Anestesiología en animales de compañía no convencionales M en MVZ Miguel Angel Galindo Bustos BIOVET CENTRO VETERINARIO
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Anestesiología en animales de compañía no convencionales M en MVZ Miguel Angel Galindo Bustos BIOVET CENTRO VETERINARIO DE ESPECIALIDADES EN FAUNA SILVESTRE www.biovet.com.mx
Al igual que en los animales domésticos, la anestesia en fauna silvestre es una práctica cotidiana para realizar procedimientos quirúrgicos
o diagnósticos y en ocasiones el examen físico de
algunos pacientes, sin embargo, se requiere aplicar ciertas modificaciones en el equipo y técnicas, debido a la particular anatomía y fisiología de algunos de los pacientes, su tamaño, idiosincrasia, retos en la contención y limitantes para su monitoreo. Algunos de los puntos más importantes que se deben considerar son:
Estabilizar al paciente antes de inducir la anestesia
Evaluar su historial médico, estado físico y de ser posible análisis de laboratorio
Minimizar el tiempo de anestesia = planear los procedimientos
Seleccionar el anestésico adecuado según la especié y el procedimiento a realizar
Monitorear la función cardiovascular
Monitorear la temperatura corporal
Mantener una vía aérea disponible
Utilizar tranquilizantes y analgésicos durante la inducción y recuperación para reducir el dolor, estrés y excitación
Estar preparado para situaciones inesperadas (complicaciones)
REPTILES En general, en los reptiles no se recomienda el ayuno previo a la anestesia, sin embargo, en las especies carnívoras, el contenido estomacal limitar la función pulmonar. Durante la anestesia se recomienda monitorear la temperatura corporal (cloacal) para mantener al paciente dentro de POTZ, esto se puede lograr con el uso de placas térmicas, botes con agua tibia, toallas, etc. La frecuencia cardiaca se puede monitorear con un Doppler colocado sobre el corazón. La frecuencia respiratoria se monitorea visualmente o con un oxímetro, aunque este último todavía es controversial.
La intubación endotraqueal, no representa un reto debido a la posición de la glotis en los reptiles, ésta se encuentra caudal a la base de la lengua. La ventilación puede ser manual o mecánica. Las serpientes y algunos saurios se pueden anestesiar despiertos. Se recomienda el uso de sondas endotraqueales de 1 a 3 mm de diámetro según el tamaño del paciente. En general, el inducir la anestesia con propofol (1-3 mg/kg) y mantenerla con isofluorano (MAC 1.5%) representa una práctica segura, aunque siempre hay que considerar el estado del paciente y el resto de protocolos anestésicos existentes.
AVES Existen algunas particularidades anatómico fisiológicas que se deben tener en mente cuando hablamos de aves, las más importantes son los sacos aéreos que participan como fuelle en la respiración y el tipo de respiración dado en 2 tiempos. Al igual que en el resto de las especies, el mantener la temperatura corporal del aves es fundamental para el éxito de los procedimientos. En general, para cualquier procedimiento mayor a 10 minutos es indipensable colocar una sonda endotraqueal. El ayuno no se recomienda en aves con peso menor a 200 gr debido a su rápido metabolismo, para aves de mayor peso se recomienda ayunarlas de 2 a 4 horas previas al procedimiento. Es importante siempre tener a la mano los medicamentos utilizados durante una urgencia:
FARMACOS
DOSIS
RUTA
COMENTARIOS
Atropina
0.01 - 0.02 mg/kg
SC, IM, IV
Preanestesia
0.04 - 0.1 mg/kg
SC, IM, IV, IO
Bradicardia
0.5 mg/kg
IM, IV, IO
RCP
0.05 - 0.5 mg/kg
IM, IV, IO
Bradicardia / RCP
Epinefrina 1:1000
Fármacos de emergencia en aves. Hawkings, 2008
PEQUEÑOS MAMÍFEROS Debido a la incapacidad de los roedores y lagomorfos para vomitar, no es necesario ayunarlos previo a la anestesia. Para la inducción se puede utilizar anestésicos fijos o cámaras de inducción, ya que su reducido tamaño impide el sondeo o uso de mascarillas con el animal en movimiento. ESPECIE
KETAMINA/ACEPROMACINA
KETAMINA/XYLACINA
Hámster
50-150 mg/kg IP
50-150 mg/kg IP
Cuyo
20-50 mg/kg IP
20-40 mg/kg IP
Preanestésico utilizados en pequeños mamíferos HEARD, 2008 Aunque la intubación endotraqueal no es un procedimiento fácil en la mayoría de los pequeños mamíferos, la práctica y una buena técnica lo hacen rutinario. Se pueden utilizar sondas que van de 1 a 3 mm de diámetro (según el tamaño del paciente) aunque para las especies más pequeñas (ratones, hasmters, etc.) se debe adaptar la cobertura plástica del catéter.
ESPECIE
DIÁMETRO INTERNO DE LA SONDA
Rata
16-18 G catéter
Cuyo
1.5mm
Hámster
16 G catéter
Sonda endotraqueal para roedores. HEARD; 2008 El uso de un laringoscopio u otoscopio puede facilitar la inserción del catéter.