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FACULTAD DE CIENCIAS DE LA SALUD “Fernando Cabieses Molina” Escuela de Medicina Humana Biología Celular MEH- 101-2015

Contenido: 1. Datos generales 2. Sumilla 3. Competencia General 4. Capacidades 5. Programación de contenidos 6. Metodología 7. Estrategias Didácticas 8. Recursos Didácticos 9. Sistema de evaluación 10. Bibliografía de consulta. 11. Plana Docente 12. Cronograma de contenidos

2018

BIOLOGÍA CELULAR SILABO

I. DATOS GENERALES Facultad

Ciencias de la Salud

Carrera Curso Condición Código Naturaleza N° de Créditos Requisitos N° de Horas Semanales Aula / Laboratorio Fecha de inicio Fecha de término Duración de ciclo Semestre Académico Ciclo Coordinador del curso

Medicina Humana Biología Celular Obligatoria MEH- 101-2015 Teoría – Práctica: Taller y Laboratorio 4 Ninguno Teoría: 2 Práctica-Taller: 2 Teoría: Aula Práctica -Taller: Aula 26 de Marzo del 2018 14 de Julio del 2018 16 semanas 2018-I I Del Pino Robles, Joyce

Docentes del Curso

Alvis Davila, Rafael Cáceres Rey, Omar Del Pino Robles, Joyce Dione Iziga Goicochea, Roger Héctor Sánchez Sotomayor

Práctica- Laboratorio: 2 Práctica: Laboratorio A 301- A 313

II. SUMILLA. El curso de Biología Celular es de condición obligatoria, pertenecen al área de formación básica de la Escuela de Medicina Humana, es un curso teórico-práctico, comprende conocimientos y habilidades generales aplicadas a los campos de las Ciencias de la Salud. El desarrollo del curso abarca cinco unidades didácticas: la célula, características y tipos, membrana celular, matriz extracelular y citoplasma, núcleo interfásico y ciclo celular. Al término del curso el estudiante será capaz de utilizar y aplicar los conocimientos de la estructura y función celular en los diferentes niveles de organización de los seres vivos, así como dominará las técnicas de bioseguridad y ejecutará con suficiencia y destreza el trabajo de laboratorio. Además, tiene el propósito de iniciar la formación del estudiante como futuro profesional, potenciando a lo largo del curso el pensamiento científico, estratégico, competitivo y social, contribuyendo al perfil del egresado de Medicina Humana promoviendo la práctica del respeto de la vida, la naturaleza y la ética.

III. COMPETENCIA Al final del proceso de enseñanza-aprendizaje el estudiante: Analiza a la célula como la unidad básica de todo ser vivo a partir de la asociación de sus procesos al funcionamiento de un organismo pluricelular, relacionando sus anomalías con las patologías humanas, valorando su importancia en el funcionamiento de la vida y la salud.

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IV. CAPACIDADES Al finalizar las unidades el estudiante: 1.

Interpreta los conocimientos que le permiten obtener una visión general de los tipos de célula, a través de una revisión documental compartiendo en equipo las actividades dentro del aula, observando las normas de Bioseguridad.

2.

Elabora un informe como resultado de su trabajo en el laboratorio a través de la integración del conocimiento sobre la organización estructural y funcional de la membrana plasmática y los resultados de sus experiencias.

3.

Discrimina los componentes celulares en los aspectos morfológicos, moleculares, funcionales, biogénesis y sus modificaciones básicas, empleando materiales educativos y los resultados de sus experiencias de laboratorio poniendo interés en aquellos aspectos relacionados con enfermedades humanas.

4.

Identifica la estructura y organización del genoma y el rol de los ácidos nucleicos en los procesos de herencia, expresión génica y su regulación, ejecutando con destreza el uso de los equipos y técnicas básicas de laboratorio, sin exponerse ni exponer a los demás a situaciones de peligro observando las normas de bioseguridad.

5.

Interpreta el ciclo celular de una célula eucariota animal valorando el papel de los controladores de este proceso, tomando conciencia de su importancia en el desarrollo del cáncer.

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V. PROGRAMACIÓN DE CONTENIDOS

UNIDAD DE APRENDIZAJE I LA CÉLULA CARACTERÍSTICAS Y TIPOS CAPACIDAD: 1. Interpreta los conocimientos que le permiten obtener una visión general de los tipos de célula, a través de una revisión documental compartiendo en equipo las actividades dentro del aula, observando las normas de Bioseguridad INDICADORES DE INSTRUMENTOS DE SEMANA SESIÓN CONCEPTUAL PROCEDIMIENTAL ACTITUDINAL LOGRO EVALUACIÓN Conoce el silabo del curso Utiliza el silabo como documento Valora el silabo como 1 guía para el desarrollo del curso. instrumento en el seguimiento de los avances del curso. Distingue las características generales Confecciona un cuadro de Respeta las normas de Discrimina de la célula procariota y eucariota. diferencias entre la célula conducta establecidas en el adecuadamente entre la Primera 2 procariota y eucariota. aula. célula procariota y Semana eucariota elaborando un cuadro de doble entrada Integra y ejecuta en su actividad Respeta y acepta las normas Aplica las normas de Conoce y señala las normas de diaria en el laboratorio las normas de bioseguridad y comprende 3 bioseguridad en el Bioseguridad en los laboratorios. de bioseguridad. su importancia en la salud laboratorio humana. UNIDAD DE APRENDIZAJE II MEMBRANA CELULAR CAPACIDAD 2: Elabora un informe como resultado de su trabajo en el laboratorio aplicando el método científico en la integración del conocimiento sobre la organización estructural y funcional de la membrana plasmática, diferenciando sus procesos de transporte y los resultados de las experiencias. Compara los mecanismos de comunicación celular apreciando su importancia en el funcionamiento del cuerpo humano. INDICADORES DE INSTRUMENTOS DE SEMANA SESIÓN CONCEPTUAL PROCEDIMIENTAL ACTITUDINAL LOGRO EVALUACIÓN Describe la estructura de la membrana Grafica la estructura molecular Describe la estructura Respeta las normas de celular (Modelo de Singer y Nicholson), básica de la membrana celular de la membrana celular 4 conducta establecidas en el su composición molecular y sus diferenciando sus funciones desarrollando un control aula. funciones. principales. de aprendizaje. Segunda. Participa críticamente Hoja de Control de Semana Relaciona la importancia de las Discute artículos científicos Cumple con responsabilidad el en la discusión sobre el Lectura N° 1 moléculas lipídicas y proteicas que comprendiendo la importancia de rol que le corresponde 5 tema planteado y Lista de cotejo para constituyen la membrana celular en la la investigación en el logro de contribuyendo al logro de los desarrolla un control de evaluación de lecturas. fisiología celular conocimientos. objetivos planteados. lectura.

6

Conoce los microscopía.

fundamentos

de

Utiliza el microscopio con destreza, identificando los diferentes tipos de microscopía óptica realizando preparaciones básicas de muestras biológicas.

Interioriza la importancia del microscopio óptico y electrónico en el conocimiento de los seres vivos, relacionando su papel en el descubrimiento de la célula y sus estructuras internas. Cumple con responsabilidad el rol que le corresponde contribuyendo al logro de los objetivos planteados.

7

Compara el proceso de transporte a través de la membrana plasmática.

Ejecuta mediante ejemplos los procesos que ocurren en el transporte de sustancias a través de la membrana celular.

8

Formula con los conocimientos adquiridos propuestas para la resolución de problemas.

Resuelve con suficiencia problemas propuestos.

Compite en grupo con el objetivo de lograr metas planteadas y apoya a sus compañeros.

9

Distingue la permeabilidad de la Membrana Citoplasmática (ósmosis).

Interpreta los resultados de sus experiencias en el laboratorio redactando un informe siguiendo el método científico.

Respeta las normas de conducta establecidas en el laboratorio.

10

Define a los participantes y conoce los mecanismos de comunicación celular.

Elabora un diagrama ordenando las etapas de la comunicación celular.

Toma conciencia de la importancia de la comunicación celular en el funcionamiento del individuo

Tercera Semana

Cuarta Semana

Fundamenta la importancia clínica de las proteínas G. 11

Discute los mecanismos los impulsos nerviosos y la contracción muscular.

Compara el mecanismo de la contracción muscular y el impulso nervioso. Demuestra con ejemplos sencillos el funcionamiento de las proteínas G.

Descubre los adelantos que permitieron descifrar la naturaleza eléctrica del impulso nervioso y la contracción muscular. Valora la función de las proteínas G en la absorción de fármacos.

Manipula el microscopio óptico y prepara muestras biológicas para su observación. Desarrolla en colaboración ejercicios de aplicación sobre transporte a través de la membrana. Desarrolla en colaboración ejercicios de aplicación sobre transporte a través de la membrana. Elabora un informe de laboratorio siguiendo el método científico discutiendo los resultados de sus experiencias en el transporte a través de la membrana celular. Resuelve con suficiencia el control de aprendizaje sobre los mecanismos de la comunicación celular Explica a sus compañeros el tema investigado, comprendido, y resumido.

Hoja de Ejercicios de Aplicación Grupal N° 1

Rúbrica de evaluación de Informe de Laboratorio.

Hoja de Control de aprendizaje N° 1.

Lista de cotejo para evaluación de seminario

Hace un listado de las funciones de las proteínas G en el individuo. Página 5 de 23

12

Distingue la permeabilidad de la Membrana Citoplasmática (difusión y diálisis).

Comprueba el fundamento de la definición de diálisis.

Respeta las normas de conducta establecidas en el aula.

Diferencia adecuadamente los fenómenos producidos por las células expuestas a diferentes medios.

Hoja de Paso de Laboratorio N° 1. Rúbrica de evaluación de Informe de Laboratorio. Lista de cotejo

UNIDAD DE APRENDIZAJE III MATRIZ EXTRACELULAR Y CITOPLASMA Capacidad 3: Discrimina los componentes celulares en los aspectos morfológicos, moleculares, funcionales, biogénesis y sus modificaciones básicas, empleando materiales educativos y los resultados de sus experiencias de laboratorio poniendo interés en aquellos aspectos relacionados con enfermedades humanas. INDICADORES DE INSTRUMENTOS DE SEMANA SESIÓN CONCEPTUAL PROCEDIMENTAL ACTITUDINAL LOGRO EVALUACIÓN Identifica los componentes de la matriz Discrimina los componentes de la Elabora un diagrama extracelular y distingue su papel en las Participa activamente en el 13 matriz extracelular. sobre los componentes interacciones entre las células con los desarrollo de la clase. de la matriz extracelular materiales extracelulares. Toma conciencia sobre la Lista de cotejo para Argumenta el rol que cumple la matriz importancia del mecanismo de Prepara y expone una Quinta Desempeña roles diferentes en evaluación de lecturas. 14 extracelular y las uniones celulares en la fagocitosis en la eliminación presentación sobre el Semana un grupo de trabajo. Control de Lectura N° 2. la comunicación celular. de patógenos y reciclaje tema. Exposición. celular. Adquiere habilidades iniciales en Elabora un informe de Reconoce a la célula procariota y Respeta las normas de la preparación y tinción de laboratorio siguiendo el Rúbrica de evaluación de 15 eucariota e identifica estructuras conducta establecidas en el muestras celulares y tisulares los pasos del método Informe de Laboratorio. básicas. aula. para la microscopía óptica. científico. Discrimina entre los componentes del Describe los componentes del Resuelve con citoplasma e identifica los componentes citoesqueleto de una célula Comparte los saberes con sus 16 suficiencia el control de moleculares del citoesqueleto de una eucariota animal e identifica sus compañeros de clase. aprendizaje. célula eucariota animal. funciones. Compite en grupo con el Formula propuestas con los Corrige los ejercicios de Hoja de Ejercicios de Sexta Resuelve con suficiencia objetivo de lograr metas 17 conocimientos adquiridos propuestas sus compañeros, Aplicación Individual N° Semana problemas propuestos. planteadas y apoya a sus para la resolución de problemas. explicando sus errores. 1 compañeros. Utiliza la técnica de Respeta las normas de Paso de Laboratorio N° Elabora un informe de Describe sobre los principios básicos fraccionamiento celular como conducta establecidas en el 2. 18 laboratorio siguiendo el del fraccionamiento celular. medio de identificación de aula y aprecia la importancia Rúbrica de evaluación de método científico. componentes celulares y ejecuta del uso de los diferentes tipos Informe de Laboratorio. Página 6 de 23

con destreza técnicas de tinción con fluorocromos para su observación en el microscopio de fluorescencia y discrimina entre este tipo de microscopía y la de campo claro. 19

Séptima Semana

20

Identifica los compartimientos pertenecientes al sistema de endomembranas.

Comprende moleculares antibióticos.

de

los la

mecanismos resistencia a

Interpreta la importancia de los microrganismos patógenos y sus aspectos benéficos.

21

22 Octava Semana

Diferencia las organelas presentes en la célula eucariota animal y compara sus funciones. Explica los mecanismos básicos de la resistencia a antibióticos. Analiza e interpreta problemas propuestos desarrollando soluciones según lo aprendido en el curso. Explica con suficiencia los aspectos generales de los microrganismos patógenos y aspectos benéficos. Analiza, infiere y discute problemas propuestos relacionados con lo desarrollado en clase.

Control de aprendizaje práctico unidades I y II. Relaciona el rol de las mitocondrias en el metabolismo Distingue el rol de las mitocondrias en celular y compara los procesos el metabolismo celular. Formula con los de respiración aeróbica y conocimientos adquiridos propuestas anaeróbica en cuanto a la para la resolución de problemas. producción de energía. Efectúa con suficiencia problemas propuestos.

23

Formula con los conocimientos adquiridos propuestas para la resolución de problemas.

Efectúa con suficiencia problemas propuestos.

24

Compara el rol de los facilitadores e inhibidores en la respiración celular.

Elabora un respirómetro artificial y utiliza sustancias químicas

de microscopía observación de biológicas.

en la muestras

Valora las funciones de los compartimientos celulares. Cumple en la organización de los equipos de trabajo.

Demuestra responsabilidad en la organización de los equipos de trabajo. Trabaja en actividades destacando opiniones, respeto por demás.

equipo en las dentro el aula, sus resultados y mostrando gran la opinión de los

Respeta las normas de conducta establecidas en el aula.

Compite en grupo con el objetivo de lograr metas planteadas y apoya a sus compañeros. Respeta las normas de conducta establecidas en el

Resuelve en colaboración ejercicios de aplicación. Expone con suficiencia lo investigado demostrando coordinación en su trabajo en grupo. Resuelve ejercicios propuestos por el docente.

Hoja de control aprendizaje N° 2

de

Lista de cotejo para evaluación de seminario

Desarrolla una presentación sobre la TIN y resuelve ejercicios propuestos.

Corrige los ejercicios de sus compañeros, explicando sus errores.

Corrige los ejercicios de sus compañeros, explicando sus errores.

Hoja de ejercicios de aplicación grupal N° 2

Elabora un informe de laboratorio siguiendo el Página 7 de 23

como facilitadores e inhibidores de la respiración celular, interpretando los resultados obtenidos.

laboratorio. Se interesa en la importancia de los procesos bioenergéticas, como vías metabólicas indispensables para la vida.

método científico.

UNIDAD DE APRENDIZAJE IV NÚCLEO INTERFÁSICO Capacidad: 4.Identifica la estructura y organización del genoma y el rol de los ácidos nucleicos en los procesos de herencia, expresión génica y su regulación, ejecutando con destreza el uso de los equipos y técnicas básicas de laboratorio, sin exponerse ni exponer a los demás a situaciones de peligro observando las normas de bioseguridad INDICADORES DE INSTRUMENTOS DE SEMANA SESIÓN CONCEPTUAL PROCEDIMENTAL ACTITUDINAL LOGRO EVALUACIÓN Respeta las normas de Identifica los componentes del núcleo Resuelve ejercicios Ejecuta en colaboración ejercicios conducta establecidas en el 25 interfásico. Reconoce al ADN como sobre el tema que aplican la Ley de Chargaff aula. molécula de la herencia. planteado.

Novena Semana

26

27

28 Decima Semana 29

Relaciona las funciones de la matriz extracelular con el Citoesqueleto.

Interpreta y explica el proceso de la mecano transducción fuera de la célula y la respuesta de lamatriz celular.

Conoce las técnicas de extracción del ADN.

Desarrolla técnicas moleculares básicas de extracción de ADN: Utiliza kit de extracción de ADN y maneja equipos que le permiten cuantificarlo.

Describe la replicación del ADN, identifica la unidad de replicación y discrimina entre la replicación en eucariotas y procariotas. Formula propuestas con los conocimientos adquiridos propuestas para la resolución de problemas.

Elabora esquemáticamente el proceso de replicación del ADN.

Resuelve con suficiencia problemas propuestos.

Conforma equipos de trabajo teniendo en cuenta la estrategia de la organización y alcance del proyecto deseado, respetando las opiniones de los demás. Respeta las normas de conducta establecidas en el laboratorio. Valora la importancia de los avances tecnológicos en el diagnóstico clínico. Aprecia y considera la importancia del ADN como molécula que porta la información genética de la vida en nuestro planeta. Compite en grupo con el objetivo de lograr metas planteadas y apoya a sus compañeros.

Participa críticamente en la discusión sobre el tema planteado.

Extrae ADN cuantifica.

y

lo

Resuelve ejercicios de aplicación sobre replicación del ADN y explica sus resultados usando los conocimientos adquiridos. Corrige los ejercicios de sus compañeros, explicando sus errores.

Lista de cotejo para evaluación de lecturas. Control de Lectura N° 3. Exposición. Paso de Laboratorio N° 3. Rúbrica de evaluación de Informe de Laboratorio.

Hoja Control aprendizaje N° 3.

de

Hoja de ejercicios de aplicación individual N° 2 Página 8 de 23

30

31

32

Reconoce al ARN como el ácido nucleico que expresa la información genética. Conoce el ADN mitocondrial y define sus funciones en el metabolismo celular. Conoce los mecanismos de reparación del daño producido en el ADN.

Decima Primera Semana

Decima Segunda Semana

Comprende los fundamentos de la reacción en cadena de la polimerasa (PCR).

Aplica los fundamentos de las técnicas de PCR.

Elabora esquemáticamente proceso de transcripción.

el

Procesa los conceptos vertidos y explica la importancia del ADN mitocondrial en el diagnóstico clínico.

Respeta las normas de conducta establecidas en el aula. Valora el avance de la ciencia en el estudio de las enfermedades humanas. Respeta las normas de conducta establecidas en el aula. Evalúa, diferencia y discute sus resultados con sus compañeros de trabajo. Valora los mecanismos de reparación del ADN como sistema homeostático de la célula.

Obtiene múltiples fragmentos de ADN.

Desarrolla propuestos.

ejercicios

Define en sus propios términos los conceptos de ADN mitocondrial y sus funciones. Participa críticamente en la discusión sobre el tema planteado.

33

Distingue los principios básicos de la electroforesis.

Usa las técnicas básicas de las tecnologías modernas que permiten estudiar la estructura y función de los ácidos nucleicos, su organización y expresión génica, así como el alcance de la manipulación genética de microorganismos, plantas y organismos complejos.

34

Relaciona la estructura y organización del genoma y entiende el rol de los ácidos nucleicos en los procesos de herencia, expresión génica y su regulación.

Enumera las características del código genético y lo relaciona con el proceso de traducción

Toma conciencia del rol del Dogma central de la Biología Molecular en la expresión de la información genética en los seres vivos.

Resuelve con suficiencia un control de aprendizaje.

35

Explica el rol de los poros mitocondriales y su importancia en procesos como la respiración celular y la apoptosis

Investiga, comprende, explica y describe con suficiencia la importancia de la comunicación intra y extra mictocondrial en el funcionamiento celular.

Asume y valora el avance de la ciencia médica en el estudio de las enfermedades humanas.

Participa críticamente en la discusión sobre el tema planteado.

36

Compara los conocimientos aprendidos para la resolución de ejercicios de Extracción de ADN, PCR y electroforesis.

Aplica los fundamentos y experiencias obtenidas en clase desarrollando ABP

Respeta las normas conducta establecidas en aula y valora el uso de técnicas moleculares en

Resuelve ejercicios de aplicación.

Respeta las normas de conducta establecidas en el aula. Valora el avance de la ciencia en el estudio de las enfermedades humanas.

Interpreta el gel obtenido de los productos amplificados.

de el las el

Lista de cotejo para evaluación de seminario

Paso de Laboratorio N° 4.

Lista de cotejo para evaluación de lecturas. Control de Lectura N° 4. Exposición. Informe de Laboratorio.

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análisis del genoma aplicado al diagnóstico de la medicina.

UNIDAD DE APRENDIZAJE V CICLO CELULAR Capacidad 5.Interpreta el ciclo celular de una célula eucariota animal valorando el papel de los controladores de este proceso, tomando conciencia de su importancia en el desarrollo del cáncer.. INDICADORES DE INSTRUMENTOS DE Semana Sesión Conceptual Procedimental Actitudinal LOGRO EVALUACIÓN Valora los mecanismos de Identifica el ciclo celular de una Elabora un esquema Hoja de Control de Gráfica el ciclo celular de una reproducción celular como 37 célula eucariota animal y distingue del ciclo celular de la Lectura N° 2. célula eucariota animal base para el desarrollo de la sus etapas. célula eucariota animal. vida en nuestro planeta. Representa los procesos de almacenamiento, expresión o Muestra una actitud crítica y procesamiento de la información Desarrolla una reflexiva sobre aquellos Lista de cotejo para Décima Fundamenta las modificaciones pos- genética en células eucariotas y presentación sobre el 38 factores físico - químico que evaluación de seminario Tercera traduccionales procariotas, así como su tema y resuelve pueden alterar la expresión Semana regulación, control y diferenciación ejercicios propuestos. génica a través de materiales educativos y otros recursos didácticos. Experimenta mediante la Paso de Laboratorio N° Representa mediante observación las diferencias entre Respeta las normas de 5. Reconoce las etapas del ciclo celular dibujos sus 39 las fases de la división mitótica conducta establecidas en el Rúbrica de evaluación de y las fases de la mitosis. observaciones de las identificándolas en preparados aula. Informe de Laboratorio. fases de la mitosis. biológicos Ejecuta en base a la Se interesa en el rol del ciclo Analiza los mecanismos de control teoría los ejercicios de Hoja de Control de 40 celular en el desarrollo del de ciclo celular. I aplicación propuestos aprendizaje N° 4. individuo. por el docente. Decima Conoce el rol de las reguladores Comparte con sus compañeros Prepara una Lista de cotejo para Investiga, comprende, explica y Cuarta positivos y negativos del ciclo celular los conceptos adquiridos al presentación sobre el evaluación de lecturas. 41 describe con suficiencia los Semana y su importancia en procesos como investigar sobre los avances tema y lo discute con Hoja de Control de procesos celulares en la apoptosis. la apoptosis. en la Medicina Humana. sus compañeros. Lectura N° 5. Discrimina las fases de la meiosis Respeta las normas de Esquematiza las fases Rúbrica de evaluación de Reconoce las etapas del ciclo celular 42 identificándolas en preparados conducta establecidas en el de la meiosis, Informe de Laboratorio. y las fases de la meiosis. biológicos. aula. resaltando las Página 10 de 23

Valora la importancia de la meiosis en la variabilidad de los individuos.

43

Conoce los mecanismos del control de ciclo celular. II

44

Desarrollo de casos

45

Control de aprendizaje práctico de las unidades I, II, III, IV y V

46

Examen final.

47

Revisión del examen final

Decima Quinta Semana

Decima Sexta Semana

Entiende los procesos de transmisión de señales y su efecto en la regulación del ciclo celular, así como los procesos que ocurren en la muerte celular programada y el cáncer. Integra lo aprendido en el curso resolviendo casos propuestos por el docente.

características morfológicas que le permitan distinguir dichas fases.

Valora lo aprendido en el curso y lo cimienta como base de sus futuros saberes.

Valora lo aprendido en el curso y lo cimienta como base de sus futuros saberes.

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VI. METODOLOGÍA Se conduce el proceso de enseñanza aprendizaje dándole una orientación a la acción activa independiente que le permita conocer todo lo relacionado con la actividad celular. Se emplearán formas de enseñanza donde predomine la participación activa de los alumnos con guía del profesor. Las clases se dictarán usando métodos heurísticas para motivar en el estudiante la capacidad de manejar la información, darle un sentido personal que le ayude a continuar el proceso de construcción del conocimiento usando la creatividad y el pensamiento divergente siendo consciente de los avances y dificultades que se le van presentando. Las clases teóricas son expositivas pero promueven el debate, el diálogo y la investigación en base al análisis. Los estudiantes asistirán a las clases con el conocimiento previo del tema a tratarse en base a su programación, así como a la información proporcionada al inicio del curso o a las referencias indicadas por el docente. Dentro de las estrategias de enseñanza usadas en este proceso tenemos: lluvia de ideas, mapas conceptuales y mentales, exposición participativa, juego de roles, debate, exposición oral. Las prácticas son efectuadas por los estudiantes con la guía del profesor, se les proporcionará la guía de prácticas al inicio del semestre la cual comprende el fundamento científico, objetivos, metodología y fuentes de información básica. El estudiante elaborará un informe que será presentado la clase siguiente cuya calificación forma parte del proceso de evaluación continuo. Se entregarán artículos científicos publicados en los últimos años sobre temas relacionados a las clases teóricas y/o prácticas para su lectura, discusión y comentarios, los cuales afianzarán los conocimientos aprendidos e incentivarán la actitud crítica del estudiante, posteriormente a este proceso se realizarán controles de lectura. En base a fuentes de información básica proporcionada, el estudiante tendrá las principales herramientas para ampliar los conocimientos vertidos en clase; esta revisión bibliográfica será permanente en la elaboración de los ejercicios de aplicación, informes de práctica, preparación del seminario y controles de lectura respectivos, la misma que será citada según el sistema Vancouver. Los ejercicios de aplicación y estudio de casos, constituyen un espacio de afianzamiento del aprendizaje en el que el alumno tiene la oportunidad de aplicar los conocimientos aprendidos en las diferentes sesiones (teóricas, laboratorio y seminarios), donde ejercitará su capacidad de retención, observación y análisis adquiriendo destrezas y habilidades en la aplicación de los conocimientos aprendidos. Es una instancia efectiva de articulación entre la teoría y la práctica. VII. ESTRATEGIAS DIDÁCTICAS

     VIII.

ESTRATEGIAS DE ENSEÑANZA Exposición- Diálogo (Mapas conceptuales, mentales). Método Cooperativo (Dinámicas grupales: Lluvia de ideas, juego de roles, rompecabezas). Método de preguntas (Exposición oral) Método de resolución de problemas (ABP) (Debate). Método de casos (Debate).

   

ESTRATEGIAS DE APRENDIZAJE Experimentación, observación e interpretación de hechos en forma individual y grupal. Búsqueda en fuentes de información. Método Cooperativo (Rally). Análisis de lecturas (Exposición oral, debate)

RECURSOS

Los recursos a utilizar en el proceso de enseñanza aprendizaje contribuirán a que el estudiante logre un determinado aprendizaje al proporcionarles experiencias sensoriales representativas de dichos conocimientos. Se usarán:

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En teoría y laboratorio: Auditivo: Palabra oral; Impresos: Pizarra, papelógrafos, libros, cuadernos, revistas, manuales, matrices de evaluación; Audiovisuales: Imagen y sonido: Video, proyector; Manipulativos: Equipos, instrumentos y otros materiales de laboratorio; Digitales: Libros digitales, revistas; Plataformas: Intranet Científica, Biblioteca Virtual-Científica. IX. EVALUACIÓN. La evaluación será de diagnóstico (al inicio del proceso mediante una prueba de entrada), formativa (durante el proceso que equivale al ítem de evaluación continua) y sumativa (al finalizar el proceso que está representada por un control de aprendizaje final de curso que cubrirá todas las sesiones). De acuerdo al sistema general de evaluación, la asignatura tendrá la siguiente matriz: 

DOMINIO CONCEPTUAL: Corresponde al 36% del curso, repartida en cinco unidades didácticas. Su evaluación se obtiene del promedio de los controles de aprendizaje de laboratorio y teoría de cada unidad.



DOMINIO PROCEDIMENTAL: Corresponde al 30% del curso, repartida entre las cinco unidades didácticas y especificadas en cada una de las actividades a desarrollar y sus valores asignados.



DOMINIO ACTITUDINAL: Corresponde al 4% del curso y se obtiene de las calificaciones de concepto entre estudiantes y docentes (heteroevaluación, coevaluación y autoevaluación) donde se evaluará su involucramiento en el curso en cuanto a la puntualidad, responsabilidad en la entrega de trabajos, participación en clase, respeto a las opiniones vertidas y a las consignas indicadas por el docente, trabajo en grupo, etc.



INVESTIGACIÓN FORMATIVA: Corresponde al 15% del curso, obtenida del promedio de la discusión de diez artículos científicos y el promedio de seminarios.



PRODUCTO: Corresponde al 15% del curso, será obtenido del examen final que comprende los conocimientos, procedimientos desarrollados a lo largo del curso.

SISTEMA DE EVALUACIÓN CURSO DE BIOLOGÍA CELULAR CICLO I CONTENIDOS DE APRENDIZAJE

CONTENIDOS A EVALUAR

VALOR

BIOLOGÍA

PORCENTUAL

CELULAR

Control de Aprendizaje 1 (sesión teórica)

4 (2)

Cuarta semana de clases Control de Aprendizaje 2 (sesión teórica)

4 (9)

Séptima semana de clases Control de Aprendizaje 3 (sesión teórica)

4

Décima semana de clases CONCEPTUAL

Control de Aprendizaje 4 (sesión teórica) Décimo cuarta semana de clases Control de Aprendizaje 5 (sesión práctica)

36%

4 4 (13)

Cuarta semana de clases Control de Aprendizaje 6 (sesión práctica)

4 (4)

Sexta semana de clases Control de Aprendizaje 7 (sesión práctica)

4

Novena semana de clases

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Control de Aprendizaje 8 (sesión práctica)

4

Décimo primera semana Control de Aprendizaje 9 (sesión práctica)

4

Décimo tercera semana Autoevaluación 1 + Heteroevaluación 1 (Teoría)

2

Décimo quinta semana de clases ACTITUDINAL

Autoevaluación 2+ Heteroevaluación 2

4%

2

(Laboratorio) Décimo quinta semana de clases Evaluación Parcial Práctica 1 ( promedio de 4

8

ejercicios de aplicación) Evaluación Parcial Práctica 2 (control de aprendizaje

8 (11)

de laboratorio 1) PROCEDIMENTAL:

Séptima semana de clases Evaluación Parcial Práctica 3 (control de aprendizaje

30%

8

de laboratorio 2) Décimo quinta semana de clases Evaluación Parcial Práctica 4 (promedio de informes

6

de laboratorio) INVESTIGACION

Investigación Formativa 1 (promedio de 10 lecturas)

FORMATIVA

Investigación Formativa 2 (exposición de seminario)

EXAMEN FINAL TOTAL

Examen Final Décimo sexta semana de clases

15% 15%

10 5 15

100

a. Normas de Evaluación  El estudiante que excede el 30% de inasistencias sobre el total de clases programadas en el ciclo académico regular o ciclo extraordinario de verano, no se le permitirá continuar en el curso. El docente responsable de la asignatura no lo evaluará, ni permitirá rendir prácticas y/o exámenes. Las notas obtenidas hasta antes de alcanzar el 30% de inasistencias serán consideradas como parte del promedio final del curso. Esta situación no lo exime de los pagos correspondientes.  El sistema de calificación es vigesimal (de cero a veinte) para todas las asignaturas de la Universidad. La nota mínima aprobatoria es de trece (13). Las evaluaciones no rendidas tienen la calificación de cero (00).  El promedio final de la nota de cualquier asignatura es siempre un número entero, teniendo en cuenta que toda fracción en las notas igual o mayor a 0.50 es redondeado al entero superior. La fracción inferior a 0.50 no es redondeado a ese valor (ejemplo 0.49 no es redondeado a 0.50).  Publicadas las notas, el estudiante tendrá hasta 72 horas para hacer efectivo su reclamo si no estuviera de acuerdo con ella, la que deberá presentar el reclamo por escrito ante el profesor; con copia al Decano/Director/Coordinador Académico de la carrera. Transcurrido ese período, no habrá lugar a reclamo.

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X. BIBLIOGRAFÍA Obligatorio:  Karp G. Biología Celular y Molecular: Conceptos y experimentos. 6ta ed. México D.F: Mc Graw Hill Interamericana; 2011. Libros de revisión:  Alberts B. y Johnson A. Biología Molecular de la Célula. 5ta. Ed. Barcelona; Omega. 2010.  Wilson J y Hunt T. Biología Molecular de la Célula. Libro de problemas. 5ta. Ed. Barcelona, Omega. 2010.  De Robertis E. Biología Celular y Molecular. 15ª. Ed. Buenos Aires; El ateneo. 2012. Páginas Web de interés: 





    

E-LIBRO: Disponible en: en la Biblioteca Virtual de la Universidad Acceso desde la página web de la Biblioteca: http://biblioteca.cientifica.edu.pe/biblioteca/catalogo/simple.php Acceso desde la intranet: http://campus.ucsur.edu.pe EBSCO: Disponible en la Biblioteca Virtual de la Universidad Acceso desde la página web de la Biblioteca: http://biblioteca.cientifica.edu.pe/biblioteca/catalogo/simple.php Acceso desde la intranet: http://campus.ucsur.edu.pe Audesirk T, Audesirk G y Byers B. Biología: la vida en la tierra. http://books.google.com.pe/books?id=uO486v7GcoC&printsec=frontcover&dq=Biolog%C3%ADa:+la+vida+en+la+tierra.+Audesirk&ei=FfxiS8bED6DWMM Sf0JQO&cd=1#v=onepage&q=&f=false Biblioteca Virtual de Salud – Perú (BVS) Disponible en:http://www.bvs.ins.gob.pe/php/index.php Sumanas (Animaciones varias en biología general, biología molecular, etc.) Disponible en: http://www.sumanasinc.com/webcontent/animations/biology.html Genoma Sur: Disponible en : http://www.genomasur.com/ Google académico: Disponible en : http://scholar.google.es/ YouTube académico: Disponible en:https://www.youtube.com/channel/UC3yA8nDwraeOfnYfBWun83g

XI. PLANA DOCENTE ALVIS DÁVILA RAFAEL Biólogo en mención de Biología Celular y Genética, en la Facultad de Ciencias Biológicas de la Universidad Nacional Mayor de San Marcos, Lima – Perú. Investigador Asociado en el Laboratorio de Reproducción y Biología del Desarrollo, Laboratorio de Genética Humana en la Facultad de Ciencias Biológicas de la UNMSM y al Parque Zoológico de Huachipa. Lima – Perú. Ms(c) Maestría en Genética. UNMSM. Biólogo con Mención en Genética y Biología Celular. Bachiller en Biología. UNMSM. Docente del Curso de Biología Celular y Molecular del 2010 hasta la fecha. Jefe de los Laboratorios de Fisiología y farmacología de la Universidad Científica de Sur. Diciembre del 2015 hasta la fecha. Consultor Externo en Ecotoxicología de SGS del Perú. SAC del 2012 hasta la fecha. Email: [email protected] CÁCERES REY OMAR Magister(c) en Bioquímica y Biología Molecular, Universidad Peruana Cayetano Heredia. Biólogo. Bachiller en Biología, Universidad Nacional Federico Villarreal. Curso de Inmunoinformática, Universidad Peruana Cayetano Heredia. Biólogo-Investigador Principal, Co-responsable del Laboratorio de Biotecnología y Biología Molecular y Responsable del área de Secuenciación Genética, Instituto Nacional de Salud (INS). Coordinador del Laboratorio de Biotecnología y Biología Molecular Instituto Nacional de Salud (INS) (2010-2011). Cáceres O, Rastogi N, Bartra C,

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Couvin D, Galarza M, Asencios L, Mendoza-Ticona A. 2014 Characterization of the genetic diversity of extensivelydrug resistant mycobacterium tuberculosis (XDR) detected in Peru. PLoS ONE 9(12): e112789. doi:10.1371/journal.pone. Sandoval-Juárez A, Minaya-Gómez G, Rojas-Palomino N, Falconi E, Cáceres O. 2014. Cutaneous leishmaniosis: unusual clinical manifestation. Rev Peru Med Exp Salud Pública. 2014 Jul-Sep; 31(3):5957. Padilla C, Condori F, Huaringa M, Marcos P, Rojas N, Gutierrez V, Cáceres O. 2014. Full genome analysis of influenza A (H1N1) pdm09 virus isolated from Peru, 2013. Genome Announcements. 2(2):e00191-14. doi:10.1128/genomeA.00191-14. Email: [email protected] DEL PINO ROBLES JOYCE DIONE Doctorado en Medio Ambiente y Desarrollo Sostenible UIGV. Magister en Recursos Vegetales y Terapéuticos. Farmacia y Bioquímica. UNMSM. Biólogo con Mención en Genética. Bachiller en Biología. UNMSM. Título de Biólogo UNMSM. Diplomado en Responsabilidad Social, Relaciones Comunitarias y Manejo de Conflictos Sociales UIGV. Diplomado en Manejo de Recursos Naturales UIGV. Diplomado en Educación Superior UCSUR. Diplomado en Gerencia Educativa a Nivel Superior UCSUR. Diplomado en Gerencia Estratégica en Instituciones Educativas. Diplomado en Docencia en Educación Superior. UCSUR. Diplomado en Investigación en Docencia Superior UCSUR. Estudios completos en Maestría en Educación Superior UCSUR. Especialista en el Manejo de animales de Laboratorio UNMSM. Docente de post Grado ENAMM y UPH Cursos de Maestría y Doctorado. Coordinadora de Laboratorios de Ciencias Naturales. Coordinadora del Curso de Biología Celular y Molecular del 2010 a la fecha. UCSUR. Email: [email protected] IZIGA GOICOCHEA ROGER Doctor en Ciencias con mención en Medio Marino y Desarrollo Sostenible, Facultad de Ciencias del Mar y Ambientales-Universidad de Cádiz. Magister en Ciencias Biológicas con Mención en Biología de la Reproducción, Facultad de Medicina-Universidad de Chile. Biólogo con mención en Genética, Facultad de Ciencias BiológicasUNMSM. Investigador en el Laboratorio de Genética, Facultad de Ciencias del Mar y Ambientales-Universidad de Cádiz. Investigador en el Laboratorio de Biología Molecular, IFAPA Centro El Toruño-Junta de Andalucía. Investigador en el Laboratorio de Reproducción, Instituto de Ciencias Biomédicas, Facultad de Medicina-Universidad de Chile. Investigador Asociado en el Laboratorio de Reproducción y Biología del Desarrollo, Facultad de Ciencias Biológicas-UNMSM. Experiencia en investigación y docencia universitaria en el pregrado y postgrado en universidades públicas y privadas. Formación académica-científica en las áreas de genética y genómica, biología celular y molecular, biología de la reproducción, acuicultura marina y gestión ambiental. Correo electrónico: [email protected] LINARES GONZÁLES JOSE RICARDO Biólogo de la Universidad Nacional Mayor de San Marcos Magíster en Biotecnología Molecular y Celular de Plantas por la Universidad Politécnica de Valencia-España. Beca Presidente de la República-PRONABEC Ha sido Consultor Técnico en propiedad intelectual (patentes y variedades vegetales) en Clarke Modet Perú Trabajó como Docente Jefe de Prácticas de los cursos 2016: Biología celular, Citogenética, Estructura Cromosómica y Tecnología enzimática en la Facultad de Ciencias Biológicas UNMSM. Participó como inventor en la elaboración de la patente otorgada por INDECOPI: Procedimiento para la escarificación de semillas de “tara” (Caesalpinia spinosa) a la Universidad Nacional Mayor de San Marcos. SÁNCHEZ SOTOMAYOR, HÉCTOR JAVIER Biólogo con Mención en Genética. Bachiller en Ciencias Biológicas. UNMSM. Estudios terminados para Magister en Ciencias Biológicas Universidad de Chile. Estudios de Maestría en Genética en la UNMSM. Auditor Ambiental UNMSM. Con amplia experiencia en Biotecnología Vegetal. Entrenamiento en el Laboratorio de Cultivo de Tejidos del Centro de Botánica Tropical de la Escuela de Biología de la Universidad Central de Venezuela. Miembro Permanente del Laboratorio de Recursos Genéticos y Biotecnología del Instituto de Investigación en Ciencias Biológicas “Antonio Raimondi” ICBAR - UNMSM. Docente Nombrado del Departamento de Biología Celular y Genética de la Facultad de Ciencias Biológicas de la Universidad Nacional Mayor de San Marcos. Miembro Activo del International Association for Plant Biotechnology - IAPB. Miembro Activo de la Asociación Peruana de Ingeniería Sanitaria y Ambiental. Miembro Activo de la Sociedad Peruana de Biología Celular. Miembro Activo de la Asociación Latinoamericana de Botánica. Email: [email protected]

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I. Semana

CRONOGRAMA DE ACTIVIDADES Teoría (2 horas)

Docente encargado

Campos Temáticos

Recursos didácticos

1

Primera Semana de clases

Sesión 1: Información general sobre el desarrollo de las clases teóricas. Presentación del silabo (criterios de evaluación). Prueba de entrada. Elección del delegado. Introducción a la biología celular. Características generales de la célula procariota y eucariota.

Videos, power point, animaciones, programas educativos. Exposición participativa. Desarrollo de esquemas o mapas conceptuales.

Rafael Alvis Joyce Del Pino Roger Iziga

2

Segunda semana de clases

Sesión 4: Membrana celular. Modelo de Singer y Nicholson. Composición molecular. Funciones. Permeabilidad. Terminología básica (Parte I).

Videos, power point, animaciones, programas educativos. Exposición participativa. Control de aprendizaje. Desarrollo de mapas conceptuales o mentales.

Rafael Alvis Joyce Del Pino Roger Iziga

3

Tercera semana de clases

Videos, power point, animaciones, programas educativos. Exposición participativa. Control de aprendizaje. Mapas conceptuales o mentales.

Rafael Alvis Joyce Del Pino Roger Iziga

4

Cuarta semana de clases

5

Quinta semana de clases

6

Sexta semana de clases

7

Séptima semana de clases

Sesión 7: Permeabilidad de la membrana. Transporte de moléculas de bajo (Sistema de transporte: transporte pasivo y activo) y alto peso molecular (Endocitosis (pinocitosis, endocitosis mediada por receptor y fagocitosis). Funciones. Exocitosis (excreción y secreción: diferencias fundamentales). Patologías asociadas. (Parte II). Sesión 10: Componentes de la comunicación celular: Emisor o ligando, características generales, clasificación. Ejemplos. Receptor, características generales, clasificación: Proteína G y su modo de acción. Importancia en las Ciencias de la salud. Pasos de la comunicación celular. Tipos de comunicación celular. Patologías asociadas. Control de aprendizaje N°1. Sesión 13: Componentes de la matriz extracelular, funciones e importancia. Moléculas de Adhesión celular: características, tipos representativas y funciones. Especializaciones de la membrana celular: tipos, características y funciones. (Interdigitaciones, microvellosidades, uniones intercelulares). Patologías asociadas Sesión 16: Componentes del citoplasma de la célula eucariota: Hialoplasma o citosol: componentes y características generales. Citoesqueleto: componentes, estructura molecular, características generales y funciones. Centrosoma, cilios y flagelos eucarióticos: estructura, función. Patologías asociadas. Sesión 19: Probable origen de las organelas del sistema de membrana. Características generales de los compartimientos celulares, estructura, función. Patologías asociadas. Control de aprendizaje N°2.

Videos, power point, animaciones, programas educativos. Exposición participativa. Control de aprendizaje.

Rafael Alvis Joyce Del Pino Roger Iziga

Videos, power point, animaciones, programas educativos. Exposición participativa. Control de aprendizaje.

Rafael Alvis Joyce Del Pino Roger Iziga

Videos, power point, animaciones, programas educativos. Exposición participativa. Control de aprendizaje

Rafael Alvis Joyce Del Pino Roger Iziga

Videos, power point, animaciones, programas educativos. Exposición participativa. Control de aprendizaje. Mapa conceptual.

Grupos a cargo

Rafael Alvis Joyce Del Pino Roger Iziga

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8

Octava semana de clases

Sesión 22: Aspectos generales del metabolismo celular. Desarrollo de las etapas de la glucolisis y las enzimas involucradas. Características generales de las mitocondrias, funciones e importancia en la respiración celular. Respiración aeróbica y anaeróbica: procesos moleculares involucrados, importancia a nivel celular y 0rgánico. Patologías asociadas.

Videos, power point, animaciones, programas educativos. Desarrollo de esquemas. Exposición participativa. Control de aprendizaje

9

Novena semana de clases

Sesión 25: ADN: características generales, tipos, unidad monomérica, Ley de Chargaff.

Videos, power point, animaciones, programas educativos. Exposición participativa. Control de aprendizaje.

Rafael Alvis Joyce Del Pino Roger Iziga

10

Décima semana de clases

Sesión 28: Replicación del ADN. Diferenciación de la replicación en procariotas y eucariotas. Control de aprendizaje N°3.

Videos, power point, animaciones, programas educativos. Exposición participativa. Control de aprendizaje.

Rafael Alvis Joyce Del Pino Roger Iziga

11

Décimo primera semana de clases

Sesión 31: ARN: características generales, unidad monomérica, tipos. Funciones de cada tipo de ARN. Relación entre los genes y proteínas. Síntesis de proteínas en procariota: Etapa de transcripción: Unidad de transcripción. Promotores procarióticas y eucarióticos. Importancia. Modificación post-transcripciones.

Videos, power point, animaciones, programas educativos. Exposición participativa. Control de aprendizaje.

Rafael Alvis Joyce Del Pino Roger Iziga

12

Décimo segunda semana

Sesión 34: Traducción en eucariotas, características e importancia. Fases: activación del ARNt, iniciación, elongación y finalización. Código Genético: características y funciones en la traducción. Patologías asociadas.

Videos, power point, animaciones, programas educativos. Exposición participativa. Control de aprendizaje

Rafael Alvis Joyce Del Pino Roger Iziga

13

Décima tercera sesión

Sesión 37: Ciclo celular en eucariotas. Etapas. Interfase: G1, S, G2, características generales de cada fase. Etapa de división celular: mitosis (empaquetamiento de la cromatina), meiosis y citocinesis: características generales y diferencias entre citocinesis animal y vegetal. Importancia de la mitosis y meiosis desde el punto de vista genético, celular y orgánico.

Videos, power point, animaciones, programas educativos. Exposición participativa. Control de aprendizaje

Rafael Alvis Joyce Del Pino Roger Iziga

14

Décimo cuarta sesión

Sesión 40: Características generales. Control del ciclo celular: Regulación extracelular e intracelular (ciclinas, cdks, inhibidores del complejo de ciclinas y cdks). Control de aprendizaje N°4.

Videos, power point, animaciones, programas educativos. Exposición participativa. Control de aprendizaje

Rafael Alvis Joyce Del Pino Roger Iziga

15

Décimo quinta sesión

Sesión 43: Protooncogenes y genes supresores: Características y funciones de los más importantes. Muerte celular: tipos, características más importantes. Aspectos moleculares de la muerte celular. Factores extrínsecos e intrínsecos. Diferencias entre apoptosis y necrosis.

Videos, power point, animaciones, programas educativos. Exposición participativa. Control de aprendizaje

Rafael Alvis Omar Caceres Joyce Del Pino Roger Iziga

Rafael Alvis Joyce Del Pino Roger Iziga

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II.

Décimo Sexta semana

Examen Final de curso

Docentes del curso

CRONOGRAMA DE CONTENIDOS – TALLERES DE DISCUSIÓN Teoría (2 horas)

Contenido de enseñanza - aprendizaje

Recursos didácticos

1

Primera Semana de clases

Sesión 2: Información sobre el desarrollo de los talleres de discusión y seminarios. Formación de grupos de trabajo y sorteo de seminarios.

Power point, animaciones, Exposición participativa. Trabajo grupal. Ponentes: estudiantes, Docente: desarrollo de conclusiones.

Rafael Alvis Joyce Del Pino Roger Iziga

2

Segunda semana de clases

Sesión 5: Lectura 1 A: La asimetría de la membrana plasmática y su relevancia para la célula. Lectura 1 B: ¿Cómo se transporta la glucosa a través de la membrana celular? Control de lectura N°1

Power point, animaciones, Exposición participativa. Trabajo grupal. Ponentes: estudiantes, Docente: desarrollo de conclusiones.

Rafael Alvis Joyce Del Pino Roger Iziga

3

Tercera semana de clases

Sesión 8: Desarrollo de aprendizaje basado en problemas (Ejercicios de aplicación grupal Nº 1).

Rafael Alvis Joyce Del Pino Roger Iziga

4

Cuarta semana de clases

Sesión 11: Seminario1: Proteínas G y su importancia clínica. Seminario 2: Aspectos moleculares de la transmisión del impulso nervioso.

5

Quinta semana de clases

6

Sexta

Exposición participativa utilizando Power point o prezi, videos, animaciones. Artículos científicos de los dos últimos años. Ponentes: Docente y estudiantes. Estudio de casos. Exposición participativa utilizando Power point o prezi, videos, animaciones. Artículos científicos de los dos últimos años. Ponentes: Docente y estudiantes. Rally en el desarrollo de ejercicios de aplicación. Power point, animaciones, Exposición participativa. Trabajo grupal. Ponentes: estudiantes, Docente: desarrollo de conclusiones. Exposición participativa utilizando Power point o

Semana

Sesión 14: Lectura 2 A: Metaloproteinasas y piel. Lectura 2 B: Las uniones celulares y la emergencia de los animales. Control de lectura N°2. Sesión 17: Desarrollo de aprendizaje basado en problemas

Docente encargado

Grupos a cargo

Rafael Alvis Joyce Del Pino Roger Iziga Rafael Alvis Joyce Del Pino Roger Iziga Rafael Alvis

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semana de clases

(Ejercicios de aplicación Individual Nº 1).

Sesión 20: Seminario 3: Mecanismos moleculares de la resistencia a antibióticos. Seminario 4: Microorganismos patógenos y beneficiosos. Bacterias, virus y priones.

prezi, videos, animaciones. Artículos científicos de los dos últimos años. Ponentes: Docente y estudiantes. Estudio de casos. Exposición participativa utilizando Power point o prezi, videos, animaciones. Artículos científicos de los dos últimos años. Ponentes: Docente y estudiantes. Estudio de casos.

Joyce Del Pino Roger Iziga Rafael Alvis Joyce Del Pino Roger Iziga

7

Séptima semana de clases

8

Octava semana de clases

Sesión 23: Desarrollo de aprendizaje basado en problemas (Ejercicios de aplicación grupal Nº 2).

Power point, estrategia educativa: Rally

9

Novena semana de clases

Sesión 26: Lectura 3 A: Mecanotransducción: Cómo la célula percibe los estímulos. Lectura 3 B: El citoesqueleto: Un componente fundamental en la arquitectura y en la fisiología celular. Control de lectura N°3.

Power point, animaciones, Exposición participativa. Trabajo grupal. Ponentes: estudiantes, Docente: desarrollo de conclusiones.

Rafael Alvis Joyce Del Pino Roger Iziga

10

Décima semana de clases

Sesión 29: Desarrollo de aprendizaje basado en problemas (Ejercicios de aplicación individual Nº 2).

Rafael Alvis Joyce Del Pino Roger Iziga

11

Décimo primera semana de clases

Exposición participativa utilizando Power point o prezi, videos, animaciones. Artículos científicos de los dos últimos años. Ponentes: Docente y estudiantes. Desarrollo de ABP. Exposición participativa utilizando Power point o prezi, videos, animaciones. Artículos científicos de los dos últimos años. Ponentes: Docente y estudiantes. Desarrollo de ABP.

12

Décimo segunda semana

Power point, animaciones, Exposición participativa. Trabajo grupal. Ponentes: estudiantes, Docente: desarrollo de conclusiones.

Rafael Alvis Joyce Del Pino Roger Iziga

13

Décima tercera sesión

Exposición participativa utilizando Power point o prezi, videos, animaciones. Artículos científicos de los dos últimos años. Ponentes: Docente y estudiantes. Rally.

Rafael Alvis Joyce Del Pino Roger Iziga

Sesión 32: Seminario 5: El ADN mitocondrial. Aplicaciones en Medicina. Mitocondriopatías. Seminario 6: Mecanismos de reparación del daño producido en el ADN. Sesión 35: Lectura 4 A: Papel del poro de permeabilidad transitoria mitocondrial en los procesos neurodegenerativos. Lectura 4 B: Beneficios metabólicos de realizar ejercicio en estado de ayuno. Control de lectura N°4. Sesión 38: Seminario traduccionales.

7:

Modificaciones

pos-

Rafael Alvis Omar Caceres Joyce Del Pino Roger Iziga

Rafael Alvis Joyce Del Pino Roger Iziga

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14

Décimo cuarta sesión

15

Décimo quinta sesión

16

Décimo Sexta semana

III.

Sesión 41: Lectura 5 A: El ciclo celular: características, regulación e importancia en el cáncer. Lectura 5 B: Vida tras la muerte celular. Control de lectura N°5.

Sesión 44: Desarrollo de casos.

Power point, animaciones, Exposición participativa. Trabajo grupal. Ponentes: estudiantes, Docente: desarrollo de conclusiones. Estudio de casos. Power point, animaciones, Exposición participativa. Trabajo grupal. Ponentes: estudiantes, Docente: desarrollo de conclusiones. Estudio de casos.

Examen Final de curso

Rafael Alvis Joyce Del Pino Roger Iziga

Rafael Alvis Joyce Del Pino Roger Iziga

Docentes del curso

PROGRAMACIÓN DE PRÁCTICAS CRONOGRAMA DE CONTENIDOS – LABORATORIO

Semana

Laboratorio (2 horas)

Contenido de enseñanza aprendizaje

1

PA (301)Villa 1

Sesión 3: Laboratorio 1: Principios de Bioseguridad en el laboratorio

2

PA (301)Villa 1

Sesión 6: Laboratorio 2: Fundamentos de microscopía.

3

PA (301)Villa 1

Sesión 9: Laboratorio 3: Permeabilidad de la Membrana Citoplasmática. (Ósmosis).

Recursos didácticos Uso de multimedia (presentación en power point), explicación, ejemplificación en pizarra, Manual de prácticas, participación individual, participación Grupal, análisis y discusión de Caso (Video Bioseguridad) Uso de multimedia (presentación en Power Point), explicación, ejemplificación en pizarra, Manual de prácticas, participación individual, participación grupal, microscopios de campo claro, láminas porta y cubre objetos, material de laboratorio. Uso de multimedia (presentación en Power Point), explicación, ejemplificación en pizarra, Manual de prácticas, participación individual, participación grupal, microscopios de campo claro, láminas porta y cubre objetos, reactivos (soluciones salinas a diferentes concentraciones), material biológico (hojas de Elodea

Docente encargado

Grupos a cargo

Omar Cáceres Roger Iziga Héctor Sanchez Omar Cáceres Roger Iziga Héctor Sanchez Omar Cáceres Roger Iziga Héctor Sanchez

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4

PA (301)Villa 1

Sesión 12: Laboratorio 4: Permeabilidad de la Membrana Citoplasmática. (Difusión y diálisis). Paso de laboratorio N°1.

5

PA (301)Villa 1

Sesión 15: Laboratorio 5: La célula procariota y eucariota: Reconocimiento de estructuras.

6

PA (301)Villa 1

Sesión 18: Laboratorio 6: Obtención y análisis de fracciones celulares. Paso de laboratorio N°2.

7

PA (301)Villa 1

Sesión 21: Control de aprendizaje de unidades I y II.

8

PA (301)Villa 1

Sesión 24: Laboratorio 7: Metabolismo Celular: Proceso de respiración celular

9

PA (301)Villa 1

Sesión 27: Laboratorio 8: Extracción del ADN. Paso de laboratorio N°3.

10

PA (301)Villa 1

Sesión 30: Laboratorio 9: Fundamentos de la reacción en cadena de la polimerasa (PCR).

sp. y Solanum tuberosum “papa” ) Uso de multimedia (presentación en Power Point, explicación, ejemplificación en pizarra, Manual de prácticas, participación individual, participación grupal, reactivos (solución de NaCl, AgNO3, solución de almidón, Lugol), material biológico (Buche de pollo, un huevo). Uso de multimedia (presentación en Power Point), explicación, ejemplificación en pizarra, Manual de prácticas, participación individual, participación grupal, microscopios de campo claro, muestras biológicas vivas (Paramecium sp. y células de descamación oral), muestras fijadas de células procariotas (bacterias) y de eucariotas (espermatozoides humanos). Uso de multimedia (presentación en Power Point), explicación, ejemplificación en pizarra, Manual de prácticas, participación individual, participación Grupal, microscopio de campo claro y de fluorescencia, colorantes y fluorocromos, reactivos (buffer de mantenimiento celular), micropipetas automáticas volumen variable, centrifuga, material de plástico (tips y eppendorf).

Omar Cáceres Roger Iziga Héctor Sanchez

Omar Cáceres Roger Iziga Héctor Sanchez

Omar Cáceres Roger Iziga Héctor Sanchez Omar Cáceres Roger Iziga Héctor Sanchez

Uso de multimedia (presentación en Power Point), explicación, ejemplificación en pizarra, Manual de prácticas, participación individual, participación grupal, muestras biológicas vivas Saccharomyces cerevisiae “levadura”, material de vidrio (tubos de ensayo, palca Petri), gradillas. Uso de multimedia (presentación en Power Point), explicación, ejemplificación en pizarra, Manual de prácticas, participación individual, participación grupal, micropipetas automáticas volumen variable, reactivos para la extracción, guantes, material de vidrio, centrífuga. Uso de multimedia (presentación en Power Point), explicación, ejemplificación en pizarra, Manual de prácticas, participación individual, participación grupal, micropipetas automáticas volumen variable, reactivos para realizar el PCR, guantes, centrífuga, termociclador.

Omar Cáceres Roger Iziga Héctor Sanchez Omar Cáceres Roger Iziga Héctor Sanchez Omar Cáceres Roger Iziga Héctor Sanchez

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11

PA (301)Villa 1

Sesión 33: Laboratorio 10: Fundamentos de electroforesis. Paso de laboratorio N°4

12

PA (301)Villa 1

Sesión 36: Laboratorio 11: Laboratorio 12: Ciclo celular y mitosis.

13

PA (301)Villa 1

Sesión 39: Ciclo celular y meiosis. Paso de laboratorio N°5.

14

PA (301)Villa 1

Sesión 42: Laboratorio 13: Desarrollo de ABP.

15

PA (301)Villa 1

Sesión 45: Control de aprendizaje de laboratorio

Uso de multimedia (presentación en power point), explicación, ejemplificación en pizarra, Manual de prácticas, participación individual, participación grupal, micropipetas automáticas volumen variable, equipo (Cámara de electroforesis submarina, transiluminador, reactivos (Buffer de corrida y de carga), guantes, cubetas. Uso de multimedia (presentación en power point), explicación, ejemplificación en pizarra, Manual de prácticas, participación individual, participación grupal, microscopios de campo claro, muestras biológicas fijadas (Allium cepa). Uso de multimedia (presentación en power point), explicación, ejemplificación en pizarra, Manual de prácticas, participación individual, participación grupal, microscopios de campo claro, muestras biológicas fijadas (Zea mays) Uso de multimedia (presentación en power point), explicación, ejemplificación en pizarra, ejercicios propuestos por el docente, participación individual, participación grupal.

Omar Cáceres Roger Iziga Héctor Sanchez Omar Cáceres Roger Iziga Héctor Sanchez Omar Cáceres Roger Iziga Héctor Sanchez Omar Cáceres Roger Iziga Héctor Sanchez Omar Cáceres Roger Iziga Héctor Sanchez

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