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• Timothy Chijip Mashigkash

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UNIVERSIDAD NACIONAL INTERCULTURAL DE LA AMAZONIA FACULTAD DE INGENIERIA Y CIENCIAS AMBIENTALES CARRERA PROFESIONAL DE INGENIERIA AGROINDUSTRIAL

EXTRACCION DE ANTOCIANINAS EN LAS FRUTAS ‘‘BETARRAGA’’

APELLIDOS Y NOMBRES

: Chijip Mashigkash, TIMOTEO

CURSO

: Química analítica

PROFESOR

: Dr. Juan García Ruiz

CICLO

: IV

FECHA DE PRACTICA

: 6 de marzo de 2019

FECHA DE ENTEGA

: 11de marzo de 2019

I.

INTRODUCCION.

En la actualidad existe una demanda considerable de colorantes naturales alternativos a los colorantes sintéticos, como el rojo. Debido a su toxicidad en alimentos, cosméticos y productos farmacéuticos. Las antocianinas son pigmentos vegetales con gran potencial para el reemplazo competitivo de colorantes sintéticos; por tanto es de gran importancia conocer los aspectos bioquímicos que enmarcan estos pigmentos. El objetivo de esta revisión es ofrecer un esquema actualizado de las propiedades químicas y bioactivas de las antocianinas y de su potencial como colorantes de origen natural. Las antocianinas son pigmentos responsables de la gama de colores que abarcan desde el rojo hasta el azul de muchas frutas, vegetales y cereales. El interés en estos pigmentos se ha intensificado gracias a sus posibles efectos terapéuticos y benéficos, dentro de los cuales se encuentran la reducción de la enfermedad coronaria, los efectos anticancerígenos, antitumorales, antiinflamatoria y antidiabética; además del mejoramiento de la agudeza visual y del comportamiento cognitivo. Las propiedades bioactivas de las antocianinas abren una nueva perspectiva para la obtención de productos coloreados con valor agregado para el consumo humano. En la actualidad existe una creciente demanda en el uso de colorantes de origen natural, en remplazo de los colorantes artificiales, utilizados en la industria procesadora de alimentos; productos como el maíz morado, camote, manzana, fresa, cebolla, entre otros contienen el colorante antocianina, que puede ser extraído utilizando métodos de extracción adecuados; esta realidad ha generado el interés por investigar sobre los colorantes naturales y los métodos de extracción a utilizar, así como su aplicación en la industria de alimentos. Las betalaínas dan coloración a diferentes órganos, como flores, frutos, hojas, raíces, donde producen colores rojo, amarillo, naranja, rosa entre otros. Químicamente son moléculas derivadas del ácido betalámico, solubles en agua y son de dos tipos betaxantinas que son de coloración que va de amarillo a naranja y las betacianinas que son de coloración rojiza.

II.

OBJETIVOS  Extraer las antocianinas en las frutas para modelo cromatografía, papel- descendente.

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III.

MARCO TEORICO 3.1.

LA BATARRAGA:

Nombre científico: Beta vulgaris L. var. Crassa (Alef.) J. Helm. Nombres vulgares en español: betarraga, betabel, remolacha de mesa, remolacha roja. Nombres vulgares en otros idiomas: garden beet, table beet, beetroot (inglés), Roterübe (alemán), betterave potagère (francés), bietola da orto (italiano). La remolacha (Beta vulgaris), también conocida como acelga blanca, betarava, betarraga, beterava, beterraga, y betabel, es una planta de la familia de las Amarantáceas, de la cual las hojas y la raíz son comestibles. Existen numerosas variedades de la especie, de las cuales algunas se emplean para la alimentación humana, otras como pienso para ganado, y otras para la producción de azúcar (la remolacha azucarera, Beta vulgaris var. altissima); otras, entre ellas la Beta vulgaris var. Cicla, se cultivan por sus hojas. La variedad de mesa es de raíces gruesas, rojas y carnosas, que se consumen cocidas; el color se debe a dos pigmentos, la betacianina y la betaxantina, que resultan indigeribles, tiñen el bolo alimenticio y los excrementos de ese color. Sin embargo, por su atoxicidad se usa frecuentemente como colorante en productos alimentarios. Contienen importantes cantidades de vitamina C en las raíces. El uso más común de cualquier vegetal comestible es el uso comestible, pero también es usado para otras cosas relacionadas con la alimentación, tales como: Azúcar: de una variedad de remolacha se extrae, después de varios procesos, el azúcar, listo para ser usado. Colorante: de la remolacha se saca también el colorante E162, rojo remolacha.

 El cultivo de betarraga: es interesante de realizar en nuestro hogar, ya que esta planta posee varios usos culinarios. Necesita de un suelo muy fértil para que tenga crecimiento en óptimas condiciones. Los suelos donde se cultiva la betarraga deben poseer abundante cantidad de potasio.  Características botánicas: En la casi totalidad de los casos, el órgano de consumo de la betarraga corresponde a la raíz principal y parte del tallo (hipocotilo) engrosados, los que cumplen una función de reserva de nutrientes para la planta, principalmente azúcares. Este órgano se forma por la ocurrencia de un crecimiento secundario anómalo que experimentan los tejidos nombrados, resultando en la formación de varios

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anillos de tejido cambial, hacia afuera del cambium original, cada uno de los cuales origina xilema y floema, junto con parénquima de reserva. Al hacer un corte transversal se observa la serie de anillos concéntricos, que puede alternar color rojo con zonas de color rosa pálido; si el contraste de color es muy notorio, se manifiesta lo que se conoce como zonificación de la betarraga, característica no deseada para su consumo. Las raíces pueden ser de variados colores, formas y tamaños, pero las más comunes son las raíces redondas o achatadas, de color púrpura y peso fluctuante entre 100 y 300 g.  Composición nutritiva de 100g de parte comestible de betarraga. COMPONENTES

Betarraga cosida contenido unidad 91.00% 7.00 g 1.00 g Trazas 11.00 mg 31.00 mg 0.60 mg 312.00 mg 49.00 mg 10.00 UI 0.03 mg 0.01 mg 0.30 mg 60.00 mg 30.00 kcal

Agua Carbohidratos Proteínas Lípidos Calcio Fosforo Fierro Potasio Sodio Vitamina A (valor) Tianina Riboflavina Naicina Ácido ascórbico Valor energético

Betarraga (2n = 18 cromosomas) presenta un ciclo de vida bienal. El sistema radical consiste básicamente de una raíz primaria pivotante, fuertemente engrosada por un crecimiento anómalo (ver órgano de consumo), de arraigamiento profundo, y numerosas raíces secundarias finas que se ubican en los primeros 50 a 60 cm del suelo; se conforma así un sistema radical que ha sido calificado como muy eficiente y que provee una cierta tolerancia a condiciones de sequía.

IV.

MATERIALES Y METODOS 4.1. MATERIALES: A. Material biológico.  Betarraga B. Materiales de laboratorio:

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 Material de vidrio.  Varilla de vidrio  Probeta graduada  Vaso de precipitado  Material químico.  Reactivos  Ácido acético  Solvente.  Alcohol  Agua destilada  Equipos  Balanza analítica  Instrumento.  Soporte universal.  Espátula C. Otros materiales:  Botella plástico  Cinta de embalaje  Silicona  Cuchillo  Fosforo  Papel filtro  Mortero con mazo 4.2. METODOS: A. RECOLECCION DE LLA MUESTRA: La fruta de betarraga fue comprada en el mercado. B. PREPARACION DEL SOLVENTE:  Primera preparación. Se preparó 300 ml de concentración solvente al 30% introduciendo 180ml de alcohol, 105ml de ácido acético, 15ml de agua. Alcohol Ácido acético Agua

6.0 x 30 = 180 3.5 x 30 = 105 0.5 x 30 = 15

300ml HP UNIA – 2019 [email protected]

 Segunda preparación. Alcohol Ácido acético Agua destilada

7.5ml 90ml 52.5ml 150ml

C. PREPARACION DE LA MUESTRA:  flujo para preparación de la muestra. Beterrag a

RECEPCION

PESADO Triturar bien hasta que forme la pulpa.

10g de materia P.

TRITURAR

AÑADIR

5 ml de alcohol

PESAR V.

REALIZACION DEL EXPERIMENTO  Para la preparación de extracto alcohólico de beterraga se utilizó el fruto de beterraga (beta vulgaris), las muestras fueron lavadas con agua destilada y secadas posteriormente. Se cortaron con cuchillos de acero inoxidables en trozos de tamaño variable.  Luego, se procedió a la extracción del extracto alcohólico acuoso de la beterraga mediante un proceso de preparación de la muestra, con lo cual; como se muestra en el Flujograma de operaciones de la muestra, agregamos 5ml de alcohol con 10g de beterraga en pulpa. De manera que se forma la masa acuosa de la muestra el grado de concentración del pigmento se concentró rápidamente.  De esa manera obtenemos el extracto alcohólico de beterraga.  Se cortó el papel filtro (5 cm de ancho y 30 cm de largo).  Luego en el siguiente paso, solo la concentración del pigmento se le hace absorber por el papel filtro 4 o 6 veces (repetir las veces cada vez que se seque) de forma horizontal de la anchura del papel, HP UNIA – 2019 [email protected]

por ultimo poner a 2cm desde la abertura del envase cortado muy cuidadosamente.  El envase descartable se cortó desde el medio (7cm de largo luego se abrió a la mitad de la circunferencia), por último se introdujo la varilla de vidrio haciendo agujero desde la tapa del envase hacia el otro extremo, para evitar que la concentración escape por el agujero se introdujo silicona así mismo ajustando la varilla que se mueva en el proceso del experimento.  Nuestro cubo cromatografico se armó de la siguiente manera: 1. Botella plástico: de forma horizontal sujetado con soporte universal en ambos lados. 2. Papel filtro: de forma vertical de largo. 3. Primer solvente: 300ml. 4. Segundo solvente: 150ml.  Se introdujo 300ml solvente en el cubo cromatografico y se deja actuar sobre el papel filtro un cierto tiempo.  Esperar que el extracto alcohólico de beterraga baje de forma descendente.

VI.

OBSERVACIONES 

Se observa que el papel filtro absorbe al solvente y el extracto alcohólico de beterraga baja junto con la solvente de forma descendente. Con velocidad lenta.



Con la observación de nuestro ingeniero, nuestro practica es muy buena si cumple con los objetivos deseados, y nos recomienda preparar más 150ml de solvente(ver en la preparación de solvente), ya que faltaba llenar más en el cubo cromatografico, entonces con esa preparación nuestra practica salió mucho mejor



Después de agregar 150mg de solvente, pasando 5minutos se observó que se cambió de color rojizo a color amarillento débil.



Pasando 7min se observó tres colores 1. Primer color: rosado transparente. 2. Segundo color: color rojizo de beterraga.

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3. Tercer color: anaranjado. 

 

 VII.

Otras de las observaciones es: al bajar el extracto alcohólico de beterraga mientras va bajando pierde su color mientras deja su posición, el segundo que sigue es el color rojizo de beterraga y el tercero también cambio de color amarillento. Baja muy suavemente con rapidez muy lenta. Pasando 10 minutos cambio de color rosado oscuro a rosado claro y el color anaranjado de la punta cambio de color amarillo y se expande cundo baja más. De tal manera se termina la práctica, que nos duró 30 minutos.

RESULTADOS Durante la práctica realizada se obtuvo los siguientes resultados. RECORRIDO FINAL DE LA MUESTRA (R. F. M). R.F.M = 7cm largo ANCHURA INICIAL DE LA MUESTRA = 5cm ancho

COLORES:  Rosado oscuro  Amarillo  Palo rosa

VIII.

CONCLUCION Se concluye que nuestro experimento fue muy excelente. Si se cumplió con el objetivo planteado utilizando los procedimientos adecuados. Se notó que la silicona no resiste mucho tiempo a la solvente, con lo cual hace derretir.

IX.

BIBLIOGRAFIAS http://biotecnia.unison.mx/index.php/biotecnia/article/view/81/75. http://web.udlap.mx/tsia/files/2016/05/TSIA-9-Castaneda-Sanchez-et-al2015.pdf.

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