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• Jesica Silva Wolkoff

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Técnica de Kato-Katz Para el diagnóstico de las geohelmintiosis, las muestras de heces se procesan por la técnica de Kato-Katz que utiliza como fundamento el aclaramiento de los huevos con glicerina y contraste con verde de malaquita pudiendo observar huevos de Ascaris lumbricoides, Trichuris trichiura, de uncinarias e incluso de otros gusanos que no son geohelmintos como Enterobius vermicularis y Taenia sp. TÉCNICA O PROCEDIMIENTO 1. 2. 3. 4.

Depositar sobre el papel encerado 5 grs de materia fecal colocar la malla sobre la materia Presionar la malla para que salga el tamizado. Se efectúa una horadación de 0.6 cm. de diámetro en cartón de cascaron y se coloca sobre un portaobjeto. 5. Dentro del círculo se introduce la muestra de materia fecal (50 mg). 6. Con sumo cuidado retirar el soporte de papel cascaron o cartón. 7. El excremento quedara en forma cilíndrica. 8. Cubrirlo con un fragmento de celofán (22 x 30 mm) que se encuentra previamente humedecido con glicerina y verde de malaquita 3% durante 24 hrs. 9. Hacer un squash con la ayuda de papel adsorbente, con el propósito de eliminar el exceso de glicerina y de lograr una extensión delgada, apta para la observación. 10. dejar reposar durante 20 ó 30 minutos a 37 grados centígrados para aclaración del material fecal (pero no de los huevos) 11. Examinar al microscopio para su cuantificación.

Calculo de resultados El número de huevos contados en toda la preparación se multiplica por un factor constante de 20; Si en 50 mg. de la muestra se encontró un huevo, como 1 gr. Tiene 1000 mg. Se hace una regla de tres y por consiguiente 1000 dividido entre 50 dará un factor de 20, que es el que se utilizará para multiplicar el número de huevos contados en la preparación. Bibliografía 

Jiménez Cardoso Enedina, Control de calidad en Parasitología, 1ra edición, editorial Prado, 2006.



Beltrán Fabián M.Tello Casanova R., Naqueira Velarde C., Manual de procedimientos de laboratorio para el diagnóstico de los parásitos intestinales del hombre.

MÉTODO DE CONSERVACIÓN El frío suele ser el mejor MÉTODO DE CONSERVACIÓN de las muestras siempre y cuando éstas lleguen a su destino en manos de 24 horas. En caso de requerir hielo, éste nunca debe contactar con el material objeto de estudio. Si el procesado de las muestras no va a realizarse en menos de 24 horas está indicada la utilización de algún tipo de conservante. Podemos recurrir al formol, generalmente a una concentración del 5-10%, pero debemos tener en cuenta que no permite tinciones posteriores ni ninguna técnica laboratorial que requiera que el parásito esté vivo (migración larvaria, coprocultivos, etc.). Para la conservación de ejemplares adultos es muy frecuente recurrir al alcohol al 70%, que prácticamente no conlleva efectos negativos. La azida sódica es muy tóxica, pero conserva muy bien los huevos y las larvas de los nematodos. Preservación Los fijadores habitualmente empleados para la preservación de muestras coproparasitológicas incluyen: formol al 5% en agua o solución fisiológica; alcohol polivinílico, PVA; fenol-alcoholformol, PAF; acetato de sodio-ácido acético-formol. SAF o; merthiolate-iodo-formol, MIF) en una proporción de 1 parte de heces por cada 3 partes de fijador (aproximadamente el volumen final no debe exceder la mitad del volumen del fijador). No debe estar mezclado con orina u otro líquido. Bibliografía 

UBA, 2010. Consultado el 18 de mayo http://www.fmed.uba.ar/depto/microbiologia/500006.pdf

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