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UNIVERSIDAD NACIONAL MICAELA BASTIDAS DE APURIMAC (UNAMBA) FACULTAD DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA

GUIA DE PRÁCTICA EMBRIOLOGIA VETERINARIA VZ - 202

AUTOR: MSc. MVZ DELMER ZEA GONZALES

ABANCAY – 2014

Universidad Nacional Micaela Bastidas de Apurimac Zea D. ___________________________________________________________________________

GUIA DE PRÁCTICA DE EMBRIOLOGIA VETERINARIA MVZ Delmer Zea Gonzales Cel. 951621982 E-mail: [email protected] Abancay-Perú

2° edición 2014 Autor: MVZ Delmer Zea Gonzales Abancay, Junio del 2014.

Se permite la reproducción total o parcial de esta guía y el almacenamiento en un sistema informático, y la transmisión de cualquier forma o cualquier medio electrónico, mecánico, o fotocopia, registro u otros medios si es citado en la revisión de bibliografía durante su investigación.

IMPRESO EN ABANCAY PERÚ – PRINTED IN ABANCAY PERÚ

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GUIA DE PRÁCTICA DE EMBRIOLOGIA VETERINARIA I. INTRODUCCION La presente guía de práctica es un manual para el alumno que le permitirá saber con anticipación las practicas que se realizaran durante el semestre académico 2014 I - II y así de ese modo hacer monitoreo del avance de las practicas que se realizaran. II. INSTRUCCIONES DE LAS PRACTICAS DE LABORATORIO 2.1.

EL DESARROLLO DE LAS PRACTICAS

 Los alumnos formarán sus grupos de trabajo con los que trabajaran durante todo el semestre académico.  Se utilizará un microscopio que será proyectado mediante el equipo multimedia, el cual permitirá a los alumnos observar, describir, y participar en identificar las distintas estructuras embriológicas.  El material que se entregue será motivo de la observación y estudio completo en el aula durante el tiempo establecido para la práctica debiéndose concluir con los protocolos dentro del tiempo establecido.  Los alumnos deberán concurrir con puntualidad a la práctica. Se considera ausente a los que no se encuentren en la hora mencionada.  El cuidado de los materiales facilitados será de entera responsabilidad del estudiante o docente, asumiendo con el pago de dicho material, equipo, reactivo dañado, etc. 2.2.

MATERIALES QUE DEBEN TRAER A CADA PRACTICA

 Cada alumno debe contar con un cuaderno de apuntes, libros y elementos básicos de dibujo (regla, lápices de colores, borrador, etc.)  Es obligatorio la asistencia con mandil.  Si el caso lo requiriera se sorteará por grupos para la obtención de algún material biológico que es necesario para la práctica.  También se pedirá que los estudiantes tengan una franela de limpieza, su toalla, jabón, y lejía para desinfectar. NOTA IMPORTANTE: La reposición de cualquier material, aparato o equipo roto, descompuesto o extraviado, será de entera responsabilidad del causante. 2.3.

DEL MATERIAL QUE RECIBIRAN

 Los alumnos serán responsables del material que reciban (microscopio, láminas, etc.) Este material será usado con todo cuidado y devuelto tal como se lea prestado al finalizar la práctica.  Al recibir el microscopio los alumnos deberán tomar nota cuidadosa del número del mismo, así como de los accesorios que estén completos.

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 Recuerde que el microscopio es un aparato de precisión y delicado y como tal debe ser tratado con mucho cuidado.  Al recibir el microscopio, en cada clase, verifique que este completo y en buen estado. Comience a trabajar solo después de haber hecho esta verificación, en caso contrario asumirá la responsabilidad de cualquier defecto que se compruebe posteriormente.  Al terminar la practica coloque el objetivo más pequeño en el eje óptico, retire la lámina de la platina, ajuste las pinzas, y tornillos.  No intente observar con los lentes de 100 x por que pudiera provocar ruptura o rajadura de la lámina.  Si en caso que se usa materiales biológicos tener mucha bioseguridad (usar guantes, barbijos, etc)  Dejar los materiales tal como se encontró, es decir limpios. III. METODOS PARA LA OBSERVACIÒN DE LA LÀMINA La observación de la lamina se debe iniciar con el objetivo denominado panorámico o de campo (objetivo 4X ó 10X) recorriéndose la muestra a lo largo y ancho. Esto permite:  Identificar los elementos estructurales para reconocer el tejido u órgano que se está observando.  Localizar el área o estructura histológica que se desea estudiar. Ejm. Corte del intestino: Identificar la luz, las vellosidades, la capa muscular, etc.  Una vez terminado la observación del área en estudio con el objetivo panorámico, se cambia al objetivo de mayor aumento (objetivo de 40X) colocando antes al centro del campo visual el área que se desea tipificar. Lo que permite:  Identificar las características individuales celulares (detalle celular), tales como: Forma, tamaño, relación núcleo /citoplasma, modificaciones tintoríales (coloración), etc.  Determinación de la ubicación del tejido y sus relaciones. IV. EXPLICAR EL USO ADECUADO DE MATERIALES Y EQUIPO DE LABORATORIO. El uso del microscopio es sumamente importante conocer:  Sus partes y la función de cada una de ellas.  Cómo manipular el sistema óptico para obtener el mayor aumento y resolución.  Cómo manipular el sistema de iluminación para su observación adecuada.  Cuidados y almacenamiento del microscopio.

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PRACTICA N° 01 RECONOCIMIENTO DE EQUIPOS DE LABORATORIO I. INTRODUCCIÓN Un laboratorio es un lugar equipado con diversos instrumentos de medida o equipos donde se realizan experimentos o investigaciones diversas, según la rama de la ciencia a la que se dedique, en nuestro caso seria para estudiar a los embriones de las diferentes especies. También puede ser un aula o dependencia de cualquier centro docente acondicionada para el desarrollo de clases prácticas y otros trabajos relacionados con la enseñanza. Su importancia, en cualquiera de sus especialidades (química, dimensional, electricidad, biología, etc.) radica en el hecho de que las condiciones ambientales están controladas y normalizadas, de modo que: -

Se puede asegurar que no se producen influencias extrañas (a las conocidas o previstas) que alteren el resultado del experimento o medición: Control. Se garantiza que el experimento o medición es repetible, es decir, cualquier otro laboratorio podría repetir el proceso y obtener el mismo resultado: Normalización. Nos permite identificar y describir el tema de estudio del curso es decir, estudiar a los embriones animales

II. OBJETIVOS -

Reconocer los equipos disponibles de nuestros laboratorios de nuestra Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia. Conocer y describir las características de los diferentes equipos que se usan para el estudio de la embriología.

III. MATERIALES - Microscopio binocular - Microscopio invertido - Microscopio electrónico de barrido - Micro manipuladores - Ecógrafos - Dopler - Micrótomo - Materiales de vidrio IV. PROCEDIMIENTO Primero: Se procederá a preguntar a los alumnos sobre las diferentes partes del microscopio, uso correcto de este equipo y otros tipos de microscopias que deberían usarse en embriología.

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Segundo: Luego se procederá a mostrar, describir y usar el micrótomo disponible en la carrera y hacer una descripción de otros tipos de micrótomos Tercero: Se procederá a mostrar y usar el termómetro del PH metro disponible de la carrera Cuarto: Los alumnos procederán a hacer una descripción de todos los materiales de vidrio disponibles en la carrera. Quinto: Mediante diapositivas se procederá a hacer una descripción de equipos muy usados en la clínica como de Dopler, Ecógrafo, Microscopio Electrónico. V. RESULTADOS Toma apuntes de los equipos mencionados listos para hacer su informe de prácticas, agregando otros equipos disponibles para embriología. VI. CUESTIONARIO 6.1. ¿Describa pegue y/o dibuje el primer microscopio y su historia? 6.2. ¿Describa pegue y/o dibuje los diferentes equipos que se mencionaron durante la práctica? 6.3. ¿Qué otros equipos además de los mencionados durante la práctica se puede usar en el estudio de los embriones?

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PRACTICA N° 02 ORGANOS REPRODUCTIVOS DEL MACHO Y LA HEMBRA I. INTRODUCCIÓN Puesto que los estudiantes ingresantes al segundo semestre académico, están llevando en paralelo el curso de anatomía y embriología, se procederá a hacer una descripción de la anatomía reproductiva del macho y de la hembra, a fin de darle los cimentos básicos para poder entender el curso de embriología. II. OBJETIVOS -

Hacer una descripción anatómica del aparato reproductor del macho Hacer una descripción anatómica del aparato reproductor de la hembra

III. MATERIALES - Equipo de disección - Bisturí - Algodón de 7 x 7 cm - Pabilo de algodón - Lápiz 2B - Copias y libros sobre la anatomía del aparato reproductor del macho y la hembra. - Bandeja para poder hacer la disección - Regla - Cuaderno de apuntes. - Formol un litro preparado al 12%. IV. PROCEDIMIENTO Primero: Se obtiene muestra biológica del aparato reproductor del macho y de la hembra de vacuno. Segundo: Se procede a realizar la disección necesaria. Tercero: Se hace una descripción de ubicación de las diferentes partes del aparato reproductor del macho y de la hembra. Cuarto: Se realiza la toma de muestras del aparato reproductor para preparar láminas histológicas del aparato reproductor del macho y de la hembra. V. RESULTADOS Toma apuntes e identifica cada una de las partes del aparato reproductor del macho y de la hembra. VI. CUESTIONARIO 6.1. Dibuje en forma grafica, señalando las partes del aparato reproductor del vacuno, ovino, alpaca, cuy, ave, porcinos, caninos y gatos del macho y hembra.

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PRACTICA N° 03 TECNICAS HISTOLOGICAS I. INTRODUCCIÓN Los tejidos deben recolectarse lo más pronto posible después de la muerte o eutanasia del animal. El grosor del tejido dependerá de la muestra pero como regla general no debe ser mayor de 1.5 cm y debe ser colocado en un frasco que contenga por lo menos 10 veces su volumen de fijador. Cuando se toman muestras demasiado gruesas se fijaran las partes periféricas mientras que en el centro, al que no puede penetrar con rapidez el fijador, seguirá el proceso de autolíticos. Para poder observar las células, la mayoría de veces es necesario colorearlas porque de lo contrario sería trasparentes y la visualización de sus estructuras sería difícil de observarlas (Agurto, 2007). Existe un examen inmediato (in vivo) y un examen mediato (post mortem), se toma la muestra, se fija, se procesa, se colorea, se monta y se observa al microscopio. Para realizar la coloración de hematoxilina-eosina, el fijador más utilizado es el formol al 10% amortiguado a un pH de 7.2. Tiene la ventaja de que en él pueden permanecer los tejidos por tiempo indefinido (Agurto, 2007). Los recipientes para la muestra debe ser de boca ancha para que puedan salir íntegras y fácilmente, una vez fijadas. Las muestras para estudios histológicos nunca deben guardarse en congelación (Agurto, 2007). II. OBJETIVOS -

Realizar las técnicas histológicas de los órganos reproductores del macho cuyas muestras se obtuvieron de la práctica anterior. Realizar las técnicas histológicas de los órganos reproductores de la hembra cuyas muestras se obtuvieron de la práctica anterior.

III. MATERIALES -

Batería de reactivos para realizar las técnicas histológicas 01 caja de laminas porta objetos 01 caja de laminas cubre objetos Microscopio Guía de elaboración de láminas histológicas (la guía se encuentra en la biblioteca especializada bajo el titulo: Técnicas histológicas, autor Delmer Zea)

IV. PROCEDIMIENTO Primero: Durante la anterior semana se procedió a la toma de muestra del aparato reproductor del macho y la hembra, y luego se hace el proceso de deshidratación, hasta llegar a preparar los tacos para los cortes.

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Segundo: Se procederá a realizar los cortes histológicos y la correspondiente tinción de los tejidos que tomaron las muestras. Tercero: Se procederá a clasificar las mejores láminas y ponerles su identificación. V. RESULTADOS Obtiene láminas histológicas preparadas VI. CUESTIONARIO 6.1. Cuales son los pasos para realizar las técnicas histológicas 6.2. Que otros tipos de coloración para tejidos existe, explique unos 03 6.3. Que otro tipo de tinción se podría realizar en el curso de embriología veterinaria.

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PRACTICA Nº 04 OBSERVACION DE GAMETOS DE LA HEMBRA I. INTRODUCCION El ovario realiza dos funciones principales. Una es la producción cíclica de óvulos. La segunda es una producción de una proporción balanceada de hormonas esteroideas que mantienen el desarrollo del aparato reproductor, facilitan la migración del embrión incipiente y aseguran su implantación y desarrollo exitoso en el útero. El enorme tamaño del huevo de las aves se debe a que el ovocito es una célula gigantesca, de hasta varios centímetros de diámetro, y además durante su descenso por el útero, se va a rodear de una serie de membranas terciarias, que le confieren una protección especial para aislarlo del medio exterior en curso de su desarrollo, a estos se les llama Cleidóticos o cerrados, para distinguir de los placentarios, que no necesitan protecciones especiales ya que se desarrolla dentro del útero de la madre. II. OBJETIVOS: -

Recuperar ovocitos a partir del ovario Conocer las diferentes partes del ovocito de las aves

III. MATERIALES 3.1. Para observar ovocitos de mamíferos -

Ovarios de vaca, equinos, oveja o marrana (traen la muestra los alumnos) Vaso de precitación de 200 cc (laboratorio) Solución Fisiológica (NaCl 0.9%) 1 litro Jeringa de 5ml y aguja Nº 21 (alumnos) Placas petri pequeñas de 35 mm (01 unidad) Equipo de disección (alumnos) Papel toalla (alumnos) 02 Estereoscopio (Coordinar con el laboratorio N°102) Guantes quirúrgicos y plumón rotulador (alumnos)

3.2. Para observar ovocitos de aves IV.

Huevo sin fecundar (alumnos) Placa petri Pinza (alumnos) Reglas (alumnos) Copia sobre el tema (alumnos) PROCEDIMIENTO Crecimiento folicular

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Organos reproductores de la vaca

Útero mostrando las diferentes capas histológicas

Ovario: _____________________________________

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Ovario: _____________________________________

Ovario: _____________________________________

Ovario: _____________________________________

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Cuerpo lúteo del ovario

Cuerpo albicans

4.1. Para observar ovocitos -

Se contara con ovarios de vaca, oveja, o marrana frescos Estos serán colocados en vaso precipitado y lavado con solución fisiológica y mantenidos en baño María a 35ºC durante la aspiración folicular de folículo visible (mayores a 2 cm) Se procederá a aspirar cada folículo utilizando una jeringa con aguja N°21

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-

El contenido folicular aspirado será colocado en placa petri pequeña de 35mm previamente cuadriculado. Terminada la aspiración folicular, se inicia la búsqueda de los ovocitos utilizando un estereoscopio a 20x.

4.2. Para observar ovocitos de aves -

Se coloca el huevo sin fecundar en una placa petri Se procede a realizar la lectura y descripción de las diferentes partes del huevos Exponer sobre el tema

V. RESULTADOS: ___________________________________________________________________ ___________________________________________________________________ ___________________________________________________________________ ___________________________________________________________________ ____________________________ VI.

CUESTIONARIO:

VI.1. Dibuje sobre el desarrollo folicular hasta folículo maduro VI.2. Dibuje a un ovocito y sus partes VI.3. Como se realiza la fertilización invitro

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PRACTICA Nº 05 OBSERVACION DE GAMETOS DEL MACHO I.

INTRODUCCION:

El semen es la suspensión liquida que contiene los gametos masculinos (los espermatozoides) y las secreción de los órganos accesorios del aparato reproductor masculino (del macho). La porción liquida de dicha suspensión, que se forma durante la eyaculación, se conoce como plasma seminal (Hafez, 2000). El estudio de estos gametos es importante para poder entender cursos más avanzados como es reproducción animal, biotecnología, parte de la ginecología, y otros cursos. II.

OBJETIVOS: -

III.

MATERIALES -

IV.

Diferencia la motilidad masal Diferencia la motilidad individual Observa las diferentes partes del espermatozoide

Muestra de semen fresco o testículos de un animal recién beneficiado (Mantenido a 37°C) Vaso colector Baño María Microscopios Guantes quirúrgicos (alumnos) Porta y cubre objetos Platina para controlar la temperatura Tubos de vidrio graduado Pipetas paster Equipo de disección Tiras reactivas para determinar el pH PROCEDIMIENTO

Se procederá a poner los nombres y características de estructuras de los cuadros adjuntos: Órganos reproductores del macho (toro)

Testículo y epidídimo

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Testículo: Túbulos seminíferos (colocar los nombres de las estructuras señaladas)

Testículo: Espacio intersticial en pleno procesos de espermatogénesis

En las evaluaciones del semen de los animales reproductores, generalmente se hace un examen macroscópico y microscópico del semen, aparte de la evaluación fenotípica y el performance del animal. EVALUACIÓN MACROSCOPICA IV.1. Volumen: - Se apreciará directamente el tubo colector graduado - Anotar la cantidad colectada

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IV.2. Color: - Se seguirá apreciado en el mismo tubo graduado - El color dependerá de la concentración de espermatozoides (varia de blanco a lechoso, grisáceo lechoso, lechoso, amarillo cremoso o amarillento. - El color azul sucio o azul verdoso indica la presencia de pus - El color rosado o rojo indica la presencia de sangre fresca - El color pardo indica la presencia de sangre vieja IV.3. Evaluación de ph: - Haciendo uso de una pinza introduzca al tubo colector de semen un papel indicador (tornasol) y/o utilice el pH metro digital - Realice la lectura del resultado - El pH del semen de toro oscila entre 6.2-6,8 EXAMEN MICROSCOPICO DEL SEMEN IV.4. Motilidad Masal:

-

La valoración de la motilidad implica la estimación subjetiva de la viabilidad de los espermatozoides y la calidad de la motilidad. Esta evaluación se hará con semen puro. Se tiene que realizar los siguientes pasos: Diseccionar el testículo y hacer corte de tipo longitudinal al epidídimo. Colocar una gota de semen fresco no diluido en una lámina portaobjeto que está calentado a 37°C Observar al microscopio al menor aumento. Observar el movimiento ondulatorio característico Comparar resultados con la siguiente escala numérica y descriptiva Proceder a hacer la descripción de lo que se observa. Cuadro 01. Clasificación del grado de motilidad del semen fresco observado

Grado Clave 5 Muy bueno

Descripción Denso, con ondas, moviéndose rápidamente, no puede observarse espermatozoides individuales, 90% o más de los espermatozoides son activos. 4 Bueno Movimientos vigorosos, pero las ondas y los remolinos no muy rápidos para grado 5, alrededor de 70 a 85% de espermatozoides son activos. 3 Regular Solamente pequeño, bajo movimiento de ondas, espermatozoides individuales pueden ser observados 45 a 65% de células espermáticas activas. 2 Pobre No se forma ondas, pero algún movimiento de espermatozoide es observado, solo 20 a 40% de los espermatozoides están vivos y su motilidad es pobre. 1 Muy Muy pocos espermatozoides (alrededor de 10%) muestran algún pobre signo de vida, con movimientos estacionario. 0 Muertos Todos los espermatozoides no se mueven Fuente: Evans y Maxwell (1987), tomado de la Guía de Practica de Reproducción Animal de Quispe U.S.; Gómez, OE. Y Zea D. (2008) 17

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IV.5.

Motilidad Individual:

Se realizara el siguiente procedimiento: - Tomar una gota de semen puro y mezclar con una gota de suero fisiológico y colocar en una lamina porta objetos a 37 °C. - Se coloca sobre la muestra una lamina cubre objetos - A continuación se observar en un microscopio que tenga calentador empotrado a 37°C - Se trata de contar 10 espermatozoides, si de los cuales vemos que se mueven 7, decimos que el porcentaje de motilidad es de 70% - Determinar el movimiento rectilíneo progresivo de la célula, comparada con la escala adjunta: Cuadro 02. Escala del estimado de motilidad individual Valor Número de Valor Descripción numérico células móviles 5 80 -100 4 60 – 80 3 40 – 60 2 20 – 40 1 00– 20 Fuente: Tomado de la Guía de Practica de Reproducción Animal de Quispe U.S.; Gómez, OE. Y Zea D. (2008) IV.6. -

Observación del espermatozoide

Colocar 01 gotas de semen en el porta objetos, mas 01 gota de suero fisiológico y 01 gota de formol al 10% Luego colocar una lamina cubre objetos, teniendo cuidado de la eliminación de las burbujas de aire. Poner una gota de aceite de inmersión y dibujar todo lo observado en el microscopio

V. RESULTADOS:

VI.CUESTIONARIO: VI.1. ¿Qué otros métodos de evaluación de espermatozoides existe? VI.2. ¿Qué métodos se usan para sexar espermatozoides? VI.3. ¿Existe algún método para determinar la velocidad de los espermatozoides? VI.4. Ponga en un cuadro cuales son las características macroscópicas (volumen, color, pH) del semen de vacuno, ovino, alpaca, perro, porcino, cuy y gallo.

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PRACTICA Nº 06 DESCRIPCIÓN DE LA FECUNDACIÓN HASTA LA GASTRULACIÓN I.

INTRODUCCION:

La fecundación es la unión de dos gametos para dar origen a un nuevo ser de la misma especie. Es una etapa crucial en el desarrollo de toda especie sexuada. Lo acontecimientos que durante ella se suceden son muy similares en todos los vertebrados. Durante la fecundación, la interacción entre ambos gametos es mutua, siendo tan importante la activación del ovulo como la participación que el citoplasma ovular tiene en el metabolismo del pronucleo masculino. Para que la fecundación se produzca, los gametos tienen que encontrarse. En los animales superiores el encuentro ocurre en el interior del organismo materno, para lo cual el macho depositará el semen (inseminación artificial) previo acoplamiento (cópula). Luego del proceso de fecundación continúa el periodo de segmentación que consiste en divisiones mitóticas repetidas del cigoto aumentando el número de células llamadas blastómeros. Estas células embrionarias o blastómeros se hacen más pequeñas con cada segmentación En primer lugar, el cigoto se divide en dos blastómeros, que a continuación lo hacen en cuatro blastómeros y así sucesivamente hasta 16 a 32 blastómeros llegando se a formar la mórula. Todo este proceso se realiza dentro del útero de la hembra. Poco después del ingreso de la mórula en el útero aparece un espacio lleno de líquido, denominado cavidad del blastocisto, dentro de la mórula. El liquido pasa desde la cavidad uterina a través de la zona pelúcida para formar dicho espacio. A medida que el líquido aumenta en la cavidad del blastocisto, los blastómeros se separan en dos partes (Moore, 2007): -

Una capa de células externas delgadas, el trofoblasto que origina la parte embrionaria de la placenta Un grupo de blastómeros centrales, la masa celular interna, que forma el embrión; como constituye el primordio del embrión, la masa celular interna se denomina embrioblasto.

Durante la tercera a la octava semana de desarrollo tiene lugar la etapa denominada periodo embrionario o periodo de organogénesis, en el que cada una de las tres hojas germinativas, ectodermo, mesodermo, y endodermo, da origen a varios tejidos y órganos específicos. Hacia el final del periodo embrionario se ha establecido los sistemas orgánicos principales y hacia el final del segundo mes (en humanos) son reconocibles los principales caracteres morfológicos externos del cuerpo. Todos estos procesos de segmentación o clivaje se harán una descripción por memorizada durante la práctica. II.

OBJETIVOS: -

Conocer las diferentes fases o etapas de la fecundación. Conocer todo el proceso de formación de la fecundación hasta la blastulación.

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-

III.

Conocer los diferente acontecimientos de desarrollo que ocurren en la formación del disco germinativo bilaminar Conocer los diferente acontecimientos de desarrollo que ocurren en la formación del disco germinativo trilaminar MATERIALES

IV.

Proyector multimedia Pizarra acrílica Plumones Colores y lápices para dibujar Guía de práctica del curso Textos PROCEDIMIENTO

-

Se realizará una introducción interesante sobre la importancia del proceso de fecundación. Se detallará paso a paso sobre la formación del huevo o cigoto, formación de la mórula, hasta la gastrulación. El estudiante dibujará los procesos de desarrollo por etapas Tipos de segmentación: mamíferos y aves

Proceso de Fecundación Señale las tres etapas de la fecundación:

La Etapa tres, tiene tres sub etapas. ¿Cuales son?

___________________________________________________________________ ___________________________________________________________________ ___________________________________________________________________ ___________________________________________________________________

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Desplazamiento del huevo o cigoto en dirección al útero

Desarrollo del huevo es diferentes especies, ponga que etapa se da en cada letra: A

B

C

D

E

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Desarrollo completo de un blastocisto en el útero

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Neurulación

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Cuadro resumen de acontecimiento después de la fecundación y algunos parámetros zootécnicos Especie

Después de la fecundación Fase de 8 Dentro Blastocisto células del útero

Comienzo de la edad reproductiva

Parámetros importantes para Zootecnia Duración Duración Duración Momento de del ciclo del celo de la la ovulación sexual gestación

Vaca Oveja Cabra Cerda Yegua Perra Gata Cuy Coneja

V.

RESULTADOS: ___________________________________________________________________ ___________________________________________________________________ ___________________________________________________________________ ___________________________________________________________________

VI.

CUESTIONARIO

6.1. ¿Qué es segmentación holoblastica y meroblastica? 6.2. ¿Grafique como se realiza la segmentación en aves? 6.3. Investigue usted que otros tipos de segmentación existen 6.4. ¿A que da origen la hoja germinativa ectodérmica? 6.5. ¿A que da origen la hoja germinativa mesodérmica? 6.6. ¿A que da origen la hoja germinativa endodermica?

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PRACTICA N° 07 DESCRIPCIÓN DE LA PLACENTA POR ESPECIES I. INTRODUCCIÓN El desarrollo de huevos aleciticos (son aquellos huevos o cigotos que carecen de vitelo) de los mamíferos vivíparos, como carecen de sustancias que lo sustente, ha de realizarse en el útero, en el interior del cuerpo materno. Se hace necesaria una vinculación entre ambos a través de la cual se realice la nutrición, el intercambio gaseoso y la eliminación de los productos metabólicos. El órgano mediante el cual los mamíferos euterios establecen la conexión entre la madre y el feto es la placenta. Es el resultado de una unión más o menos intima entre el corión y la mucosa uterina cuyo objetivo prioritario consiste en acercar las circulaciones materna y fetal, a la vez que constituye una barrera que impide que se mezcle las sangres. A la placenta llegan las secreciones y los producto de la desintegración de la mucosa uterina (histotrofo) y a través de ella llega a la sangre fetal los principios nutritivos y el oxigeno procedentes de la madre, así como los desechos metabólicos en sentido contrario. En la placenta podemos distinguir fundamentalmente dos partes: -

Placenta fetal: formado por el corión provisto de vellosidades Placenta materna: constituida por la mucosa uterina modificada.

Es de suma importancia que los estudiantes de Medicina Veterinaria y Zootecnia este familiarizados y que conozcan los diferentes tipos de placentas por especies para que cuando estén en un centro de producción y se presente muchos abortos puedan hacer el diagnostico correcto. II. OBJETIVOS -

Describir, clasificar y exponer desde el punto de vista macroscópico los diferentes tipos de placenta desde el punto de vista anatómico Describir, clasificar y exponer desde el punto de vista microscópico los diferentes tipos de placenta.

III. MATERIALES - Placenta con sus fetos de las diferentes especies asignadas por el docente del curso. - Bandejas - Equipo de disección - Guantes - Vasos de precipitado para realizar mediciones - Cámara fotográfica - Bolsas negras para desechar los restos - Jeringas con sus agujas - Reglas para medir - Libros sobre el tema

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IV. PROCEDIMIENTO Primero: Los alumnos tienen que formar grupos de trabajo Segundo: Con una semana de anticipación se informará para que puedan traer un feto con su placenta de las diferentes especies (yegua, cerda, vaca, oveja, cabra, cuy y perro), las cuales serán sorteadas por grupos. Tercero: El día de la práctica tendrán medio hora para coordinar algunos detalles de la exposición, luego de esto se procederá realizar la exposición por grupos. Los demás grupos prestarán atención, y concluida la exposición procederán a hacer preguntas y/o aportes. Cuarto: El docente calificará el desenvolvimiento de los alumnos, su trabajo en equipo, y la calidad de respuesta que den a sus compañeros y docente. Quinto: Se concluirá con la práctica realizando una limpieza y desinfección del laboratorio con su posterior desechado de los restos de placentas que no se usarán. V. RESULTADOS Identifican los diferentes tipos de placentas, según especie. VI. CUESTIONARIO 6.1. Si las aves no tienen placenta explique usted. ¿Cómo es el desarrollo del embrión, feto de la gallina? 6.2. ¿Cuáles son las funciones de la placenta? 6.3. ¿Cuál es la placenta perfecta y porque?

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PRACTICA N° 08 VIDEO SOBRE DESARROLLO EN EL VIENTRE MATERNO I. INTRODUCCIÓN En el video se podrá observar el desarrollo de tres especies diferentes, primero la gestación del elefante, gestación del perro y gestación del delfín. La gestación del elefante se realizará en un lapso de 22 meses (dos años aproximadamente). Durante el periodo de celo este paquidermo emiten un sonido que da entender al macho que entró en el periodo de celo y que esta lista para el empadre. Durante esta etapa de copula los machos luchan por prevalecer con otros machos, solo el más dominante es el que cruzará a la hembra. En la copula el elefante nunca llega a penetrar con el pene en la vagina de la hembra, solo llega a eyacular el semen en la parte externa de la vagina, de donde entraran los espermatozoides para poderla fertizar, al ovulo y seguir su proceso de desarrollo. El celo de la perra por lo general es dos veces al año, el perro macho tiene la capacidad de distinguir y captar las feromonas que la perra emite 10 km a la redonda, de tal forma que los perros machos llegan a buscar a la perra para poder cubrirla. El perro tiene a nivel del pene un hueso que le permite introducir en la vagina en forma recta y quedan unidos por unos 5 minutos, con la hembra, periodo durante el cual se realiza la eyaculación y la posterior de fertización de los diferente ovocitos que fueron producidos en el ovario. En el video se explica en detalle todos estos acontecimientos que ocurren en la perra y se detalla algunas peculiaridades en la especie. El desarrollo en el delfín tiene ciertas peculiaridades en comparación de otras especies, y que durante el video notara el estudiante, sobre el desarrollo en el vientre materno en estas tres especies diferentes. II. OBJETIVOS -

Conocer el desarrollo en el vientre materno del perro. Conocer el desarrollo en el vientre materno del elefante. Conocer el desarrollo en el vientre materno del delfín . III. MATERIALES - Proyector multimedia - Computadora - Cuaderno a apuntes - Guía de practica IV. PROCEDIMIENTO Primero: Se procederá a dar una introducción sobre el video: “Desarrollo en el vientre materno”

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Segundo: Se animará a los estudiantes a que puedan tomar notas de las partes más importantes. Tercero: Se les indicará que tienen que responder a las preguntas de la práctica realizada V. RESULTADOS Ven el video sobre el “Desarrollo en el vientre materno” VI. CUESTIONARIO 1. 2. 3. 4. 5. 6. 7.

¿Cuál es el tiempo de gestación del delfín, elefante y perro? ¿Por qué se produce el pseudoembarazo? ¿Qué peculiaridad tiene la respiración de delfín? ¿Cómo capta el sonido el delfín? ¿Cuál es la composición en grasa y proteína la leche del delfín? En la perra la gastrulación ¿En qué periodo de la gestación ocurre? ¿El Médico Veterinario Tomas Hildebran, que aporte hizo a la embriología animal? 8. ¿El delfín gracias a que mantienen el calor? 9. ¿El testículo del feto del elefante cuánto pesa? 10. El elefante recién nacido ¿Con cuántos kilos nacen? 11. ¿Después de cuánto tiempo camina el feto? 12. ¿Cuánto pesa el elefante adulto?

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PRACTICA N° 09 NECROPSIA DEL FETO. I. INTRODUCCIÓN Es importante mencionar que la necropsia se efectúa constantemente en el campo por lo que es una herramienta fundamental para el Médico Veterinario y Zootecnista, ya que a partir de ésta, se puede inferir un diagnóstico y así determinar medidas profilácticas. Hay que recordar que en la necropsia el Médico Veterinario, selecciona cuales muestras van a los diferentes laboratorios y obviamente al diagnóstico histopatológico, por lo que si son tomadas correctamente ayudarán a emitir un buen diagnóstico que confirme los hallazgos que fueron observados clínicamente. Se realizará la observación del tubo intestinal. Este último se divide en 3 porciones: anterior, medio y posterior. El intestino medio comunica con el saco vitelino temporalmente por medio del conducto onfalomensentérico. Intestino anterior: Se extiende desde la membrana bucofaringea hasta la 2° porción del duodeno. Esófago: Su pared nace del esbozo traqueopulmonar, aproximadamente a la 4° semana. El endodermo lo reviste hasta ocluir la luz. Al final del periodo embrionario, la luz se abre y se diferencia el endodermo en epitelio plano estratificado. La muscular del 1/3 superior es estirada y deriva de los 4°y 5° arcos faríngeos; los 2/3 distales es liso y deriva del mesodermo esplácnico. Estomago: Crece como una dilatación cuyo borde dorsal crece más rápido que el ventral. Luego gira 90°, quedando el borde dorsal hacia fuera y el ventral hacia dentro. Esta unido al mesenterio dorsal a la pared posterior del abdomen. Cuando rota hacia la derecha, arrastra el mesenterio hacia la izquierda, formando la trascavidad de los epiplones. En su pared anterior presenta el mesenterio anterior, que al formarse el hígado, constituye el ligamento gastrohepático. Duodeno: Se desarrolla a partir de la porción caudal del intestino anterior y la porción cefálica del intestino medio. A este nivel desemboca el colédoco. La luz del duodeno se cierra por proliferación del endodermo para formar el epitelio, que después se abre. El mesenterio anterior y posterior forma el ligamento de Treiz. Hígado y vías biliares: Aparece en la 3° semana como un brote endodérmico en la parte más caudal del intestino anterior en el mesenterio ventral. Se divide en 2 porciones: una cefálica grande que dará origen al parénquima, a las vías biliares intrahepáticas y los conductos hepáticos. La porción caudal que es más pequeña, dará origen a la vesícula biliar y al conducto cístico. El mesenterio ventral dará origen al epiplón gastrohepático, al peritoneo viseral del hígado y al ligamento falciforme o suspensorio del hígado. Páncreas: Se desarrolla a partir de la 5° semana, en la parte caudal del intestino anterior, a partir de brotes endodérmicos dorsal y ventral. El borde ventral forma el proceso unciforme y la cabeza pancreática. Gira hacia atrás y se fusiona con el brote dorsal que formara la parte restante de la glándula. Los cordones se diferencian en acinos. Intestino medio: Se extiende desde el colédoco hasta el 1/3 proximal del colon. Su crecimiento es longitudinal y lo hace fuera de la cavidad abdominal entre la 6° y 9° semana. El intestino medio se ubica en el plano sagital y su vértice se encuentra en el

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conducto onfalomesentérico o vitelino. El intestino medio gira 90° formando el asa vitelina. En el segmento postvitelino aparece la dilatación del ciego. A medida que se cierra la hernia fisiológica, el intestino vuelve a la cavidad abdominal. Se produce un giro de 180° y el ciego queda a la derecha. El segmento previtelino forma las asas intestinales y el postvitelino constituye la parte terminal del íleon y una parte del colon. El colon es un vestigio del desarrollo del ciego. Intestino posterior: Se extiende desde el 1/3 distal del colon transverso hasta la membrana cloacal. En la 6° semana, la porción caudal esta comunicada con la alantoides por su pared ventral y por los conductos de Wolff a los lados. La cloaca se dilata en sentido cefalocaudal, por la formación del tabique urorrectal, que crece en sentido caudal produciendo pliegues en la membrana cloacal, que termina dividiéndose en el recto y conducto anal superior hacia el dorso; y el seno urogenital ventralmente. La membrana cloacal está formada por el endodermo cloacal y el ectodermo superficial. La membrana anal desaparece al final de la 7° semana. II. OBJETIVOS -

Capacitar al alumno para realizar una necropsia en forma sistemática de un feto Realizar la inspección de manera adecuada de los diferentes aparatos, órganos y tejidos de un cadáver. Tomar muestras para preparar laminas embriológicas. Descripción de las estructuras macroscópicas del aparato digestivo del feto

III. MATERIALES -

Un feto obtenido por los alumnos de la especie que el docente le asigne. Bandejas Equipo de disección Vasos de precipitado para realizar mediciones Reglas para medir Cámara fotográfica Bolsas negras para desechar los restos Libros sobre el tema Guantes desechables y mascarillas Hisopos (de cuajar), Jeringa y tubos (toma de muestras de líquido fetal), Formaldehído al 15 % (fijador de las muestras para histología), Etiquetas identificativas Lejía para la desinfección de las superficies y del material con el que se ha trabajado. Cinta lineal para medir Balanza o romana para pesar

IV. PROCEDIMIENTO Primero: Se procederá a observar sus características externas del feto y proceder a medirlo y pesarlo y anotarlo en una ficha de necropsia.

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Feto siendo medido con una cinta

Para determinar la edad a partir de la longitud del embrión han sido propuestos distintas fórmulas. La más empleada de todas es la de Keller:

X (X + 2) = cm Donde: X = Número de meses trascurridos de desarrollo. Se emplea, sobre todo, para los mamíferos domésticos grandes (a partir de 2° mes) También existe otra tabla para determinar la edad en las diferentes especies: Tabla 01: Comparación del desarrollo y la edad de los embriones y fetos (Según Zietzschmann-Krolling) Edad 18 días 2-3 semanas 4 semanas 6 semanas 7 semanas 8 semanas 9 semanas 10 semanas 12 semanas 15 semanas 17 semanas 20 semanas 24 semanas 28 semanas 34 semanas 40 semanas

Caballo Cm 0.174

G. Vacuno cm

Oveja Cm 0.6

Cerdo cm 1.0-1.1

Perro cm 0.4

0.325 1.0 4 5 6.5-7.5 8 9 12 16.5-18.0 22 33.0-37.0 48

0.5-0.6 0.8-1.0 2.7 3.86 6.5-7.0 7.8 9.6-11.0 15 19.5-20.5 24 36 48 60 70 80

1.0 1.5 2.2 3 5 9 13 16 27 38 50

1.5 1.8-2.0 4.4-4.7 7.4 9.0-10.0 13.0-14.0 15 17 18 23.3

0.7-1 1.0-3.0 4.4-4.7 12.0-13.0 16.0-21.0

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48 semanas 100 Fuente: Schwarze,1980.

Segundo: Se procede a la apertura del feto por la línea alba, donde se procederá a hacer la observación de los órganos internos. Haciendo la necropsia propiamente dicha

Tercero: Se procederá a identificar los órganos y luego de esto se procederá a la toma de las muestras tal como indica la siguiente foto. Tomando muestra del hígado del feto

Cuarto: Se procederá a colocar las muestras en los frascos con sus etiquetas de identificación en un papel pequeños dentro de una gasa. V. RESULTADOS VI. CUESTIONARIO 1. ¿Que otros métodos de elaboración de necropsia puede mencionar? 2. ¿ Se puede obtener células madres embrionarias de la placenta? (Explique) 3. ¿Haga un cuadro resumen sobre enfermedades pueden provocar aborto en vacunos, ovinos, porcinos, cuyes, alpacas, que se observará en el feto y como se puede hacer una diagnostico? PRACTICA N° 10

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OBSERVACIÓN MICROSCÓPICA DE TEJIDOS FETALES I.

INTRODUCCIÓN

Es la reunión de células que presentan la misma morfología general, que cumplen las mismas funciones complementarias y que tienen el mismo origen embrionario. COMPONENTES - Células: Son los componentes vivos del tejido - Sustancia intercelular: Es la sustancia que rodea a las células. Constituida por materiales inertes morfológicos: la porción amorfa y la porción forme. - Líquido tisular: Fluido que lubrica y nutre a las células de los tejidos METODOS DE ESTUDIO EN HISTOLOGÍA Los métodos más generales para el estudio de tejidos son la preparación permanente del tejido para su posterior observación a través del microscopio. -

Preparación permanente: Es llevar a una lámina (portaobjetos) determinado tejido(s), de modo que estos traten de presentar la misma estructura y composición química que poseían cuando estaban vivos. Observación microscópica: Es la observación de los tejidos a través de un instrumento que amplifica la estructura histológica, llamado microscopio. Existen varios tipos de microscopio, los que pueden ser usado según el objetivo histológico que se tenga.

ORIGEN EMBRIONARIO Cuando el embrión se encuentra en la etapa de gástrula embrionaria consta de tres capas y cada una de estas da origen a las diversas variedades de tejido. - Ectodermo: Tejido epitelial de la piel, tejido nervioso (excepto microglias), músculos del iris. - Mesodermo: Tejido conectivos, tejido muscular (excepto músculos del iris y lengua), microglias. - Endodermo: Tejido epitelial de los órganos internos, músculos de la lengua. II. OBJETIVOS -

Observar y describir los tejidos fetales a través del microscopio e identificar sus partes de las láminas disponibles en el laboratorio de embriología veterinaria.

III. MATERIALES -

Laminas histológicas fetales Microscopio binocular Guía de práctica de Embriología Veterinaria Colores y lápiz Cámara fotográfica

IV. PROCEDIMIENTO

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Primero: Se hace la entrega de un microscopio al grupo de trabajo con sus respectivas láminas para observar. Segundo: Se hace una descripción de cada lámina y los estudiantes realizan la observación de las láminas disponibles. Tercero: Realizan el dibujo de lo observado con el microscopio identificando las diferentes partes de tejido en observación. V. RESULTADOS FICHA DE PRÁCTICA DE OBSERVACION DE UNA LAMINA EMBRIOLOGICA ORGANO : __________________________________________________ COLORACIÓN: __________________________________________________ TEJIDO : __________________________________________________

10 X _______________________________ _______________________________ _______________________________ _______________________________ _______________________________ _______________________________ _______________________________ _______________________________ _______________________________ _______________________________ _______________________________ _______________________________

VI. CUESTIONARIO 1. Que son los factores de diferenciación que ocurren en los tejidos fetales y haga una relación de ellas y sus función de diferenciación que provocarán.

PRACTICA N° 11

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OBSERVACION Y DESCRIPCION LAS ESTRUCTURAS MACROSCÓPICAS DE UN FETO: SISTEMA CIRCULATORIO. I. INTRODUCCIÓN El aparato circulatorio está constituido por una bomba doble que alimenta a dos circuitos vasculares: el circuito mayor o sistémico, que tiene función nutricia sobre los diferentes tejidos del organismo; y el circuito menor o pulmonar, que participa en el intercambio gaseoso o hematosis. El sistema vascular del embrión humano aparece hacia la mitad de la tercera semana, cuando el embrión ya no es capaz de satisfacer sus requerimientos nutritivos exclusivamente por difusión. Las células cardíacas progenitoras se encuentran en el epiblasto, ubicada inmediatamente lateral a la línea primitiva. Desde allí, migran a través de la línea primitiva. En primer lugar, migran las células destinadas a formar los segmentos craneales del corazón y el tracto de salida, y las células que forman las porciones más caudales, el ventrículo derecho, el ventrículo izquierdo, y el seno venoso, respectivamente, migran en orden secuencia. Las células avanzan hacia el cráneo y se disponen rostralmente a la membrana bucofaríngea y a los pliegues neurales. Aquí se ubican en la hoja esplácnica de la lámina lateral del mesodermo. En este momento, un estado de desarrollo presomita tardío, el endodermo faríngeo subyacente las induce para formar mioblastos cardíacos. Las células endocárdicas (angioblastos), también aparecen en el mesoderrno, donde proliferan y coalescen para formar acúmulos celulares aislados denominados angioquistes. Con el tiempo los acúmulos se unen y constituyen un tubo revestido de endotelio rodeado por mioblastos con forma de herradura. Esta región se conoce como el campo cardiogénico; la cavidad intraembrionaria situada por encima de esa región formará después la cavidad pericárdica. II. OBJETIVOS -

Realizar necropsia de los fetos con el fin de describir las diferencias entre la circulación de un animal ya desarrollado y el fetal. Hacer una descripción sobre los cambios que ocurren en el momento del nacimiento del animal.

III. MATERIALES -

Un feto de vacuno de 30 a más centímetros de longitud. Bandejas Equipo de disección Vasos de precipitado Reglas para medir Cámara fotográfica Bolsas negras para desechar los restos Libros sobre el tema Guantes desechables y mascarillas

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-

Formaldehído al 15 % (fijador de las muestras para histología), Etiquetas identificativas Lejía para la desinfección de las superficies y del material con el que se ha trabajado.

IV. PROCEDIMIENTO Primero: Se hace una introducción al tema y se describe las peculiaridades de la circulación fetal. Se procede a realizar una descripción general del feto (Especie, edad aproximada, sexo, etc), Segundo: Se procede a realizar la necropsia del feto, utilizando el método mencionado anteriormente Tercero: En el feto se identifica las peculiaridades en el sistema circulatorio fetal. V. PROCEDIMIENTO VI. CUESTIONARIO 1. Hacer un esquema de la sistema circulatorio mayor y menor de un animal ya desarrollado y uno fetal y marcar la diferencia 2. Haga una descripción de 07 malformaciones del aparato circulatorio más comunes que se presenten en animales.

PRACTICA N° 12

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ESTADIOS DEL DESARROLLO EMBRIONARIO Y FETAL DE UN POLLO I. INTRODUCCIÓN La reproducción es uno de los milagros de la vida que va ligado a la evolución de las especies, debido al continuo desplazamiento de los antecesores con nueva vida, la cual da a los animales una razón para responder y adecuarse a las modificaciones del ambiente (Hickman et al., 2001). Todos los animales que nacen de un huevo fecundado, atraviesan por varias fases de desarrollo embrionario, que difieren según la especie, aunque el orden cronológico es el mismo: primero la fase de partición (división del zigoto en dos células, cuatro células, ocho células, etc.), fase de la mórula, seguida de la fase de blástula, continuando con el movimiento de las capas celulares hasta formar las capas germinales, a la cual se denomina gástrula y por último la neurulación (Alfonso, 1968). El desarrollo embrionario de las aves comienza en el oviducto, posterior a la fecundación, donde se originan las primeras segmentaciones celulares en el momento de la formación del huevo (Sauveur, 1992). Durante su desarrollo fuera del útero de la madre, el embrión se alimenta del material nutritivo almacenado dentro del huevo, a diferencia de los mamíferos que se alimentan por aporte sanguíneo proveniente de la madre (North, 1986). Realizándose la mayor parte del desarrollo embrionario del huevo fuera del útero y cubierto por una cascara porosa de carbonato de calcio (Mehner, 1969), dentro de la cascara del huevo, se empieza a desarrollar tres membranas (los anexos embrionarios) (Sauveur, 1992; Interiano y Urla, 2010). De la mayoría de las aves, el pollo ha sido un eficiente modelo biológico para los estudios en el campo de la embriología (Mehner, 1969; Sequera et al., 2003). II. OBJETIVOS -

Conocer la embriología del pollo durante los principales estadios del embrión posterior a la fecundación.

III. MATERIALES -

Gallina para realizar la incubación. Doce huevos fecundados en diferentes etapas de desarrollo embrionario y fetal. Placas petri. Cámara fotográfica. Regla para medir Cuaderno de apuntes.

IV. PROCEDIMIENTO El procedimiento es el siguiente: Primero: Por grupos tendrán una gallina y un gallo, y 12 huevos fecundados y luego tiene que ser empollados por un lapso de 21 días, para lo cual se tiene que elaborar un gallinero de 5 x 3m con una caja de 60 x 40cm y con una altura de 40cm, se le

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introducirá pasto seco (cama) a manera de llenar las ¾ partes del nido, en esta se depositaron 12 huevos. Segundo: Luego se procederá a realizar el retiro de los huevos a las horas indicadas de acuerdo a la tabla 2. Para su observación y descripción. Tabla 1. Periodo de segmentación de los huevos postfecundación. Huevos 1

Nomenclatura (Nomclta) P1

2 3

P2 P3

Periodo de segmentación Residen fecundado (0 hrs) 4-5 hrs. 18-25 hrs.

Tabla 2. Periodo de desarrollo embrionario durante la incubación. Huevos 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15

Nomenclatura (Nomclta) H1 H2 H3 H4 H5 H6 H7 H8 H9 H10 H11 H12

Periodo de incubación 12 hrs 24 hrs 48 hrs 3 días 4 días 5 días 7 días 8 días 10 días 13 días 17 días 20 días

Tercero: Se abrieran 12 huevos fertilizados durante diferentes periodos de incubación (tabla 2), para observar el desarrollo embrionario del pollo, haciendo énfasis en la organogénesis. Al romper el cascaron, el embrión de los huevos del H1-H6 serán depositados en una placa petri, por otra parte los embriones de los huevos H7-H12 se vaciaron en un recipiente hondo y transparente con agua; ambos para observar y tomarle fotos al desarrollo externo, también se medirá la longitud del embrión con una regla graduada de 30 cm. Únicamente a los embriones de los huevos H7-H12 se trasladaran a una charola de disección, con la ayuda de un estuche de disección y guantes se separaran los anexos embrionarios del embrión. Se hará un corte en la zona ventral del embrión y se extrajeran todos los órganos visibles, los cuales se observarán con un microscopio estereoscópico. Los huevos P1-P3 serán extraídos de la segunda gallina antes del ciclo de postura. Cuarto: Con la ayuda de las fotos tomadas por cada embrión, se identificaron las estructuras formadas y estadios embrionarios en las que se encontraban los embriones. V. RESULTADOS

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VI. CUESTIONARIO 6.1. Haga una explicación de por qué existe y es funcional el oviducto izquierdo y no el derecho en aves (basados en artículos científicos). 6.2. Investigue que factores contribuyen al desarrollo de embrión y feto de las aves (basados en artículos científicos). 6.3. Diga usted quien es el responsable del sexo en las aves en comparación de los reptiles (basados en artículos científicos). 6.4. Haga en forma grafica la fisiología de la postura de huevos de las aves (basados en artículos científicos).

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PRACTICA N° 13 EXPOSICIONES DE MALFORMACIONES CONGÉNITAS I. INTRODUCCIÓN La teratología es la rama científica que estudia las causas, mecanismos y patrones del desarrollo patológico. Las causas de las anomalías congénitas se desconocen en un 50% al 60% de las anomalías congénitas. Las anomalías pueden ser únicas o múltiples y de mayor o menor importancia clínica. Las causas de la anomalía congénitas son (Moore, 2007): - Factores genéticos, como las anomalías cromosómicas. - Factores ambientales, como fármacos y virus. - Herencia multifactorial, es una acción conjunta de los factores genéticos y ambientales. II. OBJETIVOS -

Conocer algunas malformaciones congénitas y determinar las causas embriológicas de su presentación

III. MATERIALES -

Proyector multimedia Computadora Libros sobre el tema Elaboración de una monografía

IV. PROCEDIMIENTO Consistirá en preparar una monografía y una exposición sobre la malformación congénita asignada a cada grupo de prácticas. Dentro de la monografía tendrá los siguientes ítems: - Nombre de la malformación congénita. - Agente etiológico: Es decir es la causa de la malformación congénita y explicar desde el punto de vista embriológico la presentación de la malformación congénita. - Síntomas: Se denomina así cualquier signo provocado por una enfermedad, de la que constituye una manifestación que la pone en evidencia. - Diagnostico: Es reconocimiento de la enfermedad de acuerdo a los signos y los síntomas del paciente en estudio. Ejm. Análisis cromosómico, ecografía, observación directa, etc - Tratamiento: Es la forma como se le puede dar solución al problema que se presenta sea mediante cirugía, hormonal, y otro tratamiento. - Prevención: Es lo que se debe realizar para poder evitar las anomalías congénitas en el neonato. Ejm. Cataratas causados por agentes ambientales (virus de la rubeola. Se encontraron anomalías graves de las extremidades por consumo de Talidomida V. RESULTADO

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REVISION BIBLIOGRAFICA 1. 2. 3. 4. 5. 6.

7. 8.

9.

ALINE S. DE ALUJA. 1990. Necropsia en animales domésticos. 3ra Edición. Editorial Continental S.A. de C.V. México. Pag.73 DI FIORI MARIANO. 1999. Atlas de Histología Normal. 7ma Edición. Editorial El Ateneo. Buenos Aires. Argentina. JUNQUEIRA LUIS Y CARNEIRO JOSÉ. 2006. Histología Básica. 7ma Edición. Editorial Guanabara Koogan S.A. Rio de Janeiro. Brasil. GARCIA ANA. 2003. Necropsia y toma de muestras de abortos ovinos. Instituto Vasco de Investigación y Desarrollo Agrario (NEIKER). Pag.1-7 QUISPE U., GOMEZ E., y ZEA D. 2008. Guía de práctica de reproducción animal. Universidad Nacional Micaela Bastidas de Apurimac. Abancay. Perú. MALAGRINO D. Enfermedades congénitas. Selecciones Veterinarias. [Seriada en línea] 2011;01. Disponible en: http://www.seleccionesveterinarias.com/1/noticias/genetica/enfermedadescongenitas Consultado Mayo 19, 2013. MOORE K.L. Y PERSAUD T.V.N. Embriología clínica el desarrollo del ser humano. 7ma Edición. Editorial ELSERVIER. Madrid. España. Pag. 157 SADLER T.W.2001. Embriología Médica con orientación clínica. Lagman. 8va edición. Editorial médica panamericana. Universidad de Buenos Aires Argentina. Pag.398 TABACHI L, CHAVERA A, SANTILLÀN G, PERALES R. Y SANDOVAL N. 2006. Texto de Guía Histología y Embriología Animal. Laboratorio de Histología, Embriología y Patología Veterinaria. Facultad de Medina Veterinaria de la Universidad Nacional Mayor de San Marcos. Lima.

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