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• Lalo Tolentino

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Medios de cultivo para hongos

Medio de Cultivo

Uso

Agar arroz Agar cereal para Gymnoascaceae

Esporulación de dermatofitos Aislamiento y estimulación del género Arthroderma Producción de ureasa de los géneros Trichophyton, Cryptococcus y Actinomadura Esférulas de Coccidioides immitis y C. posadassi

Agar dextrosa-urea Agar modificado de Converse Agar para produccion de ascosporas Biggy agar Czapek concentrado Czapek Dox agar DTM agar (Dermatophyte test medium) Extracto de levadura agar Extracto de suelo agar Gelatina Harina de amaranto agar Harina de avena agar (medio oatmeal agar) Harina de maíz agar (medio corn-meal agar) Harina de maíz + tween 80 al 1% Infusión de cerebro corazón agar (BHI) Kelley Agar Medio alpiste negro agar Medio Borelli (Lactrimel) Medio de caseína Medio de coco Medio de conservación Medio de Garrod

Produccion de ascosporas (género Saccharomyces) Medio selectivo de primoaislamiento para diversas levaduras Aislamiento de especies de Aspergillus Aislamiento de especies de Aspergillus y Penicillium Primoaislamiento de dermatofitos Para primoaislamiento y conservación de diversos hongos Para conidiación y mantenimiento de Histoplasma capsulatum Investigación de licuefacción de la gelatina en actinomicetos y hongos negros Medio para estimular la conidiación de dermatofitos y Sporothrix schenckii y Sporothrix spp. Identificación de Acremonium spp., Cladosporium spp., Fusarium ssp., Paecilomyces spp., Phialophora spp., Scopulariopsis spp. Y obtención de las formas teleomorficas asociadas Medio de esporulación y conservación de diversos hongos. Identificación de Acremonium sp., Fusarium sp. y dermatofitos. Formación de pseudomicelio y clamidoconidios del genero Candida Primoaislamiento de diversos hongos, en especial M. Mycetomatis y de actinomicetos como A. madurae Aislamiento de levaduras de Paracoccidiones brasiliensis. Medio de identificación de Cryptococcus neoformans. Primoaislamiento, conservación y producción de pigmentos de dermatofitos. Para esporulación de hongos dematiáceos Investigacion de hidrolisis de caseína en actinomicetos Aislamiento de diversos hongos levaduriformes. Medio para estimulación de pigmento de Actinomadura pelletieri y Trichophyton violaceum Para evitar el fenómeno de pleomorfismo, debido que no contiene azucares, para mantenimiento de dermatofitos Aislamiento y conservación de actinomicetos

Medio de gis (tiza) Medio de Gorodkowa Medio de leche tornalosada Medio de plátano Medio de tierra estéril con fuente de queratina Medio de transporte para hongos (Stuart) Medio mínimo de esporulación Medio para producción de células fumagoides o muriformes Medio para Corynebacterium Medio para investigación de carbohidratos (zimograma) Medio para investigación de xantina, hipoxantina y tirosina Medio para la fase levaduriforme de Sporothrix schenckii Medio Sabouraud diluido 1/10 + sales (TK) Papa dextrosa agar (PDA) Papa dextrosa peptona agar Papa zanahoria agar (PZ agar) Penetración de pelo PZ dextrosa al 1 % Sabouraud dextrosa agar Sabouraud dextrosa caldo Sabouraud mas antibióticos agar (Micosel, micobiótico o para selección de hongos patógenos agar) Tiamina-Inositol (medio para aislamiento de Trichophyton verrucosum) Tioglicolato caldo Medio V8 agar

Obtención de la fase sexual Saccharomyces cerevisiae y S. bayanus. Obtención de ascas y ascosporas de Saccharomyces cerevisiae y S. bayanus. Identificación de levaduras. Aislamiento de dermatofitos y Candida. Para hongos queratinofílicos. Medio de transporte de hongos, mohos y levaduras. Para estimular esporulación o conidiación de los hongos mohos. Obtener in vitro células fumagoides o muriformes. Aislamiento de especies de Corynebacterium. Investigación de pruebas fisiológicas de levaduras. Investigación de pruebas fisiológicas de actinomicetos. Medio para inducción de fase levaduriforme de S. schenckii. Para estudios de sexualidad fúngica y obtención de formas teleomórficas. Para primo-cultivo, conservación y esporulación de diversos hongos. Identificación de Fusarium sp. Medio de esporulación y conservación de diversos hongos. Medio de conservación y esporulación. Para la diferenciación de dermatofitos que pueden producir órganos perforantes. Medio de esporulación y conservación de dermatofitos, medio de producción de pigmento de T. rubrum. Medio rutinario para el primoaislamiento y conservación de diversos hongos. Primoaislamiento, transporte y revitalización de diversas cepas. Medio selectivo para hongos patógenos. Para el primoaislamiento de T. verrucosum y otros dermatofitos del grupo faviforme (T. Schoenleinii, T. concentricum). Para el primoaislamiento de actinomicetos anaeróbicos y microaerófilos. Medio de aislamiento y producción de ascosporas de Saccharomyces.

Métodos de aislamiento para hongos Aislamiento a partir de tejido vegetal -A partir del tejido vegetal enfermo es posible aislar a los patógenos. -Se busca tomar trozos de la zona de avance par incrementar las chances de aislar al patógeno. -Los trozos de el tejido vegetal se someten a una desinfección superficial. -En el caso de bacterias es posible macerar un trozo de tejido y luego sembrar. Aislamiento de bacteria a partir de tejido infectado -Tocando con el asa en la zona de avance de la infección es posible aislar el hongo. Aislamiento por macerado de tejido vegetal -El tejido afectado es macerado en mortero y luego el macerado es estriado en placa. Aislamiento directo a partir del signo -Cuando la muestra vegetal presenta signos es posible tomar una pequeña porción de el mismo y sembrar en una placa con medio de cultivo Uso de cebos -Se utilizan cebos para capturar algunos hongos. Colonizadores de patógenos -Se pueden encontrar antagonistas colonizando naturalmente a los patógenos de plantas. -Se pueden a los patógenos como cebos para capturar a sus antagonistas. Medios de cultivo para hongos y su clasificación Por utilización.  Selectivo: contiene compuestos que inhiben selectivamente el crecimiento de algunos microorganismos, y favorece el de otros. 1. Agar cereal para Gymnoascaceae: se usa para el aislamiento y estimulación del género Arthroderma. 2. Agar Dixon modificado: para aislamiento del género Malassezia. 3. Biggy agar: medio selectivo de primoaislamiento para diversas levaduras. 4. Czapek concentrado: aislamiento de especies de Aspergillus. 5. Czapek Dox agar: aislamiento de especies de Aspergillus y Penicillium. 

No selectivo

1. Agar-dextrosa-patata (PDA): este medio es adecuado para la mayoría de los hongos. 2. Agar-caldo de guisantes sacarosado: medio adecuado para estudiar especies de Pythium y Phythophthora. 3. Agar-harina de avena (OMA): este es un medio de cultivo adecuado para Pythium sp., Phythophthora sp., Fusarium sp., Phoma sp. y otros patógenos.

4. Agar agua (AA): es un medio muy proble pero muy útil para estudiar fructificaciones fúngicas debido al escaso crecimiento miceliar. Se utiliza también para estudiar Rhizoctonia solani. 

Diferencial: es aquel al que se añade un indicador, normalmente un colorante, para permitir diferenciación de reacciones químicas particulares que ocurren durante el crecimiento.

Por composición.  Definidos: se preparan añadiendo agua destilada, cantidades precisas de compuestos orgánicos o inorgánicos purificados. Se conoce la composición química exacta. 1. Czapek concentrado: aislamiento de especies de Aspergillus. 2. Czapek Dox agar: aislamiento de especies de Aspergillus y Penicillium.  Complejos: emplean hidrolizados de productos animales o vegetales, como caseína, carne, extracto de levadura. No se sabela composición química exacta. 1. Agar-dextrosa-patata (PDA): este medio es adecuado para la mayoría de los hongos. Por estado físico.  Sólidos: inmoviliza a las células permitiéndoles crecer y formar masas visibles aisladas llamadas colonias.  Líquidos: se denominan caldos. Se utiliza fundamentalmente cuando se pretende la obtención de una suspensión de una determinada concentración.

Bibliografía: -Cifuentes Romo Dina, 1990. Prácticas de patología vegetal. Medios de cultivo para hongos. Pp. 7-12 -http://www.pv.fagro.edu.uy/fitopato/cursometodosfito/05Metodos%20de%20aislamiento.pdf -Bonifaz Alexandro, 2012, Micología Medica Básica, p.p 564-568

INSTITUTO POLITÉCNICO NACIONAL ESCUELA NACIONAL DE CIENCIAS BIOLÓGICAS QUÍMICO BACTERIÓLOGO PARASITÓLOGO MICOLOGÍA GENERAL & MÉDICA NATALIA BLAS GUILLEN EDUARDO TOLENTINO SÁNCHEZ EQUIPO 6 SECCIÓN 2 10/08/2017