Etapa Plano IV Colapso medular – Infarto cardiaco, eventual muerte

Inducción de anestesia: Inducción lento Con benzocaina Ver las etapas Recordar, en realidad es mucho mas rapido 3m 21s

Factores biologicas que afectan la eficacia: Especies Tamaño y peso corporal Contenido de lípidos Sexo y madurez Condicion física (fitness) Estado de salud

Factores ambientales que afectan la eficacia: Temperatura Salinidad Contenido mineral en el agua

Via de Inhalacion de Drogas: El metodo mas importante:

SESOS BRANQUIAS

Drogas para la inhalacion de anestesia: 1 4-Estirilpyridina Dietil Eter Chloral Hydrate Tertiary Amyl alcohol Metilparafetano Cloroformo Tribromoetano Clorbutano

Drogas para la inhalacion de anestesia : 2 Sodio amital Sodio Pentobarbiton Secobarbital Piscaina Propoxato Uretano (* Cuidado - Carcinogenico)

Drogas para la inhalacion de anestesia : Los mas preferidos Sulfato Metano Tricaina (MS222) [4 - 20 a 100 - 200 mg.l-1] Benzocaina [4 - 20 a 100 - 200 mg.l-1 ] Quinaldina [2 – 6 a 50 - 200 ppm] 2-Phenoxitanol [0.1 a 0.5 cm3.l-1 ] Metomidato (& Etomidato) [0.4 – 1 a 5 - 10 mg.l-1 ] Aceite Clavo [25 a 100 ppm] y Aqui-S [6 a 17 ppm]

MS222: Sulfato Metano Tricaina [Finquel] Polvo cristalino y blanco Desarollado por SANDOZ Altamente soluble (por medio del –SO3H) Acido en solución [4 - 20 a 100 - 200 mg.l-1]

Benzocaina: Altamente indisoluble Disuelve en etanol o acetona No-Acido Menos costoso que MS222 (~10x) [4 - 20 a 100 - 200 mg.l-1]

0m 24s

Dispersion de benzocaina en agua

Quinaldina: Quinaldina es indisoluble Liquido aceitoso, irritente al piel Disuelve en etanol o acetona Bajo costo Sulfato de Quinaldina es soluble Mas agradable, mas costoso [2 – 6 a 50 - 200 ppm]

2-Phenoxietanol: 2-PE Liquido claro/amarillo Necesidad de dissolver en Etanol Relativamente barato 0.1 a 0.5 cm3.l-1

Metomidato y Etomidato: Usado en medicina humana Soluble en agua pero no estable Inducción y recuperación son rapido No hay liberación de cortisol durante y despues de anestesia PERO, con liberación tardía luego de la recuperación [0.4 – 1 a 5 - 10 mg.l-1 ]

Aceite Clavo y Aqui-S: Aceite Clavo. Conocido desde muchos años Contiene Eugenol y turpenes [mezcla complicada] Efectivo, pero problemas de sabor 25 a 100 ppm Aqui-S. Producto comercial Basado en isoeugenol y polisorbato Categoria FDA “GRAS” Ganando popularidad Otorga una induccion relativamente lenta Buena recuperacion 6 a 17 ppm

Esquema de trabajo: Es util para evitar problemas Especialmente quando trabajando con muchos animales

Esquema de trabajo para inhalación de anestesia usando benzocaina: 1. 2. 3. 4. 5. 6. 7. 8.

Solución Stock 100g de Benzocaina por litro de etanol o acetona. Almacenar en una botella obscura y refrigerar. Preparar el equipo relevante antes de continuar adelante, ejemplo: redes, cubetas, jeringas, agujas, materiales inyectables, papeles de limpieza etc. Prepare el baño de anestesia lentamente añadiendo la solución al agua y revolviendo constantemente. Ej.: para una solución de 100 mg 1-1, agregar 10 cm3 de solución stock por cada 10 litros de agua. Prepare un estanque de recuperación con agua limpia y bien oxigenada. Ajustar el baño de anestesia y el estanque de recuperación a la misma temperatura del estanque de mantención. Cuidadosamente transfiera el pez del baño anestésico. Minimice el tiempo en el baño, limite el tamaño del lote para evitar que queden peces por mas de 10 minutos dentro del baño anestésico. Comience el procedimiento tan pronto como el pez pueda ser manipulado fácilmente, sin dificultad.. Inmediatamente ubique al pez dentro del tanque de recuperación. La recuperación substancial ocurrirá normalmente dentro del primer minuto, aunque algunas especies necesitaran un poco mas. Evite que el tanque de recuperación este sobrepoblado (alta densidad)..

Anestesia de inhalación: Aplicación basico: PESAR MEDIR ENREDAR

Agua

Anestetico

MARCAR, ETC

Agua

Anestesia de Inhalación: Aplicación controlado en el laboratorio:

Recuperación: Normalmente relativamente rapido Puede ser prolongado si dosis es alto o tiempo es largo 1m.44

Recuperación y la frecuencia cardiaca: Reflejo frecuencia cardiaca – flujo de agua Observar el flujo de agua – con y sin Observar respuestas en FC Puede ser usada para aumentar recuperación 2m 35s

Anestesia Inyectable : Rutas: Sino del orbito Sinos de aletas

Musculo rojo

Corazon

Peritoneo

Arteria o vena caudal

Músculo rojo: Bloque de Musculo Epaxial (Musculos mozaico o blanco) Columna vertebral

Musculo rojo

Bloque de Musculo Hypaxial (Musculos mozaico o blanco

Inyectando hacia el músculo rojo: Debajo de las escamas Evitar fuga de droga

Anestesia Inyectable: Drogas: Alphaxolon (Saffan) Propanidid (Epontol) Ketamina (Vetalar) Xylazine (Rompun) Etorfina (Immobilon) + Diprenorfina (Revivon) Barbituricos (Nembutal/Ambital/Brenbital/Pentotal) Lignocaina (solo en la espina) Procaine (solo local)

Otros métodos químicos: Gases (en agua) Halotano Dioxido de Carbono Bicarbonato de Sodio + Acido Sulfurico = CO2

Métodos no químicos: HYPOTERMIA Enfriar usando hielo Enfriar usando hielo seco (CO2) – Cuidado con CO2 en solucion

Tasa de enfriamiento es importante Enfriamiento instantaneo es limitada

Métodos no químicos: ELECTROANASTESIA

Requiere Equipo Es Peligroso!! Fuerza de campo es importante Voltage de cabeza a cola Produce efectos graduales

Aparato de Electroanastesia:

FUENTE DE VOLTAGE

CIRCUITOS DE CONTROL

SISTEMAS DE AVISO!!

CONTENIDOR DE ANIMALES

Efectos de la fuerza de campo y duración: Fuerza (volts/cm)

9

Anastesia quirurgica

8 7

Anastesia Ligera

6 5

Sedacion

4

Taxis

3 2 0

2

4

6

8

10

Tiempo (seconds)

12

14

16

Electroanastesia: Uno pulso de dos segundos Ver la faja oscura en lado del cuerpo

1m 30s

Al final - Eutanasia: Muerte Humana Sufrimiento fisico minimo Sufrimiento mental minimo

Razones Para terminar uno procedimiento Para cosechar tejidos Para aliviar molestias Cosecha de productos

Consideraciones antes de Eutanasia : Preparar para causar la menor molestia posible Considerar la seguridad de personal Utilisar métodos confiables y conocidos Evitar daños a tejidos (PM)

Métodos de Eutanasia: Fisicos: Golpe certero en la cabeza Atras del ojo (y destruccion de sesos y columna vertebral con aguja)

Métodos de Eutanasia: Químicos: Sobredosis de droga Concentración a lo menos doblada N.B. No utilice quimicos cuando trabaje en processo de cosecha de produccion

Un problema para acuicultura en el futuro? Bienestar de animales en granjas

Fin: © Prof L G Ross, University of Stirling, Scotland

[email protected] http://www.aquaculture.stir.ac.uk/GISAP/

Traducido por: Bernardita González (Periodista) Revisado por Matías del Campo (Ing en Acuicultura, BSc. PhD ) y Prof L G Ross