• Author / Uploaded
• ni2bth

• Categories
• Cilantro
• Plantas
• Alimentos
• Naturaleza

Citation preview

EVALUACIÓN DEL EFECTO DEL SUSTRATO SOBRE EL DESARROLLO DE LA HOJA DEL CILANTRÓN (Eryngium Foetidum L.) Y LA PRODUCCIÓN DE METABOLITOS SECUNDARIOS.

ANGEL YADIR AVILA MENDIVELSO

FUNDACIÓN UNIVERSITARIA INTERNACIONAL DEL TRÓPICO AMERICANO FACULTAD DE INGENIERÍA PROGRAMA INGENIERÍA AGROFORESTAL YOPAL 2014

EVALUACIÓN DEL EFECTO DEL SUSTRATO SOBRE EL DESARROLLO DE LA HOJA DEL CILANTRÓN (Eryngium Foetidum L.) Y LA PRODUCCIÓN DE METABOLITOS SECUNDARIOS.

ANGEL YADIR AVILA MENDIVELSO

Trabajo de grado para optar al título de ingeniero agroforestal Directora Lady Johana Correa Higuera. M. Sc. Química de alimentos

FUNDACIÓN UNIVERSITARIA INTERNACIONAL DEL TRÓPICO AMERICANO FACULTAD DE INGENIERÍA PROGRAMA INGENIERÍA AGROFORESTAL YOPAL 2014

NOTA DE ACEPTACIÓN

Revisado y aprobado por el Comité de Opción de Grado de la Facultad en cumplimiento como uno de los requisitos exigidos por la Fundación Universitaria Internacional del Trópico Americano – UNITROPICO; para conceder el título profesional de Ingeniero Agroforestal.

_________________________________ Ing. Luis Eduardo Montaña B. Presidente del jurado

________________________________ Ing. Kenier Iván Téllez Jurado

________________________________ Ing. Luis Fernando Moreno Jurado

_________________________________ M. Sc. Lady Johana Correa Higuera. Director

El Yopal, 26, Enero, 2015

DEDICATORIAS

A Dios y a la Virgen de Manare, por ser la luz en el camino de la vida, la fortaleza en mi corazón y el aliento de las almas. A mi familia por creer en que si era capaz de lograr lo que hoy soy, a mis padres, Nohora Cecilia Mendivelso y Ángel Onel Avila, por darme la bendición todos los días, por enseñarme que la vida es una lucha larga, de entusiasmo, amor, entrega y disciplina, por persistir en que todo lo que con esfuerzo se gana es lo único que me puede llevar a ser diferente y sobre todo, por enseñarme el verdadero sentido de la familia. A mis hermanos Martha Avila, Nataly Avila y Julio Avila, por ser amigos, personas confidentes que hacen más alegres los ratos en familia, que sin pensarlo, son apoyo eterno en mi vida y que me admiran por lo que soy. A el amor de mi vida Ninibeth Arias, por tener el corazón tan sincero, paciente y bello, donde nuestras almas se juntan con una armonía especial como el aire y las palmeras, para demostrarle al mundo, que el verdadero amor existe, sin importar lo que exista alrededor de nosotros.

AGRADECIMIENTOS.

A mi directora de Grado M.Sc Lady Johana Correa Higuera y mi compañero Miguel Moreno, por hacer parte de este proyecto de investigación, por ser apoyo y amigos incondicionales en los momentos difíciles y por vivir conmigo la pasión científica. A mi tía Betty y su familia, por brindarme apoyo incondicional, el calor de un hogar y un cariño sin límites; sin ustedes, toda esta aventura solitaria sería más difícil aun hoy siendo una realidad. Al coordinador del Programa de Ingeniería Agroforestal Luis Moreno y a su grupo de docentes, por tener el valor de enseñar el verdadero sentido de nuestra biodiversidad, dejando recuerdos de aprendizaje y vida. A doña Rosaura Miranda, gracias por ser apoyo incondicional en laboratorio, sin su paciencia, este proyecto de investigación no habría sido posibles, nunca pierda tu buen sentido del humor, por el cual siempre te admiro. Y a todos los compañeros y compañeras de SIPNA y de mi amada Ingeniería Agroforestal, que con sus risas, alegrías, sabiduría, y entendimiento, hacen que todo lo que viví en la universidad, sea la mejor experiencia.

TABLA DE CONTENIDO

1

INTRODUCCIÓN ........................................................................................................ 1

2

PROBLEMÁTICA ....................................................................................................... 2

3

JUSTIFICACIÓN ......................................................................................................... 3

4

OBJETIVOS ................................................................................................................. 4 4.1 OBJETIVO GENERAL .................................................................................................... 4 4.2 OBJETIVOS ESPECÍFICOS .............................................................................................. 4

5

MARCO DE REFERENCIA ....................................................................................... 5 5.1 CILANTRÓN: ................................................................................................................ 5 5.1.1

Descripción taxonómica ..................................................................................... 6

5.1.2

Raíces: ................................................................................................................ 7

5.1.3

Ciclo de vida ....................................................................................................... 7

5.1.4

Usos .................................................................................................................... 7

5.1.5

Gastronomía ....................................................................................................... 7

5.1.6

Medicina ............................................................................................................. 8

5.1.7

Química .............................................................................................................. 8

5.1.8

Condiciones Climáticas ...................................................................................... 9

5.1.9

Preparación del terreno ................................................................................... 10

5.1.10

Siembra ......................................................................................................... 10

5.1.11

Deshierbas .................................................................................................... 11

5.1.12

Desfloras....................................................................................................... 11

5.1.13

Uso de sombra .............................................................................................. 12

5.2 DEFINICIÓN DE SUSTRATOS........................................................................................ 12 5.2.1

Suelos. ............................................................................................................... 13

5.2.2

Cascarilla de arroz ........................................................................................... 14

5.2.3

Bocaschi. .......................................................................................................... 17

5.3 DISTRIBUCIÓN DEL TERRENO .................................................................................... 18

5.3.1

Tipos de bancos o camas:................................................................................. 19

5.4 DEFINICIÓN DE METABOLITOS SECUNDARIOS. ........................................................... 21 5.4.1

Función de los Metabolitos Secundarios.......................................................... 21

5.4.2

Clasificación de los Metabolitos Secundarios. ................................................ 21

5.5 CROMATOGRAFÍA ...................................................................................................... 24 5.5.1 6

Cromatografía de Capa Fina. .......................................................................... 24

METODOLOGÍA....................................................................................................... 26 6.1 FASE 1. EVALUACIÓN DE LAS CARACTERÍSTICAS MORFOMÉTRICAS DE LA HOJA CILANTRÓN CON RESPECTO AL SUSTRATO UTILIZADO ................. 26 6.1.1

Preparación de sustratos. ................................................................................. 26

6.1.2

Implementación del cultivo ............................................................................... 27

6.1.3

Rizomas: ........................................................................................................... 27

6.1.4

Siembra de los rizomas: ................................................................................... 28

6.1.5

Toma de datos: ................................................................................................. 28

6.1.6

Mantenimiento del cultivo ................................................................................ 28

6.1.7

Diseño experimental: ........................................................................................ 28

6.1.8

Análisis Estadístico: ......................................................................................... 29

6.2 FASE 2: IDENTIFICACIÓN PRELIMINAR DE METABOLITOS SECUNDARIOS .............................................................................................................. 30

7

6.2.1

Recolección de la muestra:............................................................................... 30

6.2.2

Extracción: ....................................................................................................... 30

6.2.3

Pruebas Preliminares para identificar Metabolitos Secundarios: .................. 30

6.2.4

Cromatografía de capa fina: ............................................................................ 32

RESULTADOS. .......................................................................................................... 33 7.1 EVALUACIÓN DE LAS CARACTERÍSTICAS MORFOMÉTRICAS DE LA HOJA. ................... 33 7.1.1

Longitud de hoja del Eryngium foetidum L. ..................................................... 33

7.1.2

Ancho de hoja del Eryngium foetidum L. ......................................................... 35

7.1.3

Número de hoja / Planta del Eryngium foetidum L. ......................................... 36

7.1.4

Comparación de tratamientos .......................................................................... 37

7.2 ANÁLISIS ESTADÍSTICO. ............................................................................................. 38

7.3 ANÁLISIS DE METABOLITOS SECUNDARIOS. ............................................................... 40 7.3.1

Pruebas colorimétricas preliminares en los extractos acuosos de las hojas de

Eryngium foetidum L. .................................................................................................. 41 7.3.2

Cromatografía de capa fina para la identificación de terpenos. ..................... 45

8

CONCLUSIONES. ..................................................................................................... 50

9

RECOMENDACIONES. ........................................................................................... 51

10 BIBLIOGRAFÍA ........................................................................................................ 52 11 ANEXOS. .................................................................................................................... 54

TABLA DE FIGURAS

Figura 1: Longitud de las hojas del Eryngium foetidum L; considerando que el valor máximo corresponde a 90 (unidades experimentales) por tratamiento. Fuente, autor. __ 35 Figura 2: Ancho de las hojas de Eryngium foetidum L; considerando que el valor máximo corresponde a 90 (unidades experimentales) para tratamiento. Fuente, autor. ________ 36 Figura 3: Número de Hojas por planta del Eryngium foetidum L; considerando que el valor máximo corresponde a 90 (unidades experimentales) por tratamiento. Fuente, autor. ______________________________________________________________________ 37 Figura 4: Comparación entre tratamientos. Considerando que el valor máximo corresponde a 90 (unidades experimentales) por tratamiento. Fuente, autor. _________ 38 Figura 5: Prueba de Tukey 95% de confianza graficando las interacciones entre el cambio morfométrico y los sustratos, para la evaluación de la Morfometría vegetal de las hojas de Eryngium foetidum L. _____________________________________________________ 40 Figura 6: Pruebas preliminares positivas para Taninos donde existe formación de precipitado de color pardo verdoso para los tres tratamientos (B/S, TQ/S, S) Fuente, autor. _________________________________________________________________ 41 Figura 7: Pruebas preliminares positivas para Glucósidos Cardiotónicos y Lactosas Sesquiterpenicas, coloración anaranjada para los tres tratamientos (B/S, TQ/S, S.) Fuente, autor. _________________________________________________________________ 42 Figura 8: Prueba preliminar negativa para Alcaloides en los tres tratamientos (B/S, TQ/S, S) no se evidencia precipitado. Fuente, autor. __________________________________ 42 Figura 9: prueba preliminar negativa para flavonoides en los tres tratamientos, (B/S, TQ/S, S). Fuente, autor. ___________________________________________________ 43 Figura 10: prueba preliminar para identificación de saponinas; positiva para los tratamientos (B/S, TQ/S), negativa para el tratamiento Suelo. Fuente, autor. _________ 43 Figura 11: Prueba preliminar para identificación de terpenos; positiva para los tratamientos (B/S, TQ/S y S). Fuente, autor. ___________________________________ 44 Figura 12: benceno- acetato de etilo (9:1). Fuente, autor. ________________________ 46 Figura 13: Benceno-Acetato de Etilo, (95:5). Fuente, autor. ______________________ 47

Figura 14: Cromatografía de Capa fina bajo el solvente Cloroformo – Benceno (75:25). Fuente, autor. ___________________________________________________________ 47 Figura 15: Cloroformo – Etanol – Ácido Acético (94:5:1). Fuente, autor. ____________ 48 Figura 16: Cromatografía de Capa fina bajo el solvente Cloroformo – Benceno (1:1). Fuente, autor. ___________________________________________________________ 48

LISTA DE TABLAS

Tabla 1: Tipos de partículas del suelo ________________________________________ 14 Tabla 2: Valores típicos de la retención de humedad de algunos materiales utilizados como sustratos para cultivos. ____________________________________________________ 16 Tabla 3: Composición química del Bocaschi ___________________________________ 18 Tabla 4: Materiales usados para la elaboración de Bocaschi. _____________________ 27 Tabla 5: Arreglo experimental para el análisis de los cambios Morfométricos de la planta con respecto a cada uno de los tratamientos. __________________________________ 29 Tabla 6: Análisis de Varianza para Morfometría Vegetal- suma de cuadrados tipo III __ 39 Tabla 7: Prueba colorimétrica preliminar en los extractos acuosos de las hojas de Eryngium foetidum L. sobre los tratamientos Bocaschi /Suelo, Tamo Quemado / Suelo y Suelo (Testigo). __________________________________________________________ 45 Tabla 8: Valores RF para los tratamientos y los diferentes reactivos ________________ 46 Tabla 9: Datos promedio Bocaschi/Suelo _____________________________________ 54 Tabla 10: Promedio de datos para el sustrato Tamo Quemado/Suelo. _______________ 55 Tabla 11: Promedio de datos para sustrato Tamo Quemado/Suelo. _________________ 56 Tabla 12: Datos climáticos de la estación meteorológica del centro UTOPIA universidad la Salle, Yopal. __________________________________________________________ 57

RESUMEN

En esta investigación se evaluó el efecto del sustrato sobre el desarrollo de la hoja del Cilantrón (Eryngium foetidum L.), y la producción de metabolitos secundarios, con el propósito de definir alternativas de manejo de la especie. Los sustratos empleados fueron, Bocaschi/Suelo 1:1, Tamo Quemado/Suelo 1:1 y Suelo (testigo); las variables analizadas fueron en términos morfométricos (longitud, ancho y número de hoja por planta). Este estudio se realizó en la Fundación Universitaria Internacional del Trópico Americano (Unitrópico) localizada en el municipio de El Yopal, durante los meses de Mayo (fin de mes), Junio y comienzo de Julio. Para la determinación de los cambios morfométricos (longitud de hoja, ancho de hoja y número de hoja / planta), se sembraron en total 270 plantas de E. foetidum, con una distribución de 45 plantas por sustrato con dos repeticiones en cada una. Se determinó que el desarrollo de las hojas se ve favorecido en el sustrato Bocaschi/Suelo; en la producción de metabolitos secundarios, se realizaron pruebas de identificación Fitoquímica preliminares, logrando identificar en todos los tratamientos, Terpenos, Taninos, Glucósidos Cardiotónicos y Lactosas Sesquiterpenicas, en la cromatografías de capa fina, se pudo detectar la posible presencia de Terpenos y Fenilpropanos en los tratamientos Bocaschi/Suelo y Suelo (testigo).

ABSTRACT

In this research was evaluated the effect of substrate on the growth of the Cilantrón (Eryngium foetidum L.), and the production of secondary metabolites, to define the alternatives for the improvement in the crops of this species, the substrates implied were, Bocaschi/Ground 1:1, Tamo Quemado/Ground 1:1 and Ground (witness); the analyzed variables for the growth were in morphometric terms (length, width, and number of leaf per plant). This studies were done in Fundación Universitaria Internacional del Trópico Americano (Unitropico) located in El Yopal town, during the months of May (end of month), June and beginning of July. For the determination of the morphometric changes (blade length, blade width and number of leaf per plant), 270 plants were planted in E. foetidum with a distribution of 45 plants per substrate with two repetitions each one. It was determined that the growth of the leaf was favored in the Bocaschi/Ground substrate, according to the production of secondary metabolites, clorimetrias preliminaries tests were made, identifying in all the treatments, Tannins, cardiac glycosides and sesquiterpene lactones, in the chromatography of fine layer. It was able to detecte the possible presence of Terpenes and Phenylpropane in the treatments Bocashi / ground and ground (witness

1

Introducción

El Cilantrón, Culantro Coyote u Orejeburro (Eryngium foetidum L), es una especie vegetal con alto potencial para las industrias medicinal, alimentaria y química, debido a su contenido en aceites esenciales compuestos por sesquiterpenos y monoterpenos en concentraciones relativamente bajas, alrededor de 0,02% en hojas y 0,03% en tallos (Pala, 2002). Olachea (2010) y Martínez (2001), describen que dichos aceites esenciales del E. foetidum tienen particularidades como una alta volatilidad expuesta en las fracciones liquidas destilables, que dentro de las plantas, producen sus aromas particulares. Países tropicales como Costa Rica, han demostrado eficiencia en la producción y exportación del Cilantrón desde los años 90, produciendo y exportando los primeros 8 kilogramos en 1990 y llegando a alcanzar el orden de 40.000 kilogramos semanales hacia los Estados Unidos y Canadá (Alvarado et al., 2009). Según Pala (2002), Costa Rica es el primer país exportador de Eryngium foetidum L. hacia Norteamérica, usando poca tecnología de manejo de suelos en el cultivo. En Colombia, esta especie ha sido descrita desde el concepto etnobotánico, con experiencias medicinales en las regiones costeras del país. (Blair & Madrigal, 2005). Por conocimiento tradicional en el departamento de Casanare municipio de Yopal, el Cilantrón es usado culturalmente en el desarrollo de actividades gastronómicas como condimento y en el tratamiento de algunas enfermedades, dicho aprovechamiento se hace de plantas encontradas de forma silvestre en la vega de los ríos. Este proyecto busca documentar el desarrollo de la hoja del Cilantrón cultivado en dos sustratos diferentes Bocaschi/Suelo, Tamo Quemado/Suelo y en Suelo como testigo, evaluando las características morfométricas de la parte comercial de la planta (hoja) y su producción de metabolitos secundarios a través de pruebas de identificación fitoquímica preliminar.

1

2

Problemática

El Cilantrón es una especie común de amplia distribución en zonas tropicales, el cultivo de esta planta se ha desarrollado de manera productiva en países como Vietnam, Puerto Rico, Costa Rica y México. (Guerra, 1999), en algunos de ellos se considera un producto de exportación gracias a sus características organolépticas. En Casanare, esta especie se encuentra de manera silvestre y se usa culturalmente por algunas familias como planta aromática y condimentaría, sin embargo, no se han registrado cultivos comerciales ni estudios sobre técnicas adecuadas de producción para obtener plantas con características físicas y organolépticas competitivas en el mercado. En el municipio de Yopal el Cilantrón (Eryngium foetidum L.) ha tenido un uso tradicional como especie aromática y medicinal; de lo cual se deriva su importancia en la canasta familiar. Sin embargo la escasa información disponible del manejo en cultivo y la dificultad para encontrar semilla certificada; limitan su producción de manera comercial. Por lo anterior se plantea el siguiente interrogante ¿Cuáles son los cambios morfométricos y de producción de metabolitos secundarios de la hoja del Cilantrón (Eryngium foetidum L.) cultivado en diferentes sustratos orgánicos?

2

3

Justificación

Las plantas necesitan de macroelementos y micro elementos del suelo que bajo condiciones ambientales específicas para cada especie, permiten generar el alimento necesario para satisfacer sus actividades fisiológicas, habitando de esta forma diversos ecosistemas; es así, que una planta se diferencia de otras de su misma especie de acuerdo a la disponibilidad del alimento aun siendo de la misma familia. Entonces se evidencia la importancia de documentar el comportamiento del Cilantrón (Eryngium foetidum L.) en diferentes sustratos orgánicos y la presencia de metabolitos secundarios para YopalCasanare Colombia. El Cilantrón (Eryngium foetidum L.) es una especie vegetal con características medicinales, organolépticas y cosméticas (Santos, 2001), además reporta diversos usos por comunidades de centro y sur América (Sosa, 2006). En Casanare es una planta usada tradicionalmente por los campesinos como especie condimentaría y medicinal, se recolecta de pequeñas parcelas que se establecen de forma natural o silvestre y que se desarrollan a pesar de la falta de control y seguimiento en las condiciones de cultivo. Teniendo en cuenta el aprovechamiento comercial que en otros países se da de esta planta y sumada la facilidad de propagación y crecimiento que se evidencia en el Departamento de Casanare, se reconoce su potencial como especie de producción comercial. Por lo anterior se hace necesario conocer el comportamiento de la parte comercial de la planta (hoja) en cultivo, con el objetivo de documentar experiencias que permitan implementar estrategias para dicha producción, aumentando así las opciones de desarrollo agrícola y económico para las comunidades de la región.

3

4

4.1

Objetivos

Objetivo General

Evaluar el efecto del sustrato en el desarrollo de la hoja y la presencia de metabolitos secundarios del Cilantrón (Eryngium foetidum L.), cultivado en condiciones ambientales del municipio de El Yopal, utilizando propagación vegetativa.

4.2

Objetivos específicos  Evaluar las características morfométricas de la hoja (longitud, ancho y cantidad por planta) del Cilantrón (Eryngium foetidum L.) cultivado en tres sustratos diferentes (Bocaschi/Suelo, Tamo Quemado/Suelo y Suelo como testigo) utilizando propagación con rizomas.  Analizar el efecto del sustrato en la producción de metabolitos secundarios presentes en las hojas del Cilantrón (Eryngium foetidum L.) a través de pruebas fitoquímicas preliminares.

4

5

5.1

Marco de referencia

Cilantrón: “El Cilantrón tuvo su origen en las zonas tropicales de las Américas, probablemente en

el área comprendida entre Panamá, Veracruz (México) y el archipiélago del Caribe” (Seaforth, 1988). Los nativos de América lo usaban extensamente como condimento y como planta medicinal desde tiempos ancestrales, pero era desconocido fuera del hemisferio occidental hasta la llegada de los europeos a partir de finales del siglo XV (Picó, 2000). Los europeos llevaron semillas de Cilantrón a otras partes del mundo; ya para el siglo 17 se sembraba en Asia y Europa, pasando luego a las zonas tropicales de todos los continentes y siendo muy estimada en la cocina y la medicina naturista de América y de países asiáticos como Bangladesh, Camboya, India, Indonesia, Laos, Malasia, Singapur, Tailandia y Vietnam (Picó, 2000). Este cultivo se produce en huertos familiares y escolares en muchos países del mundo. El Cilantrón es cultivado de manera comercial y organizada en Puerto Rico, República Dominicana, Cuba y otras islas de las Antillas, así como en América Central, México y Brasil. En Asia, entre los principales países productores están Tailandia, Vietnam, Bangladesh y la India. La mayoría de los productores de Cilantrón en el mundo siembran áreas pequeñas y casi toda la producción se consume en los países productores, mientras que cantidades pequeñas son exportadas a países cercanos. Una excepción es Costa Rica, que exporta la mayor parte del Cilantrón que produce. En el 2007, se registraron producciones de hojas frescas de Cilantrón de 1,760 toneladas (1,600 toneladas métricas) en Costa Rica, 550 toneladas (500 toneladas métricas) en la República Dominicana, y cerca de 290 toneladas (260 toneladas métricas) en Puerto Rico. Los Estados Unidos, Canadá, Japón, Australia y varios países de Europa son consumidores pero producen poco Cilantrón comercialmente, e importan Cilantrón fresco y procesado de países del área del Caribe o de Asia para satisfacer la creciente demanda de inmigrantes asiáticos, caribeños y latinoamericanos (Morales P. j., 2011). Económicamente, el Cilantrón es una de las hierbas aromáticas más importantes en Puerto Rico, donde las ventas reportadas a nivel de finca tuvieron un valor aproximado de 5

US$1.6 millones anuales en los años 2008 al 2010. Esta hierba aromática está entre las que se siembran orgánicamente en Puerto Rico (Febles, 2010) y entre los alimentos orgánicos que los consumidores locales quieren tener disponibles (Morales P. j., 2011).

5.1.1 Descripción taxonómica “El Cilantrón pertenece a la familia botánica Apiaceae (la familia del apio), anteriormente llamada familia Umbelliferae. A esta familia pertenecen 455 géneros y unas 3,600 especies de plantas” (Pimenov, 1993) El Cilantrón es una planta herbácea perenne (Santos, 2001) sin embargo (Guerra, 1999) afirma que realizando un manejo agronómico apropiado el cultivo puede durar hasta 2 años en producción. Todas las partes de la planta producen aceites esenciales que le imparten su fuerte aroma. (Santos, 2001) Las raíces son gruesas y se extienden generalmente a 31 cm de distancia del tallo. El tallo es muy corto durante la etapa de crecimiento vegetativo de la planta, pero llega a 61 cm de alto en la etapa de producción de flores y semillas. (Santos, 2001) Las hojas aparecen formando una roseta alrededor de la base del tallo, son alargadas, generalmente entre13 a 31 cm de largo, y unos 5 cm de ancho, con los bordes aserrados. En su etapa adulta la planta tiene de siete a diez hojas (Santos, 2001). Las plantas comienzan a florecer aproximadamente a los 3 meses después de la siembra, siendo más tempranas las plantas que crecen a pleno sol o las que crecen en días largos y cálidos (verano), mientras que son más tardías las que crecen con 60-70% de sombra. Las flores son pequeñas y blancuzcas, y salen en grupos en las puntas de ramas del tallo, sobre estructuras en forma de cabezuelas o cilindros de hasta media pulgada (1.3 cm) de largo y 1/5 de pulgada (0.5 cm) de diámetro. Las semillas son pequeñísimas y livianas (de aproximadamente 66,000 a 78,500 semillas por onza), de color pardo cuando están maduras (Morales P. j., 2011).

6

5.1.2 Raíces:

La raíz del Cilantrón es pivotante con raíces secundarias abundantes y medianamente profundas. (Guerra, 1999)

5.1.3 Ciclo de vida

El Cilantrón coyote es un cultivo que tiene un ciclo de vida de 6 a 7 meses. Tiene la peculiaridad de florecer como una planta perenne. Se pueden cosechar hojas cada 3 meses hasta por un periodo de 2 años (Guerra, 1999).

5.1.4 Usos

El Cilantrón coyote es utilizado como especia en la preparación de alimentos y también se le atribuyen propiedades medicinales para curar vómitos, flatulencia, fiebre. Además, las hojas son ricas en calcio, hierro, riboflavinas, carotenos (Sosa, 2006).

5.1.5 Gastronomía “En muchos países de Latinoamérica tropical como México, Guatemala, El salvador, Honduras, Venezuela, CostaRica, PuertoRico,Panamá,Colombia, Ecuador,Nicara gua,República Dominicana y Cuba, las hojas se usan frescas, enteras o picadas, en forma sucedánea al cilantro y perejil.” (Olachea, 2010). “En el Perú es un ingrediente básico de la gastronomía amazónica, donde se le conoce como "sacha culantro", para diferenciarlo del Coriandrum sativum, hierba de uso común en la gastronomía del resto del país y conocida allí como "culantro".” (Olachea, 2010) En Panamá se mezcla con perejil, ajo, cebolla y cebollina para preparar el "recao verde", condimento muy utilizado en la preparación de diversos guisos, salsas y sopas. Hojas frescas de culantro son un ingrediente esencial del sancocho. Actualmente su cultivo

7

en Panamá se hace en forma comercial, ya que su demanda en la gastronomía Panameña es bastante alto.” (Olachea, 2010).

5.1.6 Medicina “Su principal uso medicinal es resolver varios problemas del aparato digestivo, como diarrea, disentería, meteorismo y como estimulante del apetito. Se emplean las hojas en cocción, administrada de manera oral, o por medio de lavados rectales”. (Olachea, 2010) Se le ocupa en padecimientos ginecológicos, en casos de amenorrea y hemorragias internas; para promover el parto, se emplea la raíz en té, administrado antes o después del parto; y para curar el congelo (enfermedad de la mujer que ha abortado) se prescribe un té con la raíz de esta especie más yerba Martín (Hyptis verticillata), hojas de jobillo, romero, cáscaras de jícara (Crescentia cujete), manzanilla (Malvaviscus arboreus), semillas de aguacate (Persea americana) y las de pió (Licania platypus) partidas en cruz y sal; de esto se bebe una dosis caliente (Olachea, 2010). Para aliviar el asma la hoja se ingiere batida con miel. Además, se le utiliza contra inflamaciones y dolor de rodillas (Olachea, 2010).

5.1.7 Química

Las hojas y flores de E. foetidum contienen un aceite esencial en el que se han detectado los componentes fenílicos 4-hidroxi-3-5-dimetil-acetofenona, 2-4-5-trimetilbenzadehído y ácido 3-4-dimetil-benzoico; los monoterpenos para-cimeno, y alfa-pineno y el ácido graso raro ácido cáprico. Se describe en la literatura que la raíz contiene saponinas, y las partes aéreas, caroteno (Olachea, 2010).

8

5.1.8 Condiciones Climáticas

El clima es uno de los factores más influyentes en el desarrollo de cualquier cultivo, puesto que las plantas han evolucionado de acuerdo a sus necesidades y su adaptabilidad se da a largo plazo.

5.1.8.1 Temperatura

La especie se desarrolla en climas cálidos y frescos. Sin embargo, el crecimiento óptimo se alcanza con temperaturas entre 15 y 30 °C. Las altas temperaturas y la luz solar directa tienden a que la floración se acelere y sea más intensa (Alvarado et al., 1999)

5.1.8.2 Luz solar

Cuando la luz solar incide directamente sobre el cultivo, éste tiende a producir hojas más cortas y a florecer más rápido, condición que se ve favorecida con un 73% de sombra, logrando duplicar el rendimiento de las hojas frescas en tamaño (Alvarado et al., 1999).

5.1.8.3 Agua

El cultivo se desarrolla mejor en suelos que se mantengan con un 80% de su capacidad de campo, para mantener un ritmo acelerado de crecimiento. Sin embargo, la alta humedad relativa favorece el desarrollo de enfermedades (Alvarado et al., 1999).

5.1.8.4 Suelos

La planta crece en casi todo tipo de suelos que contengan una buena retención de humedad y buen drenaje (Martinez, 2001)

9

5.1.9 Preparación del terreno

El método de preparación del terreno utilizado con más frecuencia en el desarrollo de este cultivo es en eras que consiste en limpiar bien el terreno y se confeccionan las eras de 1.5 m de ancho, 0.15 m de altura y 6m de longitud. Se revuelve bien el suelo con un rastrillo para eliminar piedras, troncos, raíces y cualquier otro tipo de material inerte. Seguidamente se raya cada 20 cm. y se siembra la planta (Vargas, 2013).

5.1.10 Siembra

La siembra en el campo se puede realizar utilizando cualquiera de los métodos mencionados a continuación (Alvarado et al., 1999):



Voleo:

La semilla se esparce uniformemente por todo el terreno. Tiene la desventaja de que se gasta mucha semilla y, por más cuidado que se tenga, la distribución no es uniforme. (Alvarado et al., 1999). 

Chorro:

Este sistema de siembra se utiliza en terrenos con eras, previamente rayados. La semilla se coloca en el surco y luego se cubre con suelo. Las rayas debe estar separado cada 20 cm. aproximadamente. 

Trasplante:

Las semillas se ponen a germinar en un lugar apropiado y, cuando las plántulas están listas, se siembran en el campo definitivo. En este sistema de siembra hay un mayor aprovechamiento de las semillas, una mayor uniformidad en el crecimiento de las plantas y 10

una mejor programación de la cosecha de las hojas, la distancia recomendada es de 20 cm entre hileras y plantas. Además, hay menos hojas perdidas (desecho), es importante mencionar que a distancias menores aumenta la densidad de siembra pero se obtienen hojas y mazos de tamaño más pequeño. El trasplante se realiza entre 55 y 65 días después de la germinación, o cuando las plantas tengan de 3 a 4 hojas desarrolladas. Se recomienda realizar preferiblemente en días frescos y en horas de la tarde. La profundidad de siembra no debe superar 1.5 cm. (Alvarado et al., 1999). 

Propagación vegetativa:

Consiste en la utilización de las raíces y parte de los tallos para su propagación y se puede utilizar el mismo método usado en el trasplante (Guerra, 1999).

5.1.11 Deshierbas

Las deshierbas son muy importantes para evitar o minimizar la competencia con el cultivo. Se realiza manualmente. El tiempo entre deshierbas varía de acuerdo con las condiciones climáticas de la zona (Alvarado et al., 1999).

Cuando la siembra se realiza a

chorro o al voleo, la primera deshierba se hace cuando la plántula emerge o cuando se estima que las hierbas han cubierto aproximadamente el 15% del área sembrada. Las deshierbas posteriores se realizan cuando se estime conveniente (Alvarado et al., 1999).

5.1.12 Desfloras

Consiste en eliminar las flores de las plantas. Esto es importante porque se evita que las plantas se agoten y que sus hojas pierdan calidad. Además, si esta práctica no se realiza, la capacidad de respuesta de las plantas a la producción de hojas se reduce considerablemente. La primera desflora se realiza entre los 46 y 50 días después de la siembra, la segunda a los 8 ó 15 días después de la primera desflora (Alvarado et al., 1999). 11

5.1.13 Uso de sombra

Alvarado et. Al., (1999) afirman que cuando las plantas de Cilantrón se siembran bajo sombra tienden a producir hojas más largas, más anchas y de mejor calidad. Cuando la siembra se realiza a pleno sol, el tamaño de las hojas disminuye y también su calidad. Se recomienda usar para sombra plantas como gandul (Cajanus cajan L.) por las razones siguientes: incorpora nitrógeno al suelo ayuda a su mejoramiento, posee ramas con crecimiento horizontal, obteniéndose una sombra de mejor cobertura, permite el paso de luz solar y amortigua el golpe de la gotas de lluvia, es una planta de porte bajo, ayuda a un mejor control de las malezas, es de fácil propagación, ayuda a conservar mejor la humedad del suelo, su follaje se puede utilizar como forraje por su alto valor proteico, es una planta de amplia adaptabilidad a suelos pobres y de bajo contenido de nutrientes, es una buena fuente nutricional por su alto valor proteico de carbohidratos y minerales, y puede ser una alternativa económica y de sustento familiar para el agricultor. El gandul se puede usar como sombra temporal o permanente, ya que si el Cilantrón se siembra en un lugar donde el agua no está muy disponible, esta planta puede ayudar a la retención del agua y al crecimiento del Cilantrón. El uso permanente ayuda cuando se hace un trasplante, ya que evita que el Cilantrón tenga menor estrés. Conforme las plantas de Cilantrón crecen, es necesario podar el gandul para permitir un mayor paso de los rayos solares. El gandul se siembra a una distancia de 3 ó 4 entre plantas sembrando en cuadro y se debe sembrar en época de lluvia para que haya una mejor adaptabilidad (Alvarado et al., 1999).

5.2

Definición de sustratos

El término sustrato, se aplica en horticultura a todo material sólido distinto del suelo natural o de síntesis, mineral u orgánico, que puesto en un contenedor en forma pura o en mezcla, permite el anclaje del sistema de raíces. Por otra parte, debe señalarse que el cultivo de las plantas en sustrato, permite un control del medio ambiente radical particularmente de los aspectos relacionados con el suministro de agua y nutrientes. Los sustratos empleados en la propagación de esquejes pueden diferenciarse en orgánicos; por ejemplo, tierra, turba, compost (de diferentes materiales como corteza de pino), cascarilla 12

de arroz (tanto vivo como quemado) e inorgánicos como la perlita, la vermiculita (inertes) y la arena (Sosa, 2006).

5.2.1 Suelos.

Para definir suelo se ha tenido en cuenta diferentes matices de acuerdo al punto de vista que se ha generado con el paso del tiempo, así:

1. El suelo es, desde el punto de vista del agricultor, el sitio para ubicar sus semillas y producir sus cosechas (Worthen, 1949). 2. Para los ecologistas, es uno de los componentes del ecosistema que se estudia (Jaramillo, 2002) 3. Para un químico, es el laboratorio donde se producen reacciones entre las tres fases conocidas (liquida, sólida y gaseosa) (Hillel, 1998). 4. Para un antropólogo o arqueólogo, ven el suelo como un tipo de registro del pasado (Malagón et al, 1995).

Con el devenir de la historia se presentan dos definiciones que llaman la atención, debido a su contenido y forma de visión. Torres y Zuluaga (2009), denotan que el suelo, es un sistema estructurado, biológicamente activo, que conforman un sistema con componentes minerales, componentes orgánicos, gas (aire en los espacios existente en los poros), y agua envolviendo partículas, en un espacio capilar. Tarbuck y Lutgens (1999) consideran la Tierra como un sistema dentro del cual el suelo es una interface donde interactúan diferentes partes de aquel: la litosfera, la atmósfera, la hidrosfera y la biosfera. Debido a esto, el suelo es dinámico y sensible a prácticamente todos los aspectos de su entorno. Estos autores hacen énfasis en un hecho fundamental que sustenta la razón de ser de la Ciencia del Suelo: El suelo no es simplemente el material producido por la meteorización que se ha acumulado en la superficie terrestre, es decir, el suelo no es producto de la meteorización (Tabla 1).

13

Tabla 1: Tipos de partículas del suelo Tipo de partícula

Diámetro

Área específica,

(mm).

(m2/kg)

Gravilla

1,0-2,0

1,1

Arena gruesa

0,5-1,0

2,3

Arena media

0,25-0,5

4,5

Arena fina

0,1-0,25

9,1

Arena muy fina

0,05-0,1

22,7

0,002-0,05

45,4

Arena

Limo

Fuente: (Torres y Zuluaga, 2009).

5.2.2 Cascarilla de arroz

La cascarilla de arroz es un subproducto de la industria molinera, que resulta abundantemente en las zonas arroceras de muchos países y que ofrece buenas propiedades para ser usado como sustrato. Entre sus principales propiedades físico-químicas tenemos que es un sustrato orgánico de baja tasa de descomposición, es liviano, de buen drenaje, buena aireación y su principal costo es el transporte. La cascarilla de arroz es el sustrato más empleado para los cultivos hidropónicos en Colombia bien sea cruda o parcialmente carbonizada. El principal inconveniente que presenta la cascarilla de arroz es su baja capacidad de retención de humedad y lo difícil que es lograr el reparto homogéneo de la misma (humectabilidad) cuando se usa como sustrato único en camas o bancadas. (Calderon, 2002).

5.2.2.1 Cascarilla de arroz quemada:

La cáscara de arroz es uno de los residuos resultantes de la producción, estimándose que de cada cuatro toneladas de arroz producidas una tonelada es cáscara, la cual se 14

consideraba como problema, pero en la actualidad es una generación de ingresos adicional a la producción de arroz. Para disminuir este efecto, se ha utilizado como práctica la quema parcial, con lo que se logra un incremento de la retención del agua por parte del sustrato. En la Tabla 2 se presentan las propiedades químicas y físicas de la cascarilla de arroz, según Calderón y Cevallos (2001).

5.2.2.2 Retención de Humedad:

Al hablar de Retención de humedad de un sustrato como la cascarilla de arroz, nos tropezamos con el problema de que no existen normas ni metodologías que especifiquen como se debe determinar su capacidad de retención de humedad. Es sabido que la capacidad de retención de humedad depende de la forma como se realiza tal determinación. Factores tales como tiempo de humectación, relación Cascarilla/Agua, método de contacto, etc, pueden afectar el resultado final. Los métodos usuales para la determinación de la tensión de humedad entre 0 y 100 cm de cabeza de H2O no son satisfactorios para la cascarilla de arroz, ya que la escala de tensiones en las cuales el agua es aprovechable en este sustrato (entre 0 y 2 cB) es considerablemente más baja que aquella de mayoría de los sustratos tradicionalmente utilizados en países como Francia, España y Holanda (0-10 cB). Por otro lado la mala capilaridad de la cascarilla de arroz hace que zonas muy húmedas (baja tensión de humedad) coexistan al lado de zonas muy secas (alta tensión de humedad) por largo tiempo (varias semanas) sin que el agua se mueva de un lado hacia el otro y en este caso la determinación de la tensión de humedad arroja considerable error (Calderon, 2002). Para mejora la retención de Humedad de la cascarilla, se ha recurrido a la quema parcial de la misma. Esta práctica aunque mejora notablemente la humectabilidad, es en realidad muy poco lo que aumenta la capilaridad ascensional y la retención de humedad (Calderon, 2002).

15

5.2.2.3 Capilaridad Ascensional:

Es la capacidad que presenta un sustrato de succionar agua de abajo hacia arriba, partiendo de una superficie con agua libre. La Capilaridad Ascensional en 24 horas es muy baja tanto en la Cascarilla de arroz Cruda como en la Cascarilla de arroz Quemada. A medida que se aumenta el grado de quemado, la capilaridad ascensional aumenta, pudiendo llegar en cascarilla 100% quemada hasta 4.5 cm en 24 horas (Tabla 2). (Calderon, 2002).

5.2.2.4 Como usar bien la cascarilla de arroz:

Para realizar este proceso se parte de cascarilla de arroz cruda y arcilla fina. Se hace uso de la propiedad que tiene la arcilla de ser hidrofílica, de retener humedad y de aportar Capacidad de Intercambio Catiónico. La arcilla por lo general se consigue localmente en las fincas o en las cercanías de las mismas y es de bajo costo. Las arcillas existen en diversos tipos y clases, presentando algún mayor o menor grado de retención de humedad así como de nutrientes. Las de tipo montmorillonítico poseen mayor capacidad de retención que las de tipo caolinítico. (Calderon, 2002)

Tabla 2: Valores típicos de la retención de humedad de algunos materiales utilizados como sustratos para cultivos. Material

Retención % v/v

Cascarilla de arroz Cruda

9.0

Cascarilla de arroz

10-13

Quemada Cáscara de Coco

35-50

Cascarilla de Arroz

25-35

Caolinizada

Fuente: (Calderon, 2002)

16

5.2.3 Bocaschi. El Bocaschi, según Shintani, (2000), es un “sustrato orgánico fermentado que activa y aumenta la cantidad de microorganismos benéficos en el suelo que pueden tomar la materia orgánica del suelo como un suplemento nutricional para los organismos de la sub superficie, dinamizando los movimientos energéticos del suelo”. El Bocaschi (término del idioma japonés que significa, abono orgánico fermentado), incorpora al suelo materias orgánicas y nutrientes esenciales como, nitrógeno, fósforo, potasio, calcio, magnesio, hierro, manganeso, zinc, cobre y boro; los cuales, mejoran las condiciones físicas y químicas del suelo (Agüero et al, 2014). Martínez (2004), determina que el Bocaschi puede ser utilizado entre 5 y 21 días después de la fermentación. Cuando es aplicado al suelo, la materia orgánica producida es utilizada como alimento de los microorganismos, de los cuales, continuaran descomponiéndola y mejorando la vida del suelo.

5.2.3.1 Composición del Bocaschi.

Para Chalan (2009), la composición del Bocaschi (Tabala3) varía según los requerimientos nutricionales que requiere tanto el suelo como una planta en específica, si se habla en términos de cultivo. Bures (1997) enuncia que los materiales para la elaboración del Bocaschi son de fácil adquisición, además, estos materiales son tierra, estiércol de gallinas, de bovinos, porcinos, caprinos, tamo de arroz, cal, melaza y leche. En cuanto a la composición química del Bocaschi varía de acuerdo a las concentraciones de los nutrientes en los materiales usados en su elaboración, dicho esto, en la tabla 3 se describe de manera general los contenidos minerales del Bocaschi, resaltado el gran contenido de Materia Orgánica (22,3%) y Nitrógeno (1,12%) en dicha composición, además se denota en mayor proporción, minerales como Fosforo (1700 ppm) y Cice (1104,51 cmol) (Pérez et al,. 2008; Agüero et al,. 2014; Chalan, 2009).

17

Tabla 3: Composición química del Bocaschi MINERAL

PORCENTAJE O ppm

RESULTADOS

M.O

%

22.3

Nitrógeno

%

1.12

Fosforo

Ppm

1700

Potasio

Ppm

172.23

Calcio

Ppm

623.2

Aluminio

Ppm

0.01

Magnesio

Ppm

309

Cice

Cmol

1104.51

Zinc

Ppm

0.55

Manganeso

Ppm

3.06

Boro

Ppm

5.83

Hierro

Ppm

0.5

Cobre

Ppm

0.01

Azufre

Ppm

3

Fuente:(Chalan, 2009)

5.3

Distribución del Terreno

La ubicación del terreno y su preparación son uno de los más importantes elementos para el éxito de cualquier cultivo agrícola, para hacer la elección del terreno es indispensable conocer el “tipo de cultivo (producción y calidad requerida), exigencias bioclimáticas de la especie en cultivo, tipo de suelo (buen drenaje y de alta calidad, aunque con los sistemas modernos de fertirriego es posible utilizar suelos pobres con buen drenaje o sustratos artificiales), topografía (pendientes pequeñas), vientos (dirección, intensidad y velocidad)” (Noreña, 2013). (Santos, 2001), Menciona que el establecimiento del cultivo de Cilantrón se debe realizar en un terreno con buena retención de agua y drenaje adecuado. La preparación del terreno se debe efectuar teniendo en cuenta el tipo y la cobertura que se tenga en el suelo, entendiendo la cobertura como el “aspecto morfológico y tangible del suelo, es decir todos los aspectos que hacen parte del recubrimiento de la superficie 18

terrestre, de origen natural o cultural, que sean observados y permitan ser medidos con fotografías aéreas, imágenes de satélite u otros sensores remotos.” (Ugalde, 2012). Después de hacer efectivo el manejo de la cobertura del suelo (Santos, 2001) argumenta que este debe estar desmenuzado y suficientemente suelto. La distribución del terreno después de realizada la preparación del mismo, se realiza de acuerdo a las características y recursos para invertir en este. Es decir se debe tener presente la topografía, viento, temperatura, humedad, condiciones físicas y químicas del suelo, capacidad de inversión y finalidad de la producción (Noreña, 2013), esa distribución se hace estableciendo camas o bancos sobre el terreno para facilitar la aireación y el desarrollo de raíces (Vargas, 2013). Se deben dejar 50 cm. de distancia entre los bancos para poder caminar entre ellos, lo que también ayudaría al drenaje del predio (Vargas, 2013). Según (Vargas, 2013) los bancos deben medir 120 cm. de ancho para facilitar la cosecha. En casos donde el terreno es inclinado, los bancos al igual que la siembra deben hacerse al contorno o curvas de nivel.

5.3.1 Tipos de bancos o camas:

Existen clasificaciones que permiten hacer una comparación entre los diferentes tipos de bancos. (Vargas, 2013) Menciona algunos de ellos: 

Germinador en tierra a nivel del suelo:

Tierra desinfectada y cuya altura no supera los 25 cm. Se emplean normalmente en viveros transitorios y su principal inconveniente radica en la facilidad con que se deforman por acción erosiva del agua o el viento. 

Germinador en ladrillo a nivel del suelo:

Son eras delimitadas por una hilera de ladrillos y al igual que el tipo anterior, su altura no supera los 30 cm. Con esta clase de eras, empleadas en viveros. 19



Germinador en ladrillo elevado sobre el nivel del suelo:

Los germinadores elevados sobre el nivel del suelo se emplean en viveros permanentes con el fin de facilitar las actividades realizadas en ellos como siembra, deshierba, repicado. Su altura se encuentra entre los 80 cm y 1,20 m, de esta manera los trabajadores no tiene que permanecer agachados cuando trabajan en ellos. 

Germinación en bancos:

Son mesones construidos en ladrillo varilla y concreto, que cuentan con una altura cercana a 1 m y se emplean para facilitar las labores realizadas en ellos, a la vez que se logra un ahorro de sustrato lo cual no sucede con el tipo de germinador expuesto en el aparte anterior. Su principal inconveniente radica en los elevados costos de construcción. También se pueden construir bancos en madera que resultarían menos costosos; sin embargo, este tipo de banco presenta el inconveniente de ser mucho más sensible a la acción de la humedad y su duración no supera los cinco años, si la madera no se encuentra debidamente inmunizada. 

Germinación en bandejas:

Existen en el mercado bandejas plásticas especiales para germinación cuya presentación varía según el tipo de semilla que se piensa germinar. Algunas se encuentran divididas en cavidades individuales de diferentes tamaños y son especiales para la producción de plántulas mediante siembra directa, otras no presentan ningún tipo de división y se emplean cuando el objetivo es la elaboración de almácigos. Las bandejas germinadoras empleadas para siembra directa de semillas de rápida germinación, requieren de bancos especiales dotados de varias líneas de guaya o alambre sobre los cuales son suspendidas.

20

5.4

Definición de Metabolitos secundarios.

A diferencia de otros organismos, las plantas destinan una cantidad significativa del carbono asimilado y de la energía a la síntesis de una amplia variedad de moléculas orgánicas que no parecen tener una función directa en procesos fotosintéticos, respiratorios, asimilación de nutrientes, transporte de solutos o síntesis de proteínas, carbohidratos o lípidos, y que se denominan metabolitos secundarios (Plazas, 2012; García y Pérez, 2008).

Dichos metabolitos secundarios, presentan una distribución restringida en el reino vegetal, es decir, no todos los metabolitos secundarios se encuentran en todos los grupos de plantas. Se sintetizan en pequeñas cantidades y no de forma generalizada, estando a menudo su producción restringida a un determinado género de plantas, a una familia, o incluso a algunas especies, es por eso que dichas sustancias contienen una especificidad muy amplia (Almaraz et al, 2000).

5.4.1 Función de los Metabolitos Secundarios.

Las funciones de los metabolitos secundarios, para García y Pérez (2008) y Almaraz et al (2000), van desde roles ecológicos atrayentes o repelentes de animales (Antibiosis y Antixenosis), hasta la formación de pigmentación en las flores y frutos de las plantas. Muchas de ellas están en la planta como “función protectora frente a predadores, actuando como repelentes, proporcionando a la planta sabores amargos, haciéndolas indigestas o venenosas”.

5.4.2 Clasificación de los Metabolitos Secundarios.

Para Sepúlveda et al (2003), existen varios metabolitos secundarios, que varían según su procedencia y su ruta metabólica del cual se generan. A continuación se describirán:

21



Alcaloides

Poseen tres características fuertemente bien marcadas: solubles en agua, contienen al menos un átomo de nitrógeno y exhiben actividad biológica (Plazas, 2012). Se encuentran aproximadamente en el 20% de las plantas superiores, en la gran mayoría herbáceas dicotiledóneas. Gracias a su amplia distribución en la naturaleza, Sepúlveda et al (2003), denota que los alcaloides actúan en defensa de una planta, pero en los seres humanos, los alcaloides generan respuestas fisiológicas y psicológicas la mayoría de ellas consecuencia de su interacción con neurotransmisores. A dosis altas, casi todos los alcaloides son muy tóxicos. Sin embargo, a dosis bajas tienen unos altos valores terapéuticos como relajantes musculares, tranquilizantes, anti tusivos o analgésicos.



Saponinas.

Grupo de glucósidos esteroidales solubles en agua, que en el cuerpo humano, tienen la propiedad de hemolizar la sangre y disminuir la tensión superficial del agua, formando espumas estables y abundantes (Plazas, 2012). Según García y Pérez (2008) las saponinas se pueden encontrar una o más moléculas de azúcar, por lo que es muy común hallarlas como jugo lechoso cuando se corta un tallo u hoja de una planta. Algunas saponinas tienen función de salvar guardas a otros seres vivos como los animales, segregando una sustancia toxica, como es el caso de la Calotropis procera. Así lo expresa Almaraz et al (2000), donde se documenta que en el contiene asiático, dichas saponinas son extraídas de esta planta, por la mariposa monarca en estado larvario, del cual, las aves no degustan de dichas mariposas, ya que contraen la toxicidad de las saponinas.

22



Taninos.

Para Plazas (2012) y Almaraz et al (2000), son compuestos fenólicos poliméricos que se unen a proteínas desnaturalizándolas. , Sepúlveda et al (2003) describe que “El nombre de tanino procede de la antigua práctica de utilizar extractos vegetales para convertir la piel animal en cuero (en el curtido, se unen al colágeno aumentando su resistencia al calor, al agua y a microorganismos)”. Existen dos categorías: taninos condensados y taninos hidrolizables. Su función varían como repelentes alimenticios, Sin embargo, los taninos del vino tinto tienen efecto beneficioso en la salud humana al bloquear la formación de endotelina-1, una molécula señal que provoca vasoconstricción (García y Pérez, 2008). 

Flavonoides.

Para los anteriores autores, los flavonoides son un “grupo de compuestos de origen natural que se caracterizan por poseer un núcleo C6-C3-C6, dos anillos bencénicos unidos por una cadena de tres átomos. Los flavonoides se pueden clasificar de acuerdo a su origen biosintético o de acuerdo a las variantes en la cadena C3”. Para Almaraz et al (2000), citando a Mol y Koes (1998), mencionan que algunos metabolitos, particularmente compuestos con color como ciertos flavonoides y carotenoides se les asocia con otro tipo de funciones ecológicas en las plantas, como la atracción de polinizadores, lo que mejora la fertilización, y como dispersores de semillas. 

Glucósidos Cardiotónicos y Lactosas Sesquiterpenicas.

Según Plazas (2012) los glucósidos son productos del metabolismo secundario de las plantas, que por medio de la condensación de un azúcar con otras moléculas orgánicas cuyos enlaces alfa o beta se efectúan con el hidroxilo del hemiacetal. La fracción de azúcar se denomina glúcido y la otra aglucón o genina. Pero para García y Pérez (2008), en estado natural es catalizada por enzimas que son específicas según el tipo de enlace azúcar-genina, y reciben su nombre según el tipo de 23

glucósido. En cuanto a su función, Se encuentran de forma natural en forma de glicósidos o de agliconas. Quizá el más conocido sea la digitoxina, o su análogo digoxina, aislada de Digitalis purpurea y utilizada como medicamento en el tratamiento de la insuficiencia cardiaca congestiva. 

Terpenos:

Son hidrocarburos complejos de forma general CnH2n-4, de la serie del isopreno, el que está formado por dos dobles enlaces y que unidos por cadenas orgánicas forman un grupo de compuestos con características propias y que determinan la variedad de los efectos terapéuticos que se presentan en las plantas que los contienen (Barba, 1997). Se encuentran en los aceites esenciales de las plantas. Sus estructuras guardan relación con el cimeno (para-metilisopropilbenceno) por formar una molécula derivada de la condensación de dos isoprenos (Barba, 1997).

5.5

Cromatografía

Es un método de separación en el que los componentes se distribuyen en dos fases, la estacionaria y la fase móvil, ésta se va incorporando a la primera por efecto de capilaridad para la detección de las sustancias. La fase estacionaria puede ser sólida o líquida, mientras que la fase móvil puede ser líquida o gaseosa. (Celis et al,. 2008). Existen diferentes técnicas cromatografías como:

5.5.1 Cromatografía de Capa Fina.

Esta técnica se ha utilizado en la separación y análisis de varios compuesto que se encuentran en una muestra que no sean volátiles, para ello es necesario utilizar Silica Gel como fase estacionaria y un sistema de disolventes pertinentes para cada ensayo el cual es la fase móvil. Las separaciones se hacen en base a distintos procesos como adsorción, reparto, intercambio iónico y diferencia en el tamaño de las moléculas, lo que le confiere 24

cierta ventaja frente a otras técnicas cromatográficas, puesto que es más rápida y la muestra se difunde menos. La relación entre las distancias recorridas por el eluyente desde el punto de siembra se conoce como Rf, éste tiene un valor constante para cada compuesto dependiendo de varias condiciones (adsorbente, disolvente, temperatura, entre otras), (Castillo, et al 2007). Para calcular el Rf se utiliza la siguiente relación: Rf = distancia recorrida por el compuesto (X) / distancia recorrida por el eluyente (Y) Para revelar las placas, se puede utilizar un indicador absorbente de luz UV o compuestos como el yodo.

25

6

Metodología

Localización:

El proyecto se desarrolló en el campus de la Fundación Universitaria Internacional del Trópico Americano (Unitrópico) en el municipio de El Yopal, departamento de CasanareColombia.

6.1

FASE 1. EVALUACIÓN DE LAS CARACTERÍSTICAS MORFOMÉTRICAS DE LA HOJA CILANTRÓN CON RESPECTO AL SUSTRATO UTILIZADO

6.1.1 Preparación de sustratos.

Los sustratos implementados fueron: Bocaschi más suelo en una relación 1/1, cascarilla de arroz quemada más suelo en una relación 1/1 y suelo. 

Elaboración de Bocaschi/Suelo.

El Bocaschi se elaboró utilizando los elementos mencionados en la tabla 4, el periodo de maduración fue de 25 días volteando cada dos días. (Shintani, 2000), para lograr el sustrato Bocaschi/Suelo 1:1 se tomaron 5 sacos de Bocaschi y se mezclaron con 5 sacos de suelo. 

Tamo Quemado/ Suelo

El Tamo Quemado/Suelo 1:1 se realizó tomando 5 sacos del producto suministrados por la empresa “Arroz Diana” y mesclados con 5 sacos de suelo tomados del campus universitario donde se realizó el proyecto.

26

Tabla 4: Materiales usados para la elaboración de Bocaschi. Material

Cantidad

Melaza.

2 kg.

Tierra.

3 sacos

Estiércol.

3 sacos

Tamo de arroz.

1 ½ sacos

Levadura.

½ lb.

Pasto picado.

1 saco

Hojarasca de fina.

½ saco

Leche fermentada.

1 botella

Agua.

Según prueba de capacidad de campo

Fuente: (Shintani, 2000)

6.1.2 Implementación del cultivo 

Eras de germinación:

Las eras de germinación fueron construidas en forma rectangular con medidas de 1 m de ancho por 2 m largo a nivel del suelo, direccionando aguas de escorrentía para evitar encharcamiento. Se realizaron 2 repeticiones por cada sustrato, es decir 6 eras de germinación en total.

6.1.3 Rizomas:

Los rizomas fueron recolectados de la zona silvestre del municipio de Tamara ubicado a 100 km. de Yopal, vereda Isabeles, finca Miralindo, la longitud de los rizomas seleccionados totalmente podados y sin tallo floral osciló de 8 a 10 cm.

27

6.1.4 Siembra de los rizomas:

Se sembraron 45 unidades en cada una de las eras de germinación a una distancia de 20 cm entre hileras y plantas según lo recomendado por (Alvarado., et al 1999), con un total de 270 plantas.

6.1.5 Toma de datos:

La recolección de datos se hizo dos veces a la semana midiendo las variables: longitud y ancho de la hoja (en centímetros) usando un pie de rey digital y número de hojas/planta. El tiempo trascurrido para la toma de los datos fue de dos meses a partir del día en el que se hizo la siembra, tomando el ejemplo de (Sosa, 2006) quien realizó un estudio en Cilantrón con características semejantes en Costa Rica.

6.1.6 Mantenimiento del cultivo

Según Alvarado et al., 1999 los cuidados en el cultivo de Cilantrón son: 

El cultivo se debe mantener totalmente libre de plantas que generen competencia.



Al aparecer la floración es indispensable eliminarla, para mantener calidad y producción en las hojas.



Evitar el encharcamiento



Eliminar las hojas que cumplan su siclo vital.

6.1.7 Diseño experimental:

Se diseñaron 2 tratamientos (Bocaschi/Suelo, Tamo Quemado/Suelo) y el testigo Suelo, con dos replicas cada uno, para los cuales se analizó el cambio morfométrico de la 28

hoja (longitud, ancho y número de hojas), la siembra se hizo utilizando el método de propagación por rizomas. La tabla 4 representa el diseño experimental.

Tabla 5: Arreglo experimental para el análisis de los cambios Morfométricos de la planta con respecto a cada uno de los tratamientos. C. MORFOMETRICOS

B/S

TQ/S

/SUSTRATOS

S (PRUEBA CONTROL)

L. de hoja

L.H/(B/S)

L.H/(TQ/S)

L.H/S

A. de hoja

A.H/(B/S)

A.H /(TQ/S)

A.H /S

N. de hojas

N.H/(B/S)

N.H /(TQ/S)

N.H /S

Fuente: Autor. Donde los sustratos y las repeticiones son definidos así: 

B/S: Bocaschi y Suelo en relación 1/1.



TQ/S: Cascarilla de Arroz quemado y Suelo en relación 1/1.



S: Suelo como prueba control.



L.H: Longitud de hoja



A.H: Ancho de la hoja



N.H: Número de hojas

Descripción de los tratamientos: 

Tratamiento 1: L.H/(B/S), A.H/(B/S), N.H/(B/S).



Tratamiento 2: L.H/(TQ/S), A.H /(TQ/S), N.H /(TQ/S).



Tratamiento 3: L.H/S, A.H /S, N.H /S.

6.1.8

Análisis Estadístico:

El análisis estadístico se efectuó usando el programa Statgraphics Centurión, a través de un análisis de varianza ANOVA bajo un nivel de significancia del 95% (0,05). Así 29

mismo, para identificar el grado de interacción entre los tratamientos se usaron las pruebas de Tukey y Dunnett, este último para comparar resultados entre tratamientos y testigo.

6.2

FASE 2: IDENTIFICACIÓN PRELIMINAR DE METABOLITOS SECUNDARIOS

6.2.1 Recolección de la muestra:

Se recolectaron hojas verdes de Cada uno de los tratamientos, se lavaron con abundante agua y se secaron a temperatura ambiente para mantener sus condiciones naturales intactas.

6.2.2 Extracción:

Se realizó una extracción acuosa, a partir de 50 g de hojas verdes por cada uno de los sustratos, se cortaron en trozos de 0,5 cm y se depositaron en un vaso de precipitado, luego se mezclaron con 200 ml de agua destilada y se dejaron remojar por 24 h. Al transcurrir este tiempo, se trituraron en una licuadora durante 30 segundos y la solución se filtró dos veces a través de papel de filtro Nº 1. (Quevedo, et al, 2010).

6.2.3 Pruebas Preliminares para identificar Metabolitos Secundarios:

Estas pruebas se realizaron para identificar posibles familias de compuestos presentes en el extracto. 

Alcaloides:

Una porción del residuo fue disuelta en ácido clorhídrico diluido, se agito y se filtró hasta que el filtrado fue totalmente trasparente. El filtrado se ensayó con los reactivos para alcaloides; Mayer, Dragendorff. Se consideró como positivo las pruebas en las que apareció un precipitado (Scotti, 2013). 30



Saponinas

Ensayo con agua caliente: una porción del residuo se colocó en un tubo de ensayo, para disolverlo se agregó agua caliente (40 °C), se dejó reposar durante 15 a 30 minutos y luego se agito manualmente durante 1 a 2 minutos. La aparición de espuma con apariencia de panal de abeja se consideró positiva. (Scotti, 2013) 

Taninos

Se disolvió en agua una porción del residuo, se filtró y se tomaron alícuotas de un mililitro para las pruebas con cloruro férrico. Se consideró positiva la aparición de un precipitado (Scotti, 2013). 

Flavonoides

Shinoda: a un tubo con 1 ml de extracto diluido se le agrego un trocito de viruta de magnesio y 5 gotas de ácido clorhídrico concentrado. La aparición de colores que van de rojo a magenta indica la presencia de una flavanona o dihidrofalvanol (Scotti, 2013). 

Glucósidos cardiotónicos y lactosas sesquiterpenicas:

Baljet: A dos o tres mililitros del extracto se le agregaron 3 o cuatro gotas del reactivo, siendo positivo si se observa una coloración anaranjada o roja oscura. (Scotti, 2013). 

Terpenos:

Con 1 ml de cloroformo, se disolvió una porción de extracto acuoso, inmediatamente después se agregó 1 ml de ácido acético, haciéndolo resbalar por las paredes del tubo y se dejó reposar en frio. La prueba se considera positiva si hay aparición de colores rojo, verde,

31

rosa, purpura o azul en la inter fase, cuando a esta solución se le agrega 1 o 2 gotas de ácido sulfúrico concentrado (Barba, 1997).

6.2.4 Cromatografía de capa fina:

Para determinar la presencia de terpenos (monoterpenos, sesquiterpenos y fenilpropanos) en el extracto acuoso, se utilizó como fase estacionaria la silica gel 60 f 254 soporte de aluminio, con un frente de recorrido de 55 mm y 5 sistemas disolventes los cuales fueron: a) benceno-acetato de etilo 9:1, b)benceno-acetato de etilo 95:5, c)cloroformo-benceno 75:25, d) cloroformo-etanol-ácido acético 94:5:1, e) cloroformobenceno 1:118,19. (Martínez, 2003). Los resultados se evaluaron usando luz ultravioleta.

32

7

Resultados.

El estudio se realizó bajo las condiciones ambientales del municipio de YopalCasanare, Colombia, donde se tiene un comportamiento climático monomodal con un periodo de lluvia bien marcado. El desarrollo del proyecto se efectuó desde Mayo hasta Julio en plena temporada de lluvias (ver anexo D), las condiciones básicas usadas para el manejo del cultivo en los diferentes tratamientos son: disposición solar 50% usando polisombra, buena infiltración del terreno, plateo constante para eliminar malezas, delimitación del área de estudio, siembra de rizomas con características semejantes (plántulas sin presencia de ataques de patógenos, sin deficiencia de algún elemento esencial y sin presencia del tallo floral) y distancia de siembra entre surcos y calles de 20 cm, de acuerdo a lo recomendado por Alvarado et al (1999).

7.1

Evaluación de las características Morfométricas de la hoja.

Las características morfométricas evaluadas para la parte comercial de la planta (hoja) permiten valorar los componentes de rendimiento.

7.1.1 Longitud de hoja del Eryngium foetidum L.

La longitud de la hoja con respecto al sustrato de siembra se evaluó en dos sustratos orgánicos Bocaschi/Suelo, Tamo Quemado/Suelo y el testigo (Suelo). Se efectuaron 16 tomas, dos veces cada semana, tal como describe Sosa (2006). En la figura 1, se observa el comportamiento en longitud de la hoja, evidenciando un crecimiento mayor en el testigo (Suelo), con respecto a los demás sustratos, de la semana uno a la seis, se supone que dicho efecto se dio porque no se alteraron las condiciones iniciales del sustrato, a diferencia de los demás tratamientos, se presume que durante este periodo de tiempo, se presenta una interacción de los dos componentes de los sustratos de estudio, en consecuencia se generan sus características físicas, químicas y biológicas finales. 33

Sin embargo, después del día 18, las plantas en el sustrato Bocaschi/Suelo, presentan un crecimiento mayor con respecto al tratamiento Suelo y al Tamo Quemado/Suelo. En el día 41 correspondiente a la semana 6 se observa una variabilidad en dicho parámetro para los tres tratamientos, esto debido al periodo de floración. En la día cuarenta y ocho correspondiente a la semana siete, ocurre una alteración para los tres tratamientos, es posible que este cambio se dé por un incremento del periodo de lluvias (ver anexo D), lo cual facilitaría la disponibilidad de los nutrientes para las plantas y se ve reflejado en el crecimiento de sus hojas. Se puede observar un crecimiento constante y mayor de las hojas en Bocaschi/Suelo (figura 1) comparada con el sustrato testigo (Suelo) después del día 18; el crecimiento de la hoja en el sustrato Tamo Quemado/Suelo, muestra un incremento constante pero menor en comparación con el testigo (Suelo), debido posiblemente a la baja capilaridad ascensional (capacidad de un sustrato de succionar agua de abajo hacia arriba) y la baja humectabilidad (facilidad con que un sustrato logra quedar impregnado con agua) (Calderón, 2002), teniendo como resultado la posible tardía regulación hídrica en la zona radicular de las plantas, por ende, el crecimiento de la planta se retrasa y/o decae. De tal forma se puede establecer que el sustrato orgánico Bocaschi/Suelo presenta mejores resultados en la longitud de hoja. Para Agüero et al (2014) y Martínez (2001), los abonos orgánicos fermentados como el Bocaschi realizan aportes de nitrógeno, fosforo, potasio, etc. para el crecimiento de las plantas, así mismo, mejora la retención de humedad, lo que podría justificar el efecto del tratamiento Bocaschi/Suelo en este estudio. Dicho crecimiento de las hojas en el tratamiento de Bocaschi/Suelo se debe a los altos contenidos de nitrógeno en este sustrato; de acuerdo con Martínez et al (2013) y Santiago (2001), las hojas del Cilantrón (parte comercial de la planta) usan el nitrógeno como medio de estimulación para el crecimiento vegetativo. Pero dichos autores comentan que no solo el nitrógeno realiza aportes para obtener productividad en el follaje, también elementos tales como el pentóxido de fósforo (𝑃2 𝑂5 ) y de óxido de potasio (𝐾2 𝑂) los cuales también están disponibles en dicho sustrato. Santos (2001) describe un promedio de crecimiento en la longitud de hoja de 13 cm., es así que el sustrato orgánico Bocaschi/Suelo con el resultado promedio en el día 55 (7.2 cm.) (Ver anexo A), presentó rendimiento inferior a lo descrito por este autor. 34

LONJITUD DE HOJA (cm)

8,0 7,0 6,0 5,0 4,0 3,0 2,0 1,0 0,0 1

4

7 11 14 18 24 28 31 35 37 41 44 48 51 55

Bocaschi / Suelo

DIAS Tamo Quemado / Suelo

Suelo (testigo)

Figura 1: Longitud de las hojas del Eryngium foetidum L; considerando que el valor máximo corresponde a 90 (unidades experimentales) por tratamiento. Fuente, autor.

7.1.2 Ancho de hoja del Eryngium foetidum L.

Este carácter morfométrico (figura 2), presenta similitud con lo observado en la longitud de la hoja, por lo tanto, se puede deducir que la floración y los posibles fenómenos (condiciones físicas, químicas y biológicas del sustrato, capilaridad ascensional, humectabilidad y periodo de lluvias) que afectan el crecimiento de la hoja, actúan directamente en el ancho de la misma. En el día 48, al igual que en longitud de la hoja, se ve variabilidad entre sustratos, sin embargo para este caso, se presenta un crecimiento menor en el Tamo Quemado/Suelo y el testigo (Suelo), mientras que en el sustrato Bocaschi/Suelo se mantiene y aumenta. Si se hace referencia en que esa variabilidad para el ancho de la hoja se dio por el periodo de lluvias (ver Anexo D), se puede mencionar que dicha alteración se produce por un lavado de los posibles nutrientes que actúan en dicho crecimiento, esto debido a la porosidad que genera el Tamo Quemado en el sustrato Tamo Quemado/Suelo, la mala humectabilidad y baja capilaridad, lo que aumenta la capacidad de infiltración de agua (Calderón, 2002). Por el contrario, la variabilidad que presenta el tratamiento Bocaschi/Suelo sobre la el día 48 podría explicarse con lo sugerido por Agüero et al (2014) y Jaramillo (2002) quienes describen que este abono orgánico retiene la 35

humedad gracias al mejoramiento de la textura, contenido de materia orgánica y composición de la fracción mineral.

ANCHO DE LA HOJA (CM).

3,5 3,0 2,5 2,0 1,5 1,0 0,5 0,0 1

4

7

11 14 18 24 28 31 35 37 41 44 48 51 55 DIAS.

Bocaschi / Suelo

Tamo Quemado / Suelo

Suelo (testigo)

Figura 2: Ancho de las hojas de Eryngium foetidum L; considerando que el valor máximo corresponde a 90 (unidades experimentales) para tratamiento. Fuente, autor.

7.1.3 Número de hoja / Planta del Eryngium foetidum L.

Esta variable presenta el mismo comportamiento descrito para longitud y ancho de la hoja (días 18 y 48) lo que confirma que los fenómenos anteriormente mencionados actúan directamente en la producción de hojas por planta. En la figura 3, se representa esta variación. Sin embargo cabe resaltar un cambio importante que se presenta desde el día 35 entre los sustratos, donde el testigo y el sustrato Tamo Quemado/Suelo muestran un número constante de hojas hasta el final de la toma de datos, mientras en el sustrato Bocaschi/Suelo se evidenció un aumento para dicha variable. Es importante mencionar que las hojas que alcanzan la madurez tienden a morir, por lo que se deben eliminar de la constante del muestreo, aunque consecutivamente, existe una renovación foliar. Santos (2001), plantea que si una planta de Cilantrón tiene de 7 a 10 hojas por individuo, se le considera una planta adulta, por ende, una planta en producción de material 36

vegetal, analizando la producción de hojas para el mejor tratamiento (Bocaschi/Suelo) este tiene como promedio 8 hojas por planta lo que indica que se encuentra en el rango mencionado por dicho autor.

NUMERO DE HOJA / PLANTA.

9,0 8,0 7,0 6,0 5,0 4,0 3,0 2,0 1,0 0,0 1

4

7

11 14 18 24 28 31 35 37 41 44 48 51 55 DIAS.

Bocaschi / Suelo

Tamo Quemado / Suelo

Suelo (testigo)

Figura 3: Número de Hojas por planta del Eryngium foetidum L; considerando que el valor máximo corresponde a 90 (unidades experimentales) por tratamiento. Fuente, autor.

7.1.4 Comparación de tratamientos

La producción comercial del Cilantrón está determinada por la calidad de la hoja, en la figura 4, se pueden comparar los tratamientos con las diferentes variables morfométricas (longitud, ancho y número de hoja). El resultado arrojado en el desarrollo de este proyecto, demuestra que el tratamiento Bocaschi/Suelo pude considerarse como el mejor sustrato para la producción de la hoja de Cilantrón (Eryngium foetidum L), debido al contenido de materia orgánica, retención de humedad por mejoramiento de la textura y composición de la fracción mineral.

37

CRECIMIENTO EN cm.

4,5 4,0 3,5 3,0 2,5 2,0 1,5 1,0 0,5 0,0 B LONGITUD DE LA HOJA

TQ ANCHO DE LA HOJA

S NÚMERO DE HOJAS

Figura 4: Comparación entre tratamientos. Considerando que el valor máximo corresponde a 90 (unidades experimentales) por tratamiento. Fuente, autor.

7.2

Análisis estadístico.

Para el análisis estadístico se realizó un análisis de varianza ANOVA, de la cual la tabla 5 responde a las diferencias estadísticas, así mismo, para la comparación de medias, se realizó prueba tukey. Con lo anterior, las hipótesis fueron planteadas de la siguiente manera: Ho o hipótesis alternativa= μ1 = μ2 = μ3 = μ4 = μ5 Ha o hipótesis nula = μ1≠ μ2≠ μ3≠ μ4≠ μ5

La tabla 5, muestra el análisis de varianza ANOVA, donde se evidencia la diferencia significativa del cambio morfométrico de la hoja de Cilantrón con respecto a los sustratos, esto evaluado a partir del testigo, es por esto que resulta una probabilidad (valor P) P = 0,0000, puesto que es menor a 0,05 (Nivel de confianza de 95%).

38

Tabla 6: Análisis de Varianza para Morfometría Vegetal- suma de cuadrados tipo III Fuente

Suma de

Gl

Cuadrados

Cuadrado

Razón-F

Valor-P

Medio

EFECTOS PRINCIPALES A:CAMBIO MORFOMETRICO

82,8168

2

41,4084

32,57

0,0000

124,907

2

62,4536

49,13

0,0000

AB

24,0178

4

6,00444

4,72

0,0013

RESIDUOS

171,623

135

1,27128

TOTAL (CORREGIDO)

403,365

143

DE LA HOJA B:SUSTRATOS INTERACCIONES

Todas las razones-F se basan en el cuadrado medio del error residual. Fuente: Autor (usando Statgraphics).

La tabla ANOVA descompone la variabilidad de Morfometría Vegetal de la hoja en contribuciones debidas a varios factores. Debido a que se ha escogido la suma de cuadrados Tipo III (por omisión), la contribución de cada factor se mide eliminando los efectos de los demás factores. Los valores-P prueban la significancia estadística de cada uno de los factores. El resultado de 3 valores-P menores que 0,05, indica que estos factores tienen un efecto estadísticamente significativo sobre MORFOMETRIA VEGETAL con un 95,0% de nivel de confianza.

La tabla 5 contiene los resultados de las comparaciones entre medias de los 2 tratamientos con el testigo, donde se demuestran las diferencias significativas del cambio morfológico de la hoja respecto a los sustratos, es decir, se rechaza la hipótesis nula y se acepta la hipótesis alternativa puesto que los sustratos afectan directamente el comportamiento de la planta. Debido a los resultados anteriores, se realizó una gráfica de comportamiento entre medias sobre la morfología vegetal de Eryngium foetidum L. (ver figura 5) con la prueba de Tukey de un nivel de confianza de 95%. donde se confirma la relación entre los sustratos y el cambio morfométrico sobre este proceso, arrojando que el sustrato Bocaschi/Suelo posee 39

un efecto positivo en los cambios morfométricos tales como longitud de hoja y número de hoja por planta (ver figura 5). Figura 5: Prueba de Tukey 95% de confianza graficando las interacciones entre el cambio morfométrico y los sustratos, para la evaluación de la Morfometría vegetal de las hojas de Eryngium foetidum L. Interacciones y 95,0% de Tukey HSD

MORFOMETRIA VEGETAL

4,9

SUSTRATOS BOCASHI / SUEL SUELO TAMO QUEMADO /

3,9 2,9 1,9 0,9 -0,1 ANC HOJA

LONG HOJA CAMBIO MORFOMETRICO

NUM HOJA

Fuente: Autor (usando Statgraphics).

7.3

Análisis de metabolitos secundarios.

Los metabolitos secundarios se encuentran distribuidos por toda la planta, estas sustancias gracias a su importancia industrial, han ocupado un espacio muy importante en el estudio de la química orgánica (Plazas, 2012) para esta investigación se tomaron las hojas, siendo estas la parte comercial del Cilantrón Eryngium foetidum L. para lo cual se realizaron pruebas preliminares colorimétricas con el objetivo de identificar la presencia de posibles familias de compuestos.

40

7.3.1 Pruebas colorimétricas preliminares en los extractos acuosos de las hojas de Eryngium foetidum L.

La figura 6 muestra el resultado positivo para taninos en los tres tratamientos (Bocaschi/Suelo, Tamo Quemado/Suelo y Suelo) presentando precipitado de color pardo verdoso.

Figura 6: Pruebas preliminares positivas para Taninos donde existe formación de precipitado de color pardo verdoso para los tres tratamientos (B/S, TQ/S, S) Fuente, autor.

Los Glucósidos Cardiotónicos y Lactosas Sesquiterpenicas son positivos cuando presentan una coloración anaranjada; la figura 7 muestra el resultado positivo para los tres tratamientos, (Bocaschi/Suelo, Tamo Quemado/Suelo y Suelo).

41

Figura 7: Pruebas preliminares positivas para Glucósidos Cardiotónicos y Lactosas Sesquiterpenicas, coloración anaranjada para los tres tratamientos (B/S, TQ/S, S.) Fuente, autor. En la figura 8 se aprecia el resultado negativo en la prueba preliminar para identificacion de alcaloides puesto que no se evidencia ningun presipitado despues de realizada la prueva con los reactivos de Mayer, Dragendorff. En los tres tratamientos estudiados (Bocaschi/Suelo, Tamo Quemado/Suelo y Suelo).

Figura 8: Prueba preliminar negativa para Alcaloides en los tres tratamientos (B/S, TQ/S, S) no se evidencia precipitado. Fuente, autor.

Prueba preliminar negativa para flavonoides representado en la figura 9 puesto que no muestra una coloración roja. Representada en los tres tratamientos estudiados (Bocaschi/Suelo, Tamo Quemado/Suelo y Suelo). 42

Figura 9: prueba preliminar negativa para flavonoides en los tres tratamientos, (B/S, TQ/S, S). Fuente, autor.

La figura 10 muestra la presencia de saponinas en la sustancia, dando positiva para los tratamientos Bocaschi/Suelo y Tamo Quemado/Suelo donde se aprecia la presencia de espuma en forma de panal de abeja, para el tratamiento Suelo esta prueba preliminar es negativa.

Figura 10: prueba preliminar para identificación de saponinas; positiva para los tratamientos (B/S, TQ/S), negativa para el tratamiento Suelo. Fuente, autor. Prueba preliminar para terpenos está representado en la figura 11 del cual manifiesta resultados positivos en todos los tratamientos, puesto que muestra una coloración roja., verde, anaranjada o purpura. Representada en los tres sustratos estudiados (Bocaschi/Suelo, Tamo Quemado/Suelo y Suelo). 43

Figura 11: Prueba preliminar para identificación de terpenos; positiva para los tratamientos (B/S, TQ/S y S). Fuente, autor.

Las pruebas colorimetrías realizadas para la identificación de metabolitos secundarios, demuestran la posible presencia de metabolitos como Terpenos, Taninos, Glúcidos Cardiotónicos y Lactosas Sesquiterpenicas en las hojas de las plantas sembradas en los dos tratamientos y el testigo. Así mismo, se determinó para todos los tratamientos un resultado negativo para metabolitos como Flavonoides y Alcaloides. En el caso de la identificación de las Saponinas, solo los tratamientos de Bocaschi/Suelo y Tamo Quemado/Suelo arrojaron resultados positivos, caso contrario en el tratamiento testigo (Suelo), donde este metabolito no se encontró. En la tabla 6, se presenta el resumen de estos resultados. Estos resultados permiten confirmar que el tipo de sustrato y la calidad nutricional del suelo influyen en la producción de metabolitos secundarios en una especie vegetal. Plazas (2012) en su estudio sobre la especie H. bonplandii de la familia apiaceae (la misma familia vegetal del Eryngium foetidum L.), identificó la presencia de metabolitos secundarios por medio de pruebas colorimetrías preliminares (con los mismos reactivos), encontrando Glúcidos y Taninos; lo que coincide con los resultados de esta investigación. Por el contrario la prueba realizada por dicho autor en la identificación de saponinas fue negativa, mientras que para el Cilantrón fue positiva en los tratamientos Bocashi / Suelo y Tamo Quemado/Suelo con excepción del tratamiento Suelo. Dicha variabilidad se puede 44

dar gracias a las diferentes concentraciones de saponinas expuestas en las plantas cultivadas en diferentes sustratos de acuerdo a lo expuesto por (Lincoln & Zeiger, 2006).

Tabla 7: Prueba colorimétrica preliminar en los extractos acuosos de las hojas de Eryngium foetidum L. sobre los tratamientos Bocaschi /Suelo, Tamo Quemado / Suelo y Suelo (Testigo). PRUEBA QUIMICA

B/ S +

Alcaloides.

TQ / S -

+

X

+

X

Saponinas.

X

X

Taninos.

X

X

Flavonoides.

-

S (testigo)

X

X X

X X

X

Glucósidos Cardiotónicos y Lactosas Sesquiterpenicas

X

X

X

Terpenos

X

X

X

Fuente: Autor.

7.3.2 Cromatografía de capa fina para la identificación de terpenos.

El ensayo de separación por cromatografía de capa fina, permitió una identificación preliminar de compuestos terpenicos en el extracto obtenido para los tratamientos y el testigo. Se analizó la presencia de compuestos terpenicos por ser estos los componentes principales de los aceites esenciales en los tejidos vegetales. En el sistema Cloroformo – Benceno (75:25) (Figura 13), se observa una banda de separación para los sustratos Bocaschi/Suelo Y Tamo Quemado/Suelo, mientras que para el testigo no se presentó ninguna. El sistema Cloroformo – Benceno (1:1) (Figura 15) permitió la separación de una banda en los dos tratamientos y el testigo. En cada banda, se tomaron los respectivos Rf para su posterior comparación con la literatura. Estos valores Rf se encuentran en la tabla 9, los resultados resaltados en dicha tabla tienen comparación con otros autores. 45

Tabla 8: Valores RF para los tratamientos y los diferentes reactivos REACTIVOS

Rf B/S

TQ/S

S

0,73

0,85

0,80

0,62

0,60

0,60

Cloroformo - Benceno (75:25)

0,96

0,95

0,0

Cloroformo - Etanol – Acido

0,36

0,53

0,56

0,27

0,25

0,27

Benceno - Acetato de Etilo (9:1) Benceno - Acetato de Etilo (95:5)

Acetico (94:5:1) Cloroformo - Benceno (1:1)

Fuente: Autor.

La figura 12 muestra la cromatografía de Capa fina bajo el solvente Benceno-acetato de etilo (9:1) revelada en luz ultravioleta. Los puntos de la sustancia problema corresponden a los tratamientos de Bocaschi / Suelo (B/S), Tamo Quemado / Suelo (TQ/S) y Suelo (testigo) (S), dichos Rf no se les encontró respaldo bibliográfico, por lo que no se pudo hacer identificación.

B/S TQ/S

S

Figura 12: benceno- acetato de etilo (9:1). Fuente, autor. La figura 13 muestra la cromatografía de Capa fina bajo el solvente Benceno – Acetato de Etilo (95:5) revelada en luz ultravioleta. Los puntos de la sustancia problema corresponden a los tratamientos de Bocaschi/Suelo (B/S), Tamo Quemado/Suelo (TQ/S) y

46

Suelo (testigo) (S), dichos Rf no se les encontró respaldo bibliográfico, por lo que no se pudo hacer identificación. B/S TQ/S

S

Figura 13: Benceno-Acetato de Etilo, (95:5). Fuente, autor. La figura 14 muestra la cromatografía de Capa fina bajo el solvente Cloroformo – Benceno (75:25) revelada en luz ultravioleta. Los puntos de la sustancia problema corresponden a los tratamientos de Bocaschi / Suelo (B/S), Tamo Quemado / Suelo (TQ/S) y Suelo (testigo) (S).

Figura 14: Cromatografía de Capa fina bajo el solvente Cloroformo – Benceno (75:25). Fuente, autor.

La figura 15 muestra la cromatografía de Capa fina bajo el solvente Cloroformo – Etanol – Ácido Acético (94:5:1) revelada en luz ultravioleta. Los puntos de la sustancia problema corresponden a los tratamientos de Bocaschi / Suelo (B/S), Tamo Quemado / Suelo (TQ/S) y Suelo (testigo) (S). 47

B/S TQ/S

S

Figura 15: Cloroformo – Etanol – Ácido Acético (94:5:1). Fuente, autor.

En la figura 16 se encuentra la cromatografía de Capa fina bajo el solvente Cloroformo– Benceno (1:1) revelada en luz ultravioleta. Los puntos de la sustancia problema corresponden a los tratamientos de Bocaschi / Suelo (A), Tamo Quemado / Suelo (B) y Suelo (testigo) (C).

Figura 16: Cromatografía de Capa fina bajo el solvente Cloroformo – Benceno (1:1). Fuente, autor. Pérez (2011) y Pereira et al., (2013) identificaron terpenos en la familia fabáceae con un sistema solvente similar (Cloroformo puro y Cloroformo – Ácido Acético – Metanol – Agua (60:32:12:8)) reportando un Rf = 0,29, que corresponde a fenilpropano más específicamente (isoeugenol); comparando los datos obtenidos en esta investigación se 48

podría afirmar que compuestos terpenicos están presentes en los extractos acuosos de las hojas de Eryngium foetidum L para los tratamientos Bocaschi /Suelo y Suelo (testigo) ya que se obtuvo un Rf = 0,27 (tabla 9) . La identificación de los metabolitos secundarios encontrados en la planta tanto en la prueba preliminar como en la cromatografía de capa fina puede sugerir la presencia de compuestos terpenicos bajo el cultivo en sustrato Bocaschi/Suelo, al mismo tiempo se evidencia un mejor desarrollo de la planta, lo que indica que este sustrato generó mejores resultados en el desarrollo fisiológico de la planta y de igual manera influye en la composición química de las especie vegetal.

49

8 

CONCLUSIONES.

Los cambios morfológicos de la parte comercial del Cilantrón Eryngium foetidum L. (hoja) se ve influenciada por el tipo de sustrato y la disponibilidad de agua para la planta.



Las características morfometricas evaluadas (longitud, ancho y número de hojas) presentaron un mejor comportamiento en el tratamiento de Bocaschi/Suelo, esto debido a las altas concentraciones de elementos esenciales tales como nitrógeno, fosforo y potasio, así como alta retención de humedad, mejoramiento de la textura, contenido de materia orgánica y composición de la fracción mineral de este sustrato.



El sustrato Tamo Quemado/Suelo, no constituyó un soporte adecuado para el cultivo de Cilantrón, esto puede deberse a la baja capilaridad ascensional, la baja humectabilidad y la alta infiltración de la fracción de Tamo adicionada al suelo.



El análisis estadístico ANOVA arrojó diferencias significativas en todos los tratamientos y cambios morfométricos de la hoja, lo que significa que estadísticamente existe una interacción de estos factores. Al realizar la prueba Tukey (con un nivel de significancia del 95%), se determinó que en dicha interacción el mejor tratamiento fue el sustrato Bocaschi/Suelo, con mejores resultados en longitud de hoja y el número de hoja por planta.



Se encontraron terpenos, taninos, glúcidos cardiotónicos y lactosas sesquiterpenicas, en las plantas cultivadas en todos tratamientos y ausencia de saponinas en las plantas sembradas en el testigo, con esto se confirma que la producción de metabolitos secundarios se ve influenciada por la calidad de suelo y las condiciones de cultivo.



La cromatografía de capa fina se realizó específicamente para comprobar la presencia de compuestos terpenicos, que son los componentes principales de los aceites esenciales, siendo estos de gran interés en las plantas aromáticas. En este ensayo se identificó la posible presencia de terpenos y fenilpropano en los tratamientos Bocaschi/Suelo y el testigo Suelo.

50

9 

RECOMENDACIONES.

Los metabolitos secundarios del Cilantrón Eryngium foetidum L. encontrados en este estudio son muy pocos; se recomienda realizar investigaciones con grados de complejidad más altos para cuantificar y cualificar la presencia de dichos compuestos.



Usar otros tipos de sustratos orgánicos tales como abonos verdes, sustratos a base de residuos orgánicos de otros cultivos, combinaciones entre sustratos y suelos de la región Orinoquía, con el propósito de buscar mejores resultados, aumentado la posibilidad de obtener un mayor rendimiento y productividad del follaje.



Se recomienda aumentar el periodo de análisis para lograr un grado más alto de confiabilidad de resultados, y con ello, observar el comportamiento del Eryngium foetidum L. dentro de un cultivo, teniendo en cuenta la duración del ciclo biológico y productivo de esta especie.

51

10 Bibliografía Almaraz, N. Ávila, J. Delgado, E. Naranjo, N, & Herrera, J. (2000), El Metabolismo Secundario de las Plantas, un Concepto Nuevo. UBAMAPI. 44(1). 33-42 Alvarado Sojo, Y., Sanabria Ujueta, C., & Villalobos Calderón, J. (1999). El cultivo de culantro coyote (Eringyum foetidum L., Apiaceae) para exportación. Costa Rica: Heredia (Costa Rica). Barba, J. (1997). Introduccion al Laboratorio de Fitoquimica. Iztapalapa: Universidad Autonoma Metropolitana. Calderon, S. F. (2002). La Cascarilla de Arroz "Caolinizada"; Una Alternativa Para Mejorar la Retencion de Humedad Como Sustrato Para Cultivos Hidroponicos. Bogota D. C. Febles, N. Á. (2010). La Tierra Viva: Manual de Agricultura Ecológica. Puerto Rico: Fideicomiso de Conservación de Puerto Rico. García, A. & Pérez, E. (2009). Metabolismo Secundario en Plantas. Rev. Serie Fisiologia Vegetal. 21(3). 119-145 Guerra, R. L. (1999). Manejo poscosecha de culantro coyote (Eryngium foetidum L.). Guasimo, Costa Rica. Gutierrez, D. Q. (2010). Alternativas Tecnoligicas Para el Uso de la Cascarilla de Arroz Como Combustible. Santiago de Cali. Lincoln, T. & Zeiger, R. (2006). Secundary and Plan Defense. En T. &. Lincoln, Plant Physicology (pág. Cap 13). Fourth Edition. Martínez, a. (2003). Aceites Esenciales . Medellin . Martinez, R. M. (2001). Identificación de plantas promisorias en el mercado medicinal costarricense. Guacimo- Costa Rica. Mol, J & Koes, R. (1998). How Genes Paint Flowers and Seeds. Trends in Plant Science. 3(1). 212-217 Morales, J. B. (2013). Culantro Organico. Proyecto de Agricultura Orgánica. Estacion Experimental Agricola de Lajas. Departamento de Cultivos y Ciencias Agroambientales. Morales, P. j. (2011). Herbs and leaf crops: Cilantro, broadleaf cilantro and vegetable amaranth. Puerto Rico. 52

Noreña, J. E. (2013). Tecnología Para El Cultivo De Tomate Bajo Condiciones ProtegidaS. Bogota D.C: Rey Naranjo. Olachea, J. E. (2010). Cilantro de Monte Eryngium foetidum L. San Nicolas . Picó, B. &. (2000). Minor crops of Mesoamerica in early sources (II). Herbs used as condiments. Genet- ic Resources and Crop Evolution. Pimenov, M. G. (1993). The genera of the Umbelliferae. Wishtable: Wishtable Litho. Quevedo, O., Crozzoli, R., & Perichi, G. (2010). Uso de Extractos Acuosos y Etanólicos de Plantas Para el Control de Meloidogyne Enterolobii (Nematoda: Tylenchida) . Venezuela. Santiago, L. (2001). La Produccion de Recao o Culantro (Eryngium foetidum L.) En Puerto Rico. Universidad de Puerto Rico. Puerto Rico: Colegio de Ciencias Agricolas. Estacion Experimental Rio Piedras. Santos, L. R. (2001). La producción de recao o culantro (Eryngium foetidum L.) en Puerto Rico. Puerto Rico: Universidad de Puerto Rico, Recinto Universitario de Mayagüez, Colegio de Ciencias Agrícolas, Estación Experimental Agrícola. Santos, L. R. (2001). La Produccion De Recao O Culantro (Eryngium foetidum L.) En Puerto Rico. Puerto Rico: Nuevo Mundo. Sepúlveda, G. Porta, H & Rocha, M (2003). La Participación de los Metabolitos Secundarios en la Defensa de las Plantas. Rev. Mex. Fitopatol. 21(3). 355-363 Scotti, A. (2013). Métodos recomendados para la identificación y el análisis de las piperazinas en los materiales incautados. Nueva York. Seaforth, C. (1988). Natural products in Caribbean folk Medi- cine. University of the West Indies, Trinidad. Sosa, E. E. (2006). Evaluación de la Producción de Culantro Coyote (Eryngium Foetidum L.) En Tres Ambientes Diferentes y dos Tipos de Fertilización en la Zona Atlántica de Costa Rica. . Guacimo , Costa Rica . Ugalde, J. J. (2012). Cambio De Uso De Suelo Y Cobertura. Mexico. Vargas, R. G. (2013). Partes Principales del Vivero. Bogota.

53

11 Anexos. 

Anexo A: Datos promedio Bocaschi/Suelo. Tabla 9: Datos promedio Bocaschi/Suelo

Bocaschi/Suelo

LON. HOJA

R1 ACH. HOJA

N-° DE HOJAS

LON. HOJA

R2 ACH. HOJA

N-° DE HOJAS

PROMEDIO GENERAL LON. ACH. N-° DE HOJA HOJA HOJAS

16-may

1,1

0,4

1,1

1,3

0,4

1,1

1,2

0,4

1,1

20-may

1,5

0,5

1,6

1,8

0,6

1,6

1,7

0,6

1,6

23-may

1,6

0,5

1,5

2,2

0,6

1,6

1,9

0,6

1,5

27-may

1,8

0,6

1,8

2,6

0,6

1,9

2,2

0,6

1,9

30-may

1,9

0,6

1,9

2,9

0,7

2,2

2,4

0,7

2,0

03-jun

2,1

0,7

2,3

3,3

0,8

2,9

2,7

0,7

2,6

06-jun

2,5

0,8

2,7

3,8

1,1

3,5

3,2

0,9

3,1

10-jun

3,0

0,9

3,3

4,4

1,4

3,8

3,7

1,1

3,6

13-jun

3,3

1,2

3,6

5,0

1,8

4,5

4,2

1,5

4,1

17-jun

3,7

1,4

4,2

5,6

2,2

5,3

4,7

1,8

4,7

20-jun

4,0

1,7

4,5

5,9

2,4

5,6

4,9

2,1

5,0

24-jun

4,2

1,9

4,8

6,1

2,7

5,9

5,2

2,3

5,4

27-jun

4,3

2,0

5,2

6,2

2,8

6,3

5,2

2,4

5,8

01-jul

4,6

2,3

5,7

6,5

3,1

6,8

5,6

2,7

6,3

04-jul

5,5

2,3

5,8

7,3

3,1

6,9

6,4

2,7

6,4

08-jul

6,3

2,6

7,5

8,2

3,3

8,6

7,2

3,0

8,0

Fuente: Autor.

54



Anexo B: Promedio de datos para el sustrato Tamo Quemado/Suelo.

Tabla 10: Promedio de datos para el sustrato Tamo Quemado/Suelo.

T. quemado

LON. HOJA

R1 ACH. HOJA

N-° DE HOJAS

LON. HOJA

R2 ACH. HOJA

N-° DE HOJAS

PROMEDIO GENERAL LON. ACH. N-° DE HOJA HOJA HOJAS

16-may

0,5

0,2

0,5

0,5

0,3

0,6

0,5

0,3

0,5

20-may

0,9

0,3

0,6

0,9

0,3

1,0

0,9

0,3

0,8

23-may

0,8

0,3

0,6

0,8

0,3

1,1

0,8

0,3

0,8

27-may

0,6

0,2

0,4

0,9

0,3

1,2

0,8

0,2

0,8

30-may

0,7

0,2

0,6

1,0

0,4

1,2

0,8

0,3

0,9

03-jun

0,9

0,3

1,0

1,3

0,4

1,8

1,1

0,4

1,4

06-jun

0,8

0,2

0,7

1,3

0,4

1,7

1,0

0,3

1,2

10-jun

0,9

0,2

0,8

1,5

0,5

2,0

1,2

0,3

1,4

13-jun

0,8

0,3

0,8

1,8

0,7

2,1

1,3

0,5

1,4

17-jun

0,9

0,3

1,0

2,1

0,9

2,5

1,5

0,6

1,8

20-jun

0,8

0,4

0,9

2,3

1,1

2,5

1,6

0,7

1,7

24-jun

0,9

0,4

0,9

2,5

1,3

2,8

1,7

0,9

1,8

27-jun

0,9

0,4

0,9

2,6

1,3

2,8

1,7

0,9

1,8

01-jul

0,9

0,5

0,9

2,9

1,6

3,2

1,9

1,0

2,0

04-jul

1,2

0,5

1,3

3,5

1,8

3,2

2,4

1,2

2,3

08-jul

1,4

0,6

0,9

4,2

1,3

3,8

2,8

1,0

2,3

Fuente: Autor.

55



Anexo C: Promedio de datos para el sustrato Suelo (testigo). Tabla 11: Promedio de datos para sustrato Tamo Quemado/Suelo.

Suelo Tiempo 16-may 20-may 23-may 27-may 30-may 03-jun 06-jun 10-jun 13-jun 17-jun 20-jun 24-jun 27-jun 01-jul 04-jul 08-jul

R1 R2 LON. ACH. N-° DE LON. ACH. N-° DE HOJA HOJA HOJAS HOJA HOJA HOJAS 0,8 0,4 1,0 0,7 0,3 1,0 1,8 0,6 1,6 1,8 0,6 1,8 2,1 0,6 2,0 2,1 0,6 2,0 2,4 0,7 2,6 2,4 0,7 2,3 2,3 0,7 2,4 2,7 0,7 2,4 2,4 0,8 2,6 2,9 0,8 2,6 2,7 0,8 2,6 3,1 0,8 2,4 3,1 0,9 3,1 3,4 0,9 2,8 3,1 1,0 3,1 3,1 1,0 3,0 3,4 1,2 3,5 3,3 1,2 3,4 3,7 1,5 3,5 3,6 1,5 3,4 4,0 1,8 3,5 3,9 1,8 3,4 3,9 1,7 3,5 3,8 1,7 3,4 4,1 1,9 3,5 4,1 1,9 3,4 5,5 1,9 3,5 4,1 1,9 3,4 6,9 1,7 3,5 5,5 1,7 3,4 Fuente: Autor.

PROMEDIO GENERAL LON. ACH. N-° DE HOJA HOJA HOJAS 0,8 0,4 1,0 1,8 0,6 1,7 2,1 0,6 2,0 2,4 0,7 2,4 2,5 0,7 2,4 2,7 0,8 2,6 2,9 0,8 2,5 3,3 0,9 3,0 3,1 1,0 3,1 3,4 1,2 3,4 3,7 1,5 3,4 3,9 1,8 3,4 3,9 1,7 3,4 4,1 1,9 3,4 4,8 1,9 3,4 6,2 1,7 3,4

56



Anexo D: Datos climáticos de la estación meteorológica del centro UTOPIA universidad la Salle, El Yopal.

Tabla 12: Datos climáticos de la estación meteorológica del centro UTOPIA universidad la Salle, Yopal.

Date 16/05/2 014 16/05/2 014 16/05/2 014 16/05/2 014 16/05/2 014 16/05/2 014 16/05/2 014 16/05/2 014 16/05/2 014 23/05/2 014 23/05/2 014 23/05/2 014 23/05/2 014 23/05/2 014 23/05/2 014 23/05/2 014 23/05/2 014 23/05/2 014 27/05/2 014

Time 6:00 a. m. 6:15 a. m. 6:30 a. m. 6:45 a. m. 7:00 a. m. 7:15 a. m. 7:30 a. m. 7:45 a. m. 8:00 a. m. 6:00 a. m. 6:15 a. m. 6:30 a. m. 6:45 a. m. 7:00 a. m. 7:15 a. m. 7:30 a. m. 7:45 a. m. 8:00 a. m. 6:00 a. m.

Temp

Hi

Low

Out

Rain Solar

Out

Temp

Temp

Hum

22.1

22.1

22.0

97 759.4

0.00

0.0

25 0.54

28

22.3

22.3

22.1

97 759.5

0.00

0.0

33 0.71

42

22.6

22.6

22.3

97 759.7

0.00

0.0

56 1.20

67

22.8

22.8

22.6

97 759.8

0.00

0.0

90 1.94

104

23.2

23.2

22.8

97 760.0

0.00

0.0

90 1.94

102

23.1

23.2

23.1

96 760.2

0.00

0.0

97 2.09

113

23.4

23.4

23.1

96 760.2

0.00

0.0

136 2.92

142

23.4

23.4

23.4

96 760.3

0.00

0.0

146 3.14

151

23.7

23.8

23.4

96 760.3

0.00

0.0

167 3.59

186

22.7

22.7

22.6

90 757.4

0.00

0.0

14 0.30

21

22.7

22.7

22.7

91 757.6

0.00

0.0

22 0.47

23

23.1

23.1

22.7

90 757.7

0.00

0.0

54 1.16

70

23.7

23.7

23.1

90 757.9

0.00

0.0

106 2.28

123

24.4

24.4

23.7

90 758.1

0.00

0.0

155 3.33

176

25.5

25.5

24.5

87 758.3

0.00

0.0

196 4.21

211

26.9

26.9

25.7

82 758.4

0.00

0.0

260 5.59

281

28.0

28.0

26.9

80 758.4

0.00

0.0

311 6.69

336

28.8

28.8

28.1

76 758.6

0.00

0.0

361 7.76

383

22.8

22.8

22.7

98 759.9

1.40

9.8

0 0.00

0

Bar

Rain Rate

Rad.

Solar

Hi Solar

Energy

Rad.

57

27/05/2 014 27/05/2 014 27/05/2 014 27/05/2 014 27/05/2 014 27/05/2 014 27/05/2 014 27/05/2 014 30/05/2 014 30/05/2 014 30/05/2 014 30/05/2 014 30/05/2 014 30/05/2 014 30/05/2 014 30/05/2 014 30/05/2 014 03/06/2 014 03/06/2 014 03/06/2 014 03/06/2 014 03/06/2 014 03/06/2 014 03/06/2 014 03/06/2 014 03/06/2 014 06/06/2 014

6:15 a. m. 6:30 a. m. 6:45 a. m. 7:00 a. m. 7:15 a. m. 7:30 a. m. 7:45 a. m. 8:00 a. m. 6:00 a. m. 6:15 a. m. 6:30 a. m. 6:45 a. m. 7:00 a. m. 7:15 a. m. 7:30 a. m. 7:45 a. m. 8:00 a. m. 6:00 a. m. 6:15 a. m. 6:30 a. m. 6:45 a. m. 7:00 a. m. 7:15 a. m. 7:30 a. m. 7:45 a. m. 8:00 a. m. 6:00 a. m.

22.8

22.8

22.8

98 760.1

1.40

11.8

0 0.00

0

22.8

22.8

22.7

98 760.3

2.60

39.8

0 0.00

0

22.8

22.8

22.7

98 760.4

1.20

7.0

4 0.09

7

22.8

22.8

22.7

98 760.4

0.80

5.6

8 0.17

9

22.8

22.8

22.8

98 760.6

0.40

2.6

11 0.24

12

22.8

22.8

22.8

98 760.6

0.20

1.6

18 0.39

21

22.9

22.9

22.8

98 760.7

0.20

1.0

26 0.56

32

22.9

22.9

22.9

98 760.6

0.20

0.8

38 0.82

44

22.4

22.4

22.4

96 757.5

0.00

0.0

12 0.26

19

22.6

22.6

22.4

95 757.5

0.00

0.0

28 0.60

32

22.9

22.9

22.6

96 757.5

0.00

0.0

70 1.51

97

23.4

23.4

22.9

96 757.6

0.00

0.0

122 2.62

149

24.2

24.2

23.5

95 757.8

0.00

0.0

174 3.74

204

24.7

24.7

24.2

95 758.0

0.00

0.0

238 5.12

260

25.3

25.3

24.7

94 758.1

0.00

0.0

287 6.17

322

26.0

26.0

25.3

93 758.2

0.00

0.0

331 7.12

394

26.7

26.7

26.0

90 758.2

0.00

0.0

408 8.77

431

24.0

24.0

23.9

97 756.7

0.00

0.0

7 0.15

9

24.1

24.1

24.0

97 756.8

0.00

0.0

23 0.49

35

24.3

24.3

24.1

97 756.9

0.00

0.0

79 1.70

132

24.6

24.6

24.3

97 756.9

0.00

0.0

129 2.77

148

24.9

24.9

24.6

97 757.1

0.00

0.0

194 4.17

239

25.1

25.1

24.9

96 757.1

0.00

0.0

227 4.88

265

25.3

25.3

25.1

96 757.1

0.00

0.0

197 4.24

304

25.6

25.6

25.3

96 757.2

0.00

0.0

204 4.39

220

25.9

25.9

25.6

95 757.3

0.00

0.0

249 5.35

330

23.6

23.7

23.6

94 756.3

0.00

0.0

7 0.15

16

58

06/06/2 014 06/06/2 014 06/06/2 014 06/06/2 014 06/06/2 014 06/06/2 014 06/06/2 014 06/06/2 014 10/06/2 014 10/06/2 014 10/06/2 014 10/06/2 014 10/06/2 014 10/06/2 014 10/06/2 014 10/06/2 014 10/06/2 014 13/06/2 014 13/06/2 014 13/06/2 014 13/06/2 014 13/06/2 014 13/06/2 014 13/06/2 014 13/06/2 014 13/06/2 014 17/06/2 014

6:15 a. m. 6:30 a. m. 6:45 a. m. 7:00 a. m. 7:15 a. m. 7:30 a. m. 7:45 a. m. 8:00 a. m. 6:00 a. m. 6:15 a. m. 6:30 a. m. 6:45 a. m. 7:00 a. m. 7:15 a. m. 7:30 a. m. 7:45 a. m. 8:00 a. m. 6:00 a. m. 6:15 a. m. 6:30 a. m. 6:45 a. m. 7:00 a. m. 7:15 a. m. 7:30 a. m. 7:45 a. m. 8:00 a. m. 6:00 a. m.

23.7

23.7

23.6

94 756.4

0.00

0.0

27 0.58

35

23.9

23.9

23.7

94 756.5

0.00

0.0

40 0.86

44

24.0

24.1

23.9

94 756.6

0.00

0.0

54 1.16

63

24.2

24.2

24.1

94 756.7

0.00

0.0

61 1.31

76

24.4

24.4

24.2

94 756.9

0.00

0.0

111 2.39

237

24.9

24.9

24.4

93 757.0

0.00

0.0

167 3.59

204

25.5

25.5

24.9

92 757.1

0.00

0.0

237 5.10

367

26.1

26.1

25.5

90 757.3

0.00

0.0

187 4.02

248

23.9

24.0

23.9

96 757.7

0.00

0.0

14 0.30

19

23.9

23.9

23.9

96 757.9

0.00

0.0

15 0.32

18

23.9

23.9

23.9

96 758.0

0.00

0.0

18 0.39

25

24.1

24.1

23.9

96 758.1

0.00

0.0

28 0.60

35

24.3

24.3

24.1

96 758.2

0.00

0.0

44 0.95

47

24.6

24.6

24.2

96 758.4

0.00

0.0

62 1.33

69

24.8

24.8

24.6

95 758.5

0.00

0.0

94 2.02

114

25.1

25.1

24.8

94 758.4

0.00

0.0

101 2.17

107

25.3

25.3

25.1

93 758.6

0.00

0.0

137 2.95

160

22.8

22.8

22.8

96 759.3

0.00

0.0

10 0.22

16

22.8

22.8

22.8

96 759.2

0.00

0.0

30 0.65

46

23.1

23.1

22.8

96 759.1

0.00

0.0

60 1.29

79

23.3

23.3

23.1

97 759.1

0.00

0.0

102 2.19

114

23.8

23.8

23.3

97 759.1

0.00

0.0

187 4.02

230

24.3

24.3

23.8

97 759.3

0.00

0.0

184 3.96

327

25.2

25.2

24.3

95 759.4

0.00

0.0

315 6.77

394

25.7

25.7

25.2

93 759.5

0.00

0.0

355 7.63

369

26.1

26.1

25.7

92 759.6

0.00

0.0

397 8.54

420

22.7

22.7

22.7

97 760.2

0.00

0.0

3 0.06

7

59

17/06/2 014 17/06/2 014 17/06/2 014 17/06/2 014 17/06/2 014 17/06/2 014 17/06/2 014 17/06/2 014 20/06/2 014 20/06/2 014 20/06/2 014 20/06/2 014 20/06/2 014 20/06/2 014 20/06/2 014 20/06/2 014 20/06/2 014 24/06/2 014 24/06/2 014 24/06/2 014 24/06/2 014 24/06/2 014 24/06/2 014 24/06/2 014 24/06/2 014 24/06/2 014 27/06/2 014

6:15 a. m. 6:30 a. m. 6:45 a. m. 7:00 a. m. 7:15 a. m. 7:30 a. m. 7:45 a. m. 8:00 a. m. 6:00 a. m. 6:15 a. m. 6:30 a. m. 6:45 a. m. 7:00 a. m. 7:15 a. m. 7:30 a. m. 7:45 a. m. 8:00 a. m. 6:00 a. m. 6:15 a. m. 6:30 a. m. 6:45 a. m. 7:00 a. m. 7:15 a. m. 7:30 a. m. 7:45 a. m. 8:00 a. m. 6:00 a. m.

22.7

22.7

22.7

97 760.3

0.00

0.0

10 0.22

12

22.7

22.8

22.7

97 760.5

0.00

0.0

15 0.32

21

22.8

22.8

22.7

97 760.7

0.00

0.0

30 0.65

35

23.0

23.0

22.8

97 760.8

0.00

0.0

38 0.82

46

23.2

23.2

23.0

97 761.0

0.00

0.0

55 1.18

60

23.3

23.3

23.2

97 761.1

0.00

0.0

70 1.51

93

23.5

23.5

23.3

97 761.3

0.00

0.0

127 2.73

162

23.7

23.7

23.5

97 761.4

0.00

0.0

179 3.85

183

21.1

21.2

21.1

98 761.6

0.00

0.0

4 0.09

7

21.1

21.1

21.1

98 761.7

0.20

0.0

12 0.26

16

21.1

21.1

21.1

98 761.9

0.00

0.0

20 0.43

21

21.1

21.1

21.1

98 762.0

0.00

0.0

28 0.60

35

21.1

21.1

21.1

98 762.1

0.00

0.0

39 0.84

42

21.2

21.2

21.1

98 762.2

0.00

0.0

52 1.12

60

21.4

21.4

21.2

98 762.4

0.00

0.0

69 1.48

74

21.5

21.5

21.4

98 762.5

0.00

0.0

73 1.57

86

21.7

21.7

21.5

98 762.6

0.00

0.0

96 2.06

105

22.2

22.3

22.2

98 759.3

0.00

0.0

7 0.15

14

22.4

22.4

22.2

98 759.5

0.00

0.0

32 0.69

56

22.7

22.7

22.4

99 759.5

0.00

0.0

66 1.42

70

22.9

22.9

22.7

99 759.6

0.00

0.0

82 1.76

109

23.1

23.1

22.9

99 759.7

0.00

0.0

114 2.45

155

23.4

23.4

23.1

99 759.8

0.00

0.0

211 4.54

297

23.9

23.9

23.4

99 759.8

0.00

0.0

310 6.67

357

24.3

24.3

23.9

99 759.9

0.00

0.0

246 5.29

309

24.7

24.7

24.3

98 759.9

0.00

0.0

369 7.93

573

19.8

19.8

19.7

97 758.6

0.00

0.0

10 0.22

19

60

27/06/2 014 27/06/2 014 27/06/2 014 27/06/2 014 27/06/2 014 27/06/2 014 27/06/2 014 27/06/2 014 01/07/2 014 01/07/2 014 01/07/2 014 01/07/2 014 01/07/2 014 01/07/2 014 01/07/2 014 01/07/2 014 01/07/2 014 04/07/2 014 04/07/2 014 04/07/2 014 04/07/2 014 04/07/2 014 04/07/2 014 04/07/2 014 04/07/2 014 04/07/2 014 08/07/2 014

6:15 a. m. 6:30 a. m. 6:45 a. m. 7:00 a. m. 7:15 a. m. 7:30 a. m. 7:45 a. m. 8:00 a. m. 6:00 a. m. 6:15 a. m. 6:30 a. m. 6:45 a. m. 7:00 a. m. 7:15 a. m. 7:30 a. m. 7:45 a. m. 8:00 a. m. 6:00 a. m. 6:15 a. m. 6:30 a. m. 6:45 a. m. 7:00 a. m. 7:15 a. m. 7:30 a. m. 7:45 a. m. 8:00 a. m. 6:00 a. m.

20.0

20.0

19.8

97 758.7

0.00

0.0

31 0.67

42

20.1

20.2

20.0

96 758.9

0.00

0.0

56 1.20

69

20.6

20.6

20.1

97 759.0

0.00

0.0

87 1.87

102

21.4

21.4

20.6

95 759.1

0.00

0.0

130 2.80

165

22.3

22.3

21.4

95 759.2

0.00

0.0

190 4.09

218

23.3

23.3

22.3

93 759.3

0.00

0.0

248 5.33

272

24.2

24.2

23.3

92 759.4

0.00

0.0

280 6.02

309

25.1

25.1

24.2

91 759.5

0.00

0.0

347 7.46

371

22.2

22.2

22.2

99 758.9

0.00

0.0

10 0.22

18

22.3

22.3

22.2

99 759.0

0.00

0.0

35 0.75

54

22.5

22.5

22.3

99 759.1

0.00

0.0

59 1.27

69

22.7

22.7

22.5

99 759.2

0.00

0.0

94 2.02

118

23.0

23.0

22.7

99 759.5

0.00

0.0

127 2.73

151

23.1

23.1

22.9

99 759.5

0.00

0.0

103 2.21

113

23.1

23.1

23.1

99 759.6

0.00

0.0

117 2.52

135

23.3

23.3

23.1

99 759.8

0.00

0.0

138 2.97

148

23.4

23.4

23.3

99 760.1

0.00

0.0

156 3.35

181

23.2

23.3

23.2

97 760.1

0.00

0.0

2 0.04

5

23.3

23.3

23.2

97 760.2

0.00

0.0

10 0.22

18

23.3

23.3

23.3

97 760.3

0.00

0.0

25 0.54

30

23.5

23.5

23.3

97 760.3

0.00

0.0

51 1.10

56

23.6

23.6

23.5

97 760.2

0.00

0.0

72 1.55

109

23.9

23.9

23.6

97 760.3

0.00

0.0

141 3.03

183

24.4

24.4

23.9

97 760.3

0.00

0.0

245 5.27

345

24.7

24.7

24.4

97 760.3

0.00

0.0

255 5.48

441

25.4

25.4

24.7

95 760.5

0.00

0.0

438 9.42

531

21.5

21.5

21.4

99 760.9

0.00

0.0

2 0.04

7

61

08/07/2 014 08/07/2 014 08/07/2 014 08/07/2 014 08/07/2 014 08/07/2 014 08/07/2 014 08/07/2 014

6:15 a. m. 6:30 a. m. 6:45 a. m. 7:00 a. m. 7:15 a. m. 7:30 a. m. 7:45 a. m. 8:00 a. m.

21.6

21.6

21.5

99 761.1

0.00

0.0

13 0.28

16

21.6

21.6

21.6

98 761.3

0.00

0.0

24 0.52

28

21.7

21.7

21.6

98 761.3

0.00

0.0

32 0.69

39

21.8

21.8

21.7

98 761.5

0.00

0.0

46 0.99

51

22.1

22.1

21.8

98 761.7

0.00

0.0

76 1.63

91

22.3

22.4

22.0

98 761.9

0.00

0.0

139 2.99

165

22.6

22.6

22.4

97 762.1

0.00

0.0

169 3.63

192

22.9

22.9

22.6

97 762.2

0.00

0.0

244 5.25

302

Fuente: (estación meteorológica centro EUTOPIA)

62