DETERMINACIÓN EXPERIMENTAL DEL COEFICIENTE VOLUMÉTRICO DE TRANSFERENCIA DE OXÍGENO (KLa) EN UN CALDO DE FERMENTACIÓN DE
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DETERMINACIÓN EXPERIMENTAL DEL COEFICIENTE VOLUMÉTRICO DE TRANSFERENCIA DE OXÍGENO (KLa) EN UN CALDO DE FERMENTACIÓN DE GLUCOSA, MEDIANTE EL MÉTODO DINÁMICO DE DESGASIFICACIÓN. EXPERIMENTAL DETERMINATION OF THE OXYGEN TRANSFER VOLUMETRIC COEFFICIENT (KLa) IN A GLUCOSE FERMENTATION STOCK, THROUGH THE DYNAMIC DEGASIFICATION
METHOD. M. Aguilar Navarro*, C. Castro-Peroza*, D. Gómez-Pérez, L. Herrera-Alean*, C. Serpa Jiménez* Departamento de Ingeniería Agroindustrial Bioingeniería ll UNISUCRE- Universidad de Sucre, Sincelejo-Sucre- 29-mayo-2020
Resumen: El presente estudio, tiene como objetivo la evaluación y análisis del fenómeno de trasferencia de oxígeno para un cultivo de levadura (𝑆𝑎𝑐𝑐ℎ𝑎𝑟𝑜𝑚𝑦𝑐𝑒𝑠 𝐶𝑒𝑟𝑒𝑣𝑖𝑠𝑖𝑎𝑒) sumergida en un caldo fermentativo de glucosa con variaciones en la velocidad de agitación, mediante la implementación del método dinámico de desgasificación. Para obtener dicho valor se procedió a inocular en un 10% del volumen de fermentación un preinóculo. La inoculación se realizó en un fermentador de 1L y se tomó una lectura inicial de la concentración de oxígeno disuelto en el sistema antes de iniciar la aireación, realizado esto, se esperó 10 minuto para estabilizar el sistema en cuanto a la concentración de oxígeno disuelto, inmediatamente se realizó una oxigenación y se procedió a medir cada 10 segundos durante un periodo de 10 minutos continuos, alcanzado este tiempo se hizo una desoxigenación, y por último se reoxígeno hasta alcanzar la concentración igual a la correspondiente al tiempo cero. Los kLa obtenidos para 150, 300 y 450 rpm fueron: 0.0397, 0.0463 y 0.0252 respectivamente, posteriormente se realizó un analisis de varianza en el cual se determinó que a una velocidad de 300rpm, se obtuvo el mejor kLa. Palabras claves: Aireación, coeficiente de transferencia de oxígeno, velocidad de agitación, levadura. Abstract: The objective of the present study is to evaluate and analyze the oxygen transfer phenomenon for a yeast culture (Saccharomyces Cerevisiae) immersed in a fermentative glucose broth with variations in stirring speed, through the implementation of the dynamic method of degassing. To obtain this value, a preinoculum was inoculated in 10% of the fermentation volume. The inoculation was carried out in a 1L fermenter and an initial reading of the concentration of dissolved oxygen in the system was taken before starting the aeration. After doing this, it was waited 10 minutes to stabilize the system regarding the concentration of dissolved oxygen, Immediately, oxygenation was performed and measurement was carried out every 10 seconds over a period of 10 continuous minutes. At this time, deoxygenation was carried out, and finally, it was reoxygenated until reaching the concentration equal to that corresponding to time zero. The kLa obtained for 150, 300 and 450 rpm were: 0.0397, 0.0463 and 0.0252 respectively, subsequently an analysis of variance was performed in which it was determined that at a speed of 300rpm, the best kLa was obtained.
Keywords: Aeration, oxygen transfer coefficient, stirring speed, yeast
1 *Estudiantes del Programa Ingeniería Agroindustrial. Facultad de Ingeniería. Universidad de Sucre, Sincelejo, Sucre .
1. INTRODUCCIÓN Cuando se diseñan biorreactores para el
intervienen sobre la hidrodinámica de éste,
cultivo de microorganismos aerobios con
como: las propiedades físicas tanto del
demandas
las
medio de cultivo como del gas utilizado
principales limitaciones que se presentan
para aportar el oxígeno, los parámetros
en estos casos, está asociada a la
geométricos
transferencia de este sustrato al medio de
condiciones de operación a las que se
cultivo Duarte, E. et al. (2013). La
desarrolla el proceso y el tipo de
trasferencia de oxigeno es de suma
microorganismo cultivado (Duarte, 2013).
importancia en el crecimiento de los
En un biorreactor se desea un alto
microorganismos aerobios y es variable
rendimiento
fundamental para el escalado y la
productividad,
economía de los sistemas de biosíntesis
reproducibilidad
aerobia por cuanto este valor determinará
fermentación deseado (Nielsen, J et al.
la productividad del sistema. (Erazo, E. et
2002).
al. 2001).
En estudios realizados por Duarte, E. et al.
El oxígeno disuelto es un nutriente
(2013), señalan que la característica
limitante en cultivos con demanda de
general de los problemas de transferencia
oxígeno, esto puede deberse a la velocidad
de masa en un sistema fermentativo es que
de crecimiento del microorganismo, a una
el oxígeno pasa desde una fase a otra en la
alta producción de biomasa o a que las
cual se encuentra el microorganismo. Las
propiedades reológicas de los medios de
distintas
cultivo
fenómeno son:
de
oxígeno,
ofrezcan
una
resistencia
de
a
la
del
de
biorreactor,
producto, así
etapas
una
alta
una
alta
proceso
de
como del
las
presentes
en
este
transferencia de masa Erazo, E. et al.
• Transporte del oxígeno desde la fase
(2001). Por consiguiente el producto del
gaseosa hacía la interfase gas-líquido.
coeficiente de transferencia de oxigeno
• Difusión del oxígeno a través de la
representa un índice de la capacidad de
interfase gas-líquido.
aireación de un biorreactor por lo tanto en
• Transporte del oxígeno a través de la fase
el biorreactor, la transferencia de oxígeno
líquida
está afectada por diferentes factores que
microorganismo.
hasta
las
vecindades
del
2
• Difusión del oxígeno en la interfase
7H2 O), 0,5g de sulfato de
líquidosólido (célula).
amonio [(NH)4 SO4]. Posteriormente se
• Difusión intrapartícula (intracelular).
llevó la muestra a un autoclave por 15
• Reacción bioquímica intracelular.
minutos a una temperatura de 121°C,
En
consecuencia,
el
diseño
y
las
luego
se
adicionó
13,33g
de
condiciones de operación del biorreactor
Saccharomyces cerevisiae y se ajustó el
deben
los
pH a 5.5, luego de esto, se sometió el
el
inóculo a agitación durante 18-24 horas a
ser
tal
requerimientos
que de
satisfacen
oxígeno
por
microorganismo (Duarte, E. et al. 2013).
una temperatura d 28-30°C.
Por cosiguiente, el objetivo de este estudio es determinar y evaluar el coeficiente de
2.2 Inoculación
transferencia de oxigeno, por un caldo de
Más tarde se procedió a inocular en un
fermentacion
10% del volumen de fermentación el
con variaciones
en la
velocidad de agitacion.
preinóculo de levadura en el fermentador de 1L, que contiene
el
caldo
de
2. METODOLOGÍA
fermentación. Una vez realizado este paso,
Esta investigación se llevó a cabo en la
se realizó un arreglo a los accesorios del
Planta Piloto de Operaciones Unitarias de
fermentador y se tomó la lectura del
la Universidad de Sucre, sede Puerta
oxígeno disponible con el sistema agitado.
Verde - vía Sampués. En primer lugar es importante tener en
2.3 Suministro de aire
cuenta que para la determinación del
Luego de haber realizado la lectura del
coeficiente volumétrico de transferencia
oxígeno disponible, se suministró la mayor
de oxígeno, se utilizaron 3 velocidades de
cantidad de aire posible (1-2-vvm),
agitación diferentes: 70, 210 y 350 rpm.
posteriormente se esperó que el sistema se estabilizara en cuanto a la concentración
2.1 Preparación del preinóculo
de oxígeno disuelto, aproximadamente
Posteriormente se procedió a mezclar 25g
10min.
de glucosa, 1h de fosfato de potasio
2.4 Medición del Oxígeno
monobásico (KH2SO4), 0,5g de sulfato de
Desde un tiempo 0 se empezó a medir cada
(MgSO4 ·
10 segundos el oxígeno disuelto durante
Magnesio
heptahidratado
3
10 minutos continuos. Luego se suspendió el suministro de aire y se continuó
𝑲𝑳𝒂
midiendo la misma variable cada 5
̅̅̅̅ 𝐶𝐴𝐿 − 𝐶𝐴𝐿1 𝐿𝑛(̅̅̅̅ ) 𝐶𝐴𝐿 − 𝐶𝐴𝐿2 = (𝑡2 − 𝑡1 )
segundos hasta alcanzar una concentración de oxígeno disuelto similar a la inicial, es 3. RESULTADOS
decir cuando el sistema no era aireado.
2.5 Reinicio de la Aireación
Día 1, Tratamiento 1
Posteriormente se realizó un reinicio de la
D Agitador
3 cm
aireación, inmediatamente se iba anotando
D Difusor
3 mm
cada 5 segundos la concentración de
D Tanque
8,5 cm
Vol Tanque
300 ml
pH
5,52
Flujo de aire
1,2 L/min
rpm
150 min-1
VVM
4 min-1
oxígeno
disuelto
hasta
alcanzar
la
concentración del tiempo cero.
2.6
Cálculo
del
coeficiente
de
transferencia de oxigeno (𝑲𝑳𝒂 ) Tabla 1: Condiciones de trabajo de la investigación a 150 rpm día.
Para calcular los kLa, se empleó el método dinámico, el cual se representa por medio de la siguiente ecuación.
[O2] mg/L
[O2] mg/L vs Tiempo a 150 rpm 9 8 7 6 5 4 3 2 1 0
y = -0,0018x + 6,8964 R² = 0,9034
Oxigenación Desoxigenacion Reoxigenación Lineal (Desoxigenacion)
0
500
1000
1500
2000
2500
3000
Tiempo (s) Grafico 1: [O2] en función del tiempo y velocidad de respiración de cultivo a 150 rpm día.
4
Día 1, Tratamiento 2 Diámetro del difusor
3mm
Diámetro del agitador
3cm
Volumen del liquido
300ml
[O2] inicial
0,0 mg/L
densidad del liquido
979,16 kg/m^3
T aire
25°C
pH
5,59
Velocidad de agitación
300 rpm
flujo de aire
0,54 L/min
VVM
1,79 min-1
Tabla 2: Condiciones de trabajo de la investigación a 300 rpm día 1.
[O2] mg/L
[O2] mg/L vs Tiempo a 300 rpm 4 3,5 3 2,5 2 1,5 1 0,5 0
y = -0,0008x + 1,1581 R² = 0,8957
Oxigenación Desoxigenación Reoxigenación Lineal (Desoxigenación)
0
500
1000
1500
2000
2500
3000
Tiempo (s)
Grafico 2: [O2] en función del tiempo y velocidad de respiración de cultivo a 300 rpm. (Ajustada) día 1.
Día 1, Tratamiento 3 D Agitador
3 cm
D Difusor
3 mm
D Tanque
8,5 cm
Vol Tanque
300 ml
pH
5,52
Flujo de aire
1,2 L/min
rpm
450 min-1
VVM
4 min-1
Tabla 1: Condiciones de trabajo de la investigación a 450 rpm día 1.
5
[O2] mg/L vs Tiempo a 450 rpm 3,5 3 Oxigenacion
[O2] mg/L
2,5
Desoxigenación
2 1,5
Reoxigenación
y = -0,0001x + 0,4753 R² = 0,8695
1
Lineal (Desoxigenación)
0,5 0 -0,5
0
1000
2000
3000
4000
5000
Tiempo (s) Grafico 3: [O2] en función del tiempo y velocidad de respiración de cultivo a 450 rpm. (Ajustada) día 1.
Día 2, Tratamiento 1 D Agitador
3 cm
D Difusor
3 mm
D Tanque
8,5 cm
Vol Tanque
300 ml
pH
5.52
Flujo de aire
0,43 L/min
rpm
150 min-1
VVM
1,43 min-1
Tabla 4: Condiciones de trabajo de la investigación a 150 rpm día 2.
[O2] mg/L vs Tiempo a 150 rpm 10 Oxigenación
[O2] mg/L
8 6
Desoxigenación
y = -0,0022x + 4,2394 R² = 0,8889
4
Reoxigenación
2 0 -2
0
500
1000
1500
2000
Tiempo (s)
2500
3000
Lineal (Desoxigenación)
Grafico 4: [O2] en función del tiempo y velocidad de respiración de cultivo a 150 rpm. (Ajustada) día 2.
6
Día 2, Tratamiento 2 3 cm D Agitador D Difusor
3 mm
D Tanque
8,5 cm
Vol Tanque
300 ml
pH
5,52
Flujo de aire
0,43 L/min
rpm
300 min-1
VVM
1,43 min-1
Tabla 5. Condiciones de trabajo de la Investigación a 300 rpm día 2.
[O2] mg/L vs Tiempo a 300 rpm 8 7 6
[O2] mg/L
5
Oxigenación
4 3
Desoxinación
y = -0,0014x + 3,1638 R² = 0,8511
2
Reoxigenación Lineal (Desoxinación)
1 0 -1 0
1000
2000
3000
4000
Tiempo (s) Grafico 5: [O2] en función del tiempo y velocidad de respiración de cultivo a 300 rpm. (Ajustada) día 2.
Día 2, Tratamiento 3 D Agitador
3 cm
D Difusor
3 mm
D Tanque
8,5 cm
Vol Tanque
300 ml
pH
5,52
Flujo de aire
0,43 L/min
rpm
450 min-1
VVM
1,43 min-1
Tabla 6: Condiciones de trabajo de la investigación a 450 rpm día 2.
7
[O2] mg/L
[O2] mg/L vs Tiempo a 450 rpm 5 4,5 4 3,5 3 2,5 2 1,5 1 0,5 0 -0,5 0
Oxigenación y = -0,0005x + 0,6546 R² = 0,8579
Desoxigenación Reoxigenación Lineal (Desoxigenación)
500
1000
1500
2000
Tiempo (s)
Grafico 6: [O2] en función del tiempo y velocidad de respiración de cultivo a 450 rpm. (Ajustada) día 2.
Día 3, Tratamiento 1
[O2] mg/L vs Tiempo a 150 rpm 6 5
[O2] mg/L
4 Oxigenación
3
y = -0,0004x + 0,5564 R² = 0,5922
2
Desoxigenación Reoxigenación
1
Lineal (Desoxigenación)
0 0 -1
500
1000
1500
2000
2500
Tiempo (s) Tabla 7: [O2] en función del tiempo y velocidad de respiración de cultivo a 150 rpm. (Ajustada) día 3.
8
Día 3, Tratamiento 2 D Agitador
3 cm
D Difusor
3 mm
D Tanque
8,5 cm
Vol. Tanque
300 ml
pH
5,52
Flujo de aire
1,63 L/min
rpm
300 min-1
VVM
5,43*10^-3 min-1
Tabla 8: Condiciones de trabajo de la investigación a 300 rpm día 3
[O2] mg/L vs Tiempo a 300 rpm 7 6
[O2] mg/L
5 Oxigenación
4
Desoxigenación
y = -0,0002x + 0,3648 R² = 0,7016
3 2
Reoxigenación
1 0 -1 0
Lineal (Desoxigenación) 500
1000
1500
2000
2500
Tiempo (s)
Grafico 8: [O2] en función del tiempo y velocidad de respiración de cultivo a 300 rpm. (Ajustada) día 3
Día 3, Tratamiento 3 D Agitador
3 cm
D Difusor
3 mm
D Tanque
8,5 cm
Vol Tanque
300 ml
pH
5,52
Flujo de aire
1,63 L/min
rpm
450 min-1
VVM
5,43X10^-3 min-1
Tabla 9: Condiciones de trabajo de la investigación a 450 rpm día 3 .
9
[O2] mg/L vs Tiempo a 450 rpm 7 6
[O2] mg/L
5 4
Oxigenación Desoxigenación
3 y = -0,0002x + 0,3227 R² = 0,519
2
Reoxigenación Lineal (Desoxigenación)
1 0 -1
0
500
1000
1500
2000
Tiempo (s)
Grafico 9: [O2] en función del tiempo y velocidad de respiración de cultivo a 450 rpm. (Ajustada) día 3.
Dia1
150
Dia2
300
Dia3
450
Kl 0,0701 0,0454 0,0093 0,0833 0,013 0,0093 0,0054 0,2064 0,045
Promedio 0,0397
0,0463
0,0252
Tabla 10: Promedio de kLa hallados
En la tabla 15 se encuentra los kLa hallados, y las variables respectivas. (Anexos)
4. ANÁLISIS DE RESULTADO En la bibliografía de Doran (1998), indican que si se obtienen valores pequeños de kLa para un determinado
sistema, la capacidad del reactor para suministrar oxigeno es limitada, por consiguiente, se espera que durante los procesos de aireación los valores kLa sean
10
mayores. No obstante, se debe tener en
productividad
cuenta las variables que afectan ese
(Buitrago H. et al. 2013).
resultado, es decir, la velocidad de agitación, de ariacion y de flujo de aire.
del
cultivo
Por otro lado, algunos estudios también demuestran
que
muchas
veces
hay
Ahora bien, teniendo en cuenta lo anterior,
dificultad para predecir el KLa en
y analizando los resultados obtenidos (ver
biorreactores
tabla 10, es posible determinar entonces,
existentes, por lo tanto, se ha determinado
que
mayores
que para hallarlos se puede hacer de
corresponde a una velocidad de agitación
manera experimental, sin embargo esto
de 300 rpm.
refleja ciertos problemas en los resultados
los
kLa
con
valores
Buitrago H. et al. (2013). Reportó en sus estudios
que
un
aumento
de
la
concentración de biomasa debido al incremento en los niveles de aireación, indican que al mejorar las condiciones de oxigenación
se
incrementa
la
productividad del cultivo. Sin embargo esta teoría no se pudo comprobar, puesto que a pesar de que en este estudio, se trabajó con una velocidad de agitación mayor a 300rpm, lo cual en un inicio se esperaba que los valores de kLa obtenidos fueran mayores, no fue así, ya que como se mencionó
anteriormente
se
deben
considerar otras variables que influyen a la hora de trabajar con sistemas de aireación.
mediante
correlaciones
obtenidos, por lo que se recomienda que en cualquier método empleado para medir el kLa las condiciones de medida debe ser lo más similares posibles a las existentes en el fermentador durante la operación (Doran, 1998). 4.1 Análisis del método empleado: En diversos estudios emplean el método dinámico para la determinación del coeficiente volumétrico de transferencia de oxígeno, tanto así que es posible decir, que es uno de los más utilizados; esto se debe
a
que
la
principal
ventaja
corresponde al bajo costo de los equipos analíticos necesarios, otro ventaja podría ser que la medición es independiente de la
Por lo tanto a partir de los kLa obtenidos,
solubilidad de oxígeno y se puede llevar a
teniendo solo en cuenta la velocidad de
cabo incluso si CAL es desconocida, sin
agitación, no es posible determinar qué
embargo este método a pesar de ser simple
valor de kLa proporciona una mejor
y fácil de realizar experimentalmente, 11
puede dar resultados muy inexactos salvo
consideró
los
siguientes
que se examinen y caractericen varios
variables: la aireación, la agitación y la
aspectos del sistema de medición (Doran,
viscosidad, obteniendo los siguientes kLa:
1998).
45,50 a 2,00vvm, L/L/mln, 80,90 a 800rpm y 13,90 a 200 µ,cP. Fournier,
5. DISCUSIÓNES.
(2014) empleó el método dinámico y Un promedio de los valores de kLa
consideró
obtenidos de acuerdo a la variación de la
agitación y aireación, obteniendo los
velocidad de agitación mediante el método
siguientes kLa: 9,225 a 250rpm-4Lpm y
dinámico y considerando variables como:
20,01 a 400rpm-8Lpm.
las
siguientes
variables:
velocidad de agitación, velocidad de flujo de aire y velocidad de aireación se observan en la tabla 10, los resultados indican que a una velocidad de 300rpm se obtiene un KLa mayor, que al utilizar una rpm de 450. Ahora bien, un gran número de autores utilizan diferentes métodos y consideran
diversas
variables
para
determinar el KLa, por ejemplo Buitrago H. et al. (2013) empleó dos métodos diferentes para hallar los kLa los cuales fueron: El método dinámico y cuando se emplea consideró
agua las
como
medio,
siguientes
además
Cabe resaltar que todos los autores anteriormente mencionados, llegaron a la conclusión de que los resultados obtenidos se ven afectados por la incidencia de la transferencia de oxígeno y por cambios en la agitación al compararlos con cambios en la aireación. 5.1 Análisis experimental. Dado lo anterior se propuso realizar un análisis de varianza (ANOVA), para poder determinar que variable permitía optimizar los niveles de aireación.
variables:
Agitación (rpm), Presión en el aireador externo (psi), Temperatura (°C) y flujo de gas medido en vvm, obteniendo los siguientes kLa: 20,16 a 0,5vvm-200rpm y 40,68 a 1vvm-300rpm. Erazo E., (2001)
Agitación (rmp) Repeteciones
Dia 1 Dia 2 Dia 3
150 0,0701 0,0833 0,0054
300 0,0454 0,013 0,206
450 0,0093 0,0093 0,045
Tabla 11: kLa obtenidos teniendo en cuenta la agitación.
empleó la técnica de eliminación de gas y
12
ANÁLISIS DE VARIANZA Origen de las variaciones
Suma cuadrados
Filas
de
Grados de libertad
Promedio de los cuadrados
F
Probabilidad
Valor crítico para F
0,000468723
1
0,00046872
2,374450678
0,36646653
161,447639
Columnas
0,000107123
1
0,00010712
0,542660301
0,59580671
161,447639
Error
0,000197403
1
0,0001974
Total
0,000773248
3
Tabla 12: Analisis de varianza considerando las velocidades de agitación.
Del ANOVA anterior se puede inferir que con un nivel de significancia del 0,5% se puede decir que el tratamiento que mejor se amolda al modelo es el segundo, (300rmp) ya que es el que mejor se adapta y tiene una mayor linealidad al momento de describirse los datos esto corroborado con un P de 0,297809638690646 y un F de 1,94532803897437. En apartados anteriores se había mencionado que para poder determinar que variables influyen de mejor manera en
los kLa, se deben considerar todas, por lo que también fue necesario realizar un segundo analisis de varianza teniendo en cuenta la velocidad de aireación (ver tabla 13 y 14) Velocidad de aireación (vvm) Día 1
0,0701
0,0833
0,0054
Día 2
0,0454
0,013
0,0206
Día 3
0,0093
0,0093
0,0045
Tabla 13: kLa obtenidos teniendo en cuenta la aireación.
ANÁLISIS DE VARIANZA Origen de las variaciones
Suma de cuadrados
Grados de libertad
Promedio de los cuadrados
Entre grupos
0,0003223
2
0,000161147
Dentro de los grupos
0,0007881
3
0,000262685
Total
0,0011103
5
Tabla 14:
F
0,61345972
Probabilidad
0,59792392
Valor crítico para F 9,5520945
Analisis de varianza considerando las velocidades de aireacion
El analisis de varianza respecto a los vvm, indicó que con un nivel de significancia del 0,5% se puede decir que el tratamiento
que mejor se amolda al modelo es el del día dos en su tratamiento 1 de 1,43-150 con valor de 0,0454, ya que su 13
adaptabilidad es mejor y esto es corroborado por la ANOVA que tiene un P de 0,59792392 y un F de 0,3164972. Analizando los resultados obtenidos en los analisis de varianza realizados, es posible inferir que se cumple con la teoría expuesta por Doran, (1998), en la cual expresa que las variables que mas influyen a la hora de determinar el kla son la agitacion y la aereación. 6. CONCLUSIONES Luego de desarrollar la serie de análisis por medio del método dinámico con el cual calculamos el coeficiente global de transferencia de oxígeno (KLa) para cada tratamiento los resultados no fueron los esperados debido a que había muchas variables con gran incidencia sobre el coeficiente KLa, las cuales fueron, la velocidad de agitación, flujo de aire y vvm. Para el valor de la transferencia de oxígeno se esperaba un valor del coeficiente de (KLa) relativamente alto con respecto al rpm, esto con el fin de obtener el mayor rendimiento de esta. Se realizó un análisis de varianza ANOVA con el fin de determinar cuál fue el mejor tratamiento con respecto a las RPM, arrojó que con un nivel de significancia del 0,5% se determinó que el tratamiento que mejor amolda al proceso es el segundo, debido a que tiene una mayor linealidad al momento de describirse. Después se comparó los resultados del coeficiente kla teniendo en cuenta dos variables, velocidad de agitación y vvm, este arrojó que en el dia 2 con su respectivo tratamiento número 1 corresponde al mejor tratamiento debido a que se amolda al proceso y su
aceptabilidad es mejor, corroborado por ANOVA.
7. CUESTIONARIO Ventajas y desventajas que pueda tener este método en comparación a los otros que ya usted conoce. La ventaja principal de este método dinámico para la determinación del KLa es su bajo costo, y a la vez que su procedimiento es relativamente fácil. La desventaja que tiene es que es un método dinámico es que no es muy fiable y muchas veces requiere varios montajes para conseguir un resultado adecuado. El Kla también se puede determinar por el método de balance de oxígeno el cual consiste en medir la concentración de oxígeno en la entrada y salida del fermentador, además este método puede aplicarse a los fermentadores durante la operación. ¿Qué otros factores pueden alterar el valor del KLa en un sistema de fermentación? En estos biorreactores el coeficiente global de transferencia de masa (KLa) es el parámetro de mayor relevancia en el diseño y la operación, dependiendo de una gran cantidad de factores, por ejemplo, de la velocidad de agitación que modifica el régimen de turbulencia y disminuye el tamaño de burbuja. Sin embargo, el consumo de energía es proporcional a la velocidad a la tercera potencia y al diámetro del agitador a la quinta potencia incidiendo en el costo de operación. Además de lo anterior, se debe tenerse en 14
cuenta que altas velocidades de agitación tienen una influencia negativa en la productividad de complejos enzimáticos, debido al efecto de los esfuerzos de corte sobre el cultivo. (Bandaiphet, 2006). Agitación: Aumenta el área de intercambio por ruptura de las burbujas y aumenta el área por unidad de volumen. Disminuye el espesor de la película (L) por lo que aumenta el Kla. Aireación: Aumenta el número de burbujas aumenta y disminuye el Kla. Temperatura: Afecta el coeficiente de difusión y la solubilidad (cte de Henry). Viscosidad: A mayor viscosidad, mayor resistencia a la transferencia (ver número de Reynolds). Tensiactivos: Afectan el área de trasferencia y el KL y el efecto global depende de la concentración burbujas más pequeñas aumento del área y del Kla. Aumento de la resistencia de la película disminuye el KL.
Sustancias Orgánicas: Antiespumantes: disminuyen el Kla. Peptonas, micelio, biomasa: disminuyen el Kla. Alcoholes, cetonas y esteres: aumentan el Kla. (Voget. Prieto, 2016) Efecto de iones disueltos: El coeficiente volumétrico de transferencia de masa aumenta significativamente cuando la concentración de iones en la disolución se eleva. La adición de electrolitos aumenta la retención del gas debido a su influencia en disminuir el tamaño de burbuja y al generar un efecto de no-coalescencia tanto a baja presión como a alta presión. En las
disoluciones iónicas el kLa es más dependiente de la potencia por unidad de volumen que en comparación con el agua pura. (Fournier, 2014) Efecto de consumo por parte de microorganismos: El coeficiente de transferencia de oxígeno aumenta con el consumo de oxígeno por parte de los microorganismos. Este efecto se presenta debido a que existe una mejora en la transferencia conforme el oxígeno que entra en disolución es consumido por los microorganismos presentes en el medio. La variación en la tasa específica de absorción de gas por unidad de fuerza motriz por unidades de área interfasial debido a la presencia de microorganismos se conoce como el factor de mejora biológico, E. En términos numéricos, E se puede ver de la siguiente manera:
Donde KLa corresponde al coeficiente volumétrico de transferencia de masa en presencia del microorganismo. El factor de mejora biológico depende no solamente del tipo de microorganismo involucrado en el cultivo, sino también en la concentración de este. E puede tener un valor menor a la unidad, lo cual implica que la presencia del microorganismo entorpece la transferencia de masa; un valor mayor a la unidad, indicando que la transferencia es favorecida por el microorganismo; o valores cercanos a 1, lo cual es indicio de que la presencia del microorganismo no interfiere de gran manera en la transferencia de oxígeno. Si 15
bien el valor de E se puede obtener experimentalmente para distintas condiciones de operación. (Soler, 2010)
Dia
RPM
t1
t2
Cal1
Cal12
CAL
Kl(s)
Kl(h)
[m(O2).x]
T1
150
2215
2225
3,88
5,73
7,55
0,0701
252,4879
0,0080
0,2574 0,2494
T2
300
2690
2700
0,6
0,75
1,28
0,0833
300,1424
0,0007
0,1016 0,1009
T3
450
3710
3720
0,01
0,17
3,03
0,0854
19,5900
0,0001
0,0164 0,0163
T1
150
2490
2500
1,24
3,57
7,63
0,454
163,2784
0,0023
0,2898 0,20875
T2
300
3617
3621
0,016
0,33
6,2
0,0130
46,8996
0,0014
0,0806 0,0791
T3
450
1555
1565
0,05
0,74
3,75
0,2054
74,3010
0,0005
0,7637 0,7632
T1
150
1750
1760
0,0083
0,4316
4,7808
0,0093
33,4362
0,0004
0,0443 0,0439
T2
300
1750
1760
0,01
0,52
5,76
0,0093
33,4362
0,0002
0,0534 0,0531
T3
450
1705
1715
0,11
0,37
6,03
0,0045
16,1685
0,0002
0,0266 0,0264
1
Dia 2
Dia 3
Tabla 15 : KLa obtenidos, con las respectivas variblaes.
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