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UNIVERSIDAD MICHOACANA DE SAN NICOLÁS DE HIDALGO FACULTAD DE BIOLOGÍA

MANUAL DE PRÁCTICAS DE LABORATORIO DE BOTÁNICA II CICLO 2011

“PTERIDOFITAS Y GIMNOSPERMAS” Pinus ayacahuite var. brachyptera Shaw.

Polypodium madrense Mickel

PROFESORES DEL CURSO 2011: M.C. Patricia Silva Sáenz Dr. Juan Manuel Ortega Rodríguez Dr. Juan Carlos Montero Castro Biol. Federico Hernández Valencia M.C. Javier Salvador Robles Del Valle M.C. Gerardo Rodríguez Lozano

Manual de prácticas de botánica II Ciclo 2011

PRESENTACIÓN. En el plan de estudios de la carrera de Biólogo de la Universidad Michoacana de San Nicolás de Hidalgo, la materia de Botánica II (Pteridofitas y Gimnospermas), contempla dentro de sus contenidos el estudio tanto de la morfología, ciclos de vida, las relaciones evolutivas como la taxonomía de estos grupos de vegetales, que representan una gran importancia evolutiva pues corresponden tanto a las primeras plantas vasculares como a las primeras plantas productoras de semillas, por lo que el presente manual constituye una herramienta didáctica útil para el estudiante. En el presente manual se incluyen los aspectos antes mencionados, por lo que las diferentes prácticas intentan que el alumno relacione la morfología con la evolución que han tenido estos grupos de vegetales. Las prácticas incluidas, con excepción de la primera y la última, fueron implementadas originalmente como parte de la materia de Botánica III del plan de estudios de 1976 por el Prof. Biol. José L. Magaña Mendoza; y a partir del semestre marzo – agosto de 1998 y a iniciativa de los profesores Biol. Martha Santoyo Román y M.C. María del Rosario Ortega Murillo se formalizaron y estructuraron en el presente manual, aumentando una primera práctica de evolución de las plantas vasculares y una última práctica de Herbario. La estructura, revisión y edición se ha realizado por los profesores que en algún momento han impartido la materia: José L. Magaña Mendoza, Martha Santoyo Román, Rosario Ortega Murillo, Xavier Madrigal Sánchez, Marlene Gómez Peralta, Patricia Silva Sáenz y Gerardo Rodríguez Lozano. En la edición 2009, la M.C. Judith Sánchez Blanco transcribe el manual para usarse en dicho ciclo escolar, e incluye la versión digital que capturó el Biol. Carlos Zavala Álvarez, de la clave para pteridofitas del Valle de México de Arreguín et al. de 2004. En la edición del 2010, a iniciativa de la M.C. Patricia Silva Sáenz y del Dr. Juan Manuel Ortega Rodríguez, se agregan dos prácticas más: la segunda y la cuarta, ambas relacionadas con la germinación de esporas de helechos homospóricos leptoesporangiados y la observación del desarrollo del gametofito de esos mismos helechos. Se adicionan también: Clave para los géneros de Pteridophytas de la flora Novo-Galiciana, clave para los géneros Pteridophytas de Chiapas y claves para identificar coníferas del estado de Michoacán. Participaron en la transcripción los profesores: Carlos Zavala Álvarez, que desde la versión 2009 transcribió la clave para pteridophytas de Arreguín (2004), Federico Hernández Valencia y Javier Salvador Robles Del Valle, y en la transcripción y edición: Patricia Silva Sáenz. Así mismo se agradece la colaboración a los alumnos(as): Alberto Rodríguez Tapia, Laura N. Suarez Soria, Erandeni Durán Mendoza, Hilda Maricela Cetz Zúñiga. Las imágenes de la edición 2010 las recopiló e integró Patricia Silva Sáenz. En esta versión 2011 el formato general lo realiza la P. de Biol. Laura Lorena Rodríguez Cedillo y el Biol. Carlos Zavala Álvarez, supervisados por la M.C. Patricia Silva Sáenz. Se unen en una sola las prácticas 2 y 4 de la versión anterior, que tratan sobre cultivo de gametofito de helechos homospóricos; la práctica 6 “Clasificación de pteridofitas”, se une a la 7 “Determinación de polypodiofitas”, titulándose ahora: “Clasificación y determinación de pteridofitas”. Se reacomoda la numeración de algunas figuras, se agregan algunos textos complementarios. Los glosarios y las claves de determinación, se colocan al final como anexo.

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INDICE Práctica

pág.

Práctica Nº. 1 Evolución de las plantas vasculares……………………………………………... 3 Práctica Nº. 2 Morfología comparada de pteridophyta .............................................................. 11 Práctica Nº. 3 Germinación y observación de esporas de fase gametofítica de helechos homospóricos leptosporangiados………………………………………………. 16 Práctica Nº 4 Morfología de polypodiophyta…………………………………………………. 25 Práctica Nº 5 Clasificación y determinación de pteridophytas……………………………......38 Práctica Nº 6 Características generales de pinophyta (gimnospermas)………………………...42 Práctica Nº 7 Características de importancia para la identificación del género Pinus…..……. 47 Práctica Nº 8 Clasificación del género Pinus………………………………………………….. 59 Práctica Nº 9 Identificación y clasificación de pinophyta……………………………………... 63 Práctica Nº 10 Herbario……………………………………………………………………...… 66

ANEXO Glosarios • Glosario para pteridophytas (Arreguín-Sanchéz, et al. 2004)…………………………….. 70 • Glosario para coníferas (Madrigal-Sánchez 1982)…………..…………………….………..74 Claves de identificación • • • • • • • • • •

Clave para separar las familias de pteridofitas del Valle de México (Arreguín-Sanchéz, et al. 2004)……………………..…………………………………….. 76 Clave para los géneros de pterydophyta (Roger Mc Vaugh) ……………………………… 86 Clave a las familias del orden pinales (Benson, 1957) …………………………………... 100 Clave a los géneros de pinophytas (Martínez, 1963) ………………………………..…… 101 Clave a los géneros mexicanos de pinaceae (Martínez, 1953)…….………………………101 Clave de las especies mexicanas de Abies (Martínez, 1953)…………………………….. 102 Clave a las especies mexicanas de Juniperus (Martínez (1953) ….……………………....104 Claves a las especies mexicanas de Cupressus (Adaptación de la traducción hecha de la clave prestada por Wolf 1948) …………………………………………….... 105 Clave para la determinación de pinos mexicanos (Martínez 1948) ……………………… 106 Claves para identificar coníferas del estado de Michoacán (Madrigal –Sánchez 1982)…. 110

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PRÁCTICA Nº. 1

EVOLUCIÓN DE LAS PLANTAS VASCULARES

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I.

INTRODUCCIÓN

Las plantas vasculares son en su mayoría autótrofas y terrestres, con alternancia de dos generaciones heteromórficas y orgánicamente diferentes. Estas generaciones son asexuales o esporofitica (diploide), conspicua producto de esporangios y esporas. La otra generación es sexual o gametofitica (haploide) reducida y productora de gametangios y gametos. El origen del esporofito es a partir del cigoto, que permanece unido y depende del gametofito por un determinado tiempo, el cual al pasar el tiempo, el esporofito se va haciendo mas independiente del gametofito y adquiere el carácter fotosintético, además construye la fase dominante, estas ultimas características son definitivas de las plantas vasculares. El esporofito consiste típicamente de varias porciones orgánicas: las raíces, tallos y los diversos tipos de órganos foliares o foliáceros. La evolución actualmente no se ha explicado satisfactoria mente, existen teorías sobre el origen de estos órganos: teoría estelar o estélica que explica la organización general y la diversificación del sistema vascular (xilema y floema). Teoría de la Telómica que explica la evolución de las hojas mega filas. La teoría de Lignier que exolica el origen del sistema radical. Los esporangios, que forman parte del esporofito, son las estructuras donde se originan las esporas. Difieren de un grupo a otro por sus características: origen, simetría, posición, estructuras de protección, su Desarrollo ontogénico, el tipo de esporas y la forma de diseminación.

II.

III.

OBJETIVO

• Observar y reconocer las principales tendencias evolutivas de las plantas vasculares.

MATERIAL

• Microscopio compuesto, lupa estereoscópica, porta y cubre objetos, agujas de disección, pinzas y pizeta. Material biológico • Los géneros siguientes: Adiantum, Anemia, Botrychum, Cheilantes, Isoetes, Lycopodium, Pinus, Polypodium, Psilotum, Woodwardia y corte de madera de pino.

IV.

DESARROLLO

1.- Evolución del esporofito 1.1 Evolucion de la raíz (Teoría Lignier) En los ejemplares que se encuentran en la mesa Psilotum, Lycopodium, Sellaginella y la fotografía de Rhynia, observa a simple vista el tipo de raíces y establece la posible secuencia de evolución de la raíz (Fig.1). 1.2 Sistema vascular o estele (Teoría estelar). Observa los cortes (preparaciones) transversales de Psilotum, Lycopodium, y Sellaginella y observa los tipos de esteles de acuerdo al diagrama (Fig. 2). Realiza los esquemas y define los

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tipos de esteles de cada muestra. Repite el mismo procedimiento para el corte o rodaja de madera del tallo de Pinus. 1.3 Ontogenia de esporangios. Observa las preparaciones de los esporangios de Selaginella y Polypodium y diferencía un eusporangio de un leptosporangio. Tambièn observa las diferencias entre un esporangios isospórico (u homospórico) de un heterospórico (que produce microsporangios y megasporangios) (Fig. 3). 1.4 Eje o tallo (Teoría del teloma). Con base en la teoría del teloma, establece la posible secuencia evolutiva del eje en Rhynia, Psilotum, Lycopodium y Equisetum (Fig. 4). 1.5 Posición de las estructuras reproductivas (Teoría del teloma). En los ejemplares o esquemas de: Rhynia, Psilotum, Lycopodium, Sellaginella, Polypodyum y Adiantum, observa sus esporangios y establece la tendencia evolutiva de acuerdo a la posición de estos (Figs. 5 a 11). 1.6 Hoja micrófila (Teoría de la enación y teoría del teloma) En Psilotum, Lycopodium y Sellaginella, observa a la lupa y al microscopio los ejemplares y preparaciones; distingue los diferentes tipos de hoja micrófila (Fig. 12). 1.7 Hoja megáfila (Teoría del teloma). En los ejemplares de Adiantum, Asplenium y Pleopeltis observa a simple vista y realiza la posible secuencia de evolucion que sigue una hoja megáfila (Fig. 13). 1.8 Protección de esporangios (Teoría del teloma). De las muestras de Psilotum, Lycopodium, Selaginella, Woodwardia, Adiantum e Isoetes observa el tipo de protección y establece la posible tendencia evolutiva. 1.9 Esporas. De los ejemplos de Lycopodium, Selaginella, Pteridium y Elaphoglosum, observa las esporas y distingue las isosporas de las heterosporas, así como la diferencia entre las monoletes y las triletes (Fig. 14).

BIBLIOGRAFÍA • • • •

• • •

Cronquist, A. 1987. Introducción a la Botánica. Compañía Editorial Continental. S.A. México, D.F. 193 pp. Delevoryas, T. 1968. Diversificación Vegetal. Compañía Editorial Continental, S.A. México, D.F. 193 pp. Font-Quer. 1953 Diccionario de Botánica. 4ª reimpresión. Editorial Labor. S.A. México, D.F. 1244 pp. Foster. A.S. y E.M. Gifford. 1974. Comparative morphology of vascular plants. W.F. Freeman and Co. San Francisco. 751pp. Madrigal Sánchez, X. y A. Chávez Carmona. 1992. Pteridophytas y Gimnospermas. Escuela de Biología – Universidad Michoacana de San Nicolás de Hidalgo. Morelia, Mich. México. 98 pp + Apéndice. Scagel. R.F., G.E. rouse, J.R. Stein., Bandoni. W.B. Schofield., T.M.C. Taylor. 1995. El reino Vegetal. 3ª edición. Omega. Barcelona. Zimmermann, W. 1976. Filogenia de las plantas. Editorial Omega. Barcelona, España. 176

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Fig. 1. Origen del cuerpo de una planta terrestre vascular según la hipótesis de Lignier, (A), antecesor algal verde, ramificado dicotómicamente, (B) planta vascular simple.

Fig. 2. Evolución de las estelas. Prostélas: A (haplostele) y B (actinostele), C: plectostela, D: sifonostela ectofloica, E: sifonostela antifloica, F: dictiostela, G: eustela, H: estela monocotiledónea. (co). Cortex (claro), end, endodermos, (fl) floema (punteado) (xi) xilema (negro).

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a) Eusporangio

Leptosporangio liberando esporas

b) Leptosporangio Fig. 3. Tipos de esporangio en Pteridophyta.

Fig. 4. Etapas en el proceso evolutivo del rebasamiento. A, eje que se ramifica de modo dicotómico, presentando telomas (t) y mesomas (m). B, eje simpódico desarrollado con pérdida de ramas punteadas que aparecen en A. C, eje monopódico desarrollado por reducción de las ramas laterales y enderezamiento del eje principal (Según W. N. Stewart, 1964).

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Fig. 5. esporangios de origen caulinar: A, esporangios en extremos de los ejes o ramificaciones, Apical o terminal Rhynia B, esporangios a lo largo del eje de la planta, Lateral Zosterophyllum.

Fig. 6. A-E, propuesta para la evolución de la posición de los esporangios en Psilotum (E) por reducción (A-D) de un eje telómico fértil que se ramifica. Axilar

Fig. 7. A-D, evolución de la situación de los esporangios de Equisetum (C) y Calamites (D), por reducción de los telomas fértiles. Anatropa.

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Fig. 8. A-D, Evolución de la situación de los esporangios en Lycopodium (B), Sphenophyllum (C) y Tmesipteris (D) por reducción de los telomas fértiles y estériles. Adaxial.

Fig. 9. A-C, evolución del megafilo de los pteófitos por planación y laminación (concrescencia) de una estructura telómica fértil tridimensional. A, Rhynia; B Cladoxylon; C Acrangiophyllum. Marginal.

Fig. 10. a-i, Desplazamiento de los esporangios marginales al envés de la trofoesporófila; mayoría de los helechos verdaderos. Abaxial.

Fig. 11. Esporocarpos de Isoetes.

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Fig. 12. Dos vías de la evolución de la hoja micrófila. A-D, mediante extensión progresiva del tallo externo y del haz vascular (teoría de la enación). E-G, por reducción progresiva de un sistema telómico ramificado (teoría del teloma) (Según W. N. Stewart, 1964).

Fig. 13. Etapas de la planeación y laminación o concrescencia en la evolución de un megáfilo. A, eje dicótomo con ramificación tridimensional. B, las ramas se han dispuesto en un plano. C, laminación mediante extensiones laminares en forma de hoja y aplanadas del eje. D, formación de un megáfilo con disposición pinnada de nervios mediante rebasamiento (Según W. N. Stewart, 1964).

Monolete

Trilete

Con eláteres

Fig. 14. Tipos de esporas.

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PRÁCTICA Nº. 2

MORFOLOGÍA COMPARADA DE PTERIDOPHYTA

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I.

INTRODUCCIÓN

Las Pteridophytas no constituyen una categoría sistemática como tal, es más bien una denominación que agrupa a varias divisiones de plantas vasculares inferiores, las más primitivas y simples desde el punto de vista paleobotánica y morfológico. Muchos de sus organismos son ya especies extintas, que florecieron hace millones de años. Actualmente están escasamente representadas, y de algunos taxa solo sabemos por sus fósiles. Rhyniophyta, Psilotophyta, Lycopodiophyta y Equisetophyta, son los taxa que reciben el nombre general de Pteridophyta, agregándose la división Polypodiophyta, que comprende a los helechos verdaderos. En esta práctica se incluye las cuatro primeras divisiones.

II.

OBJETIVO

III.

MATERIAL

• Observar y analizar comparativamente los principales caracteres morfológicos de los grupos de Pteridophyta, excepto la división Polypodiophyta.

• • • • • •

IV.

Agujas de disección Porta y cubre objetos Navaja o bisturí Mechero Bunsen Solución de NaOH al 10% Solución de hipoclorito de sodio al 5%

DESARROLLO

1.- Crecimiento del esporofito. Entre los ejemplares reconocerá los principales tipos de crecimiento de esporofito de las Pteridophytas: Dicotómico: cuando el cuerpo de las plantas se ramifica sucesivamente en un par de ramillas isomorficas o equivalentes, en forma de horqueta. Dicotómico dominante, cuando la dicotómica una de las ramillas presentes mas favorecido su crecimiento, dominado morfológicamente sobre la otra Monopódico, cuando el crecimiento se da alrededor de un solo eje, con completa dominancia del mismo en el cuerpo de la planta. Simpodico, es un crecimiento irregular y difuso, sin ningún tipo de dominancia (Fig. 4 de la Práctica 1). 2.- Hojas. 2.1 Nerviación. En las divisiones de Pteridophyta solamente se presenta dos tipo de hojas, las microfilas (con una sola nervadura y las megáfilas (con más de una nervadura) (Fig. 1 de la práctica 4). Para que se observe el haz vascular, tome una hoja de los ejemplares sumerja cada una en solución de NaOH, y póngala en la flama del mechero directamente unos 5 minutos, o hasta que note una ligera coloración rojiza en solución; retírela de la flama y sumérjala ahora en una solución de 12 | P á g i n a

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hipoclorito de sodio, sin calentar, hasta que la hoja quede completamente transparente o blanquizca. Saque la hoja y colóquela en un portaobjetos, observe al microscopio. 2.2 Función. Las hojas Trófofilas son aquellos que realizan el proceso de fotosíntesis, las Esporofitas, son las hojas que solo sostienen a los esporangios, mientras que las hojas Trofoesporofilas, son hojas que realizan el proceso de fotosíntesis y sostienen a los esporangios. 3.- Estele De los ejemplares observa al microscopio con el lente en 10X el tipo de estele, distinga el xilema, el floema, si tiene medula o no (Fig. 2 de la práctica1). 4.- Esporangios 4.1Origen y posición. El origen de los espornagios puede ser caulinar (a partir del tallo) o foliar (a partir de las hojas). La posición de los esporangios Caulinar puede ser: Apical, cuando se encuentran en el extremo superior de las ramillas, lateral, cuando están laterales en el tallo; Axilar, cuando se encuentran laterales en un ángulo formado sobre las ramillas; Anátropos se recurva y quedan en una posición hacia el eje del tallo. La posición de los esporangios Foliar puede ser: Adaxiales, cuando los esporangios se encuentran encima de las hojas; Marginales, los esporangios se encuentran en el margen u orilla de la hoja; Abaxiales, los esporangios se encuentran en el envés de la hoja y, Básales, cuando se encuentran en la porción mas inferior de la hoja hacia la base (Fig. 5 -11 de la práctica 1). 4.2 Protección. Sinangios, cuando los esporangios se fusionan o se soldan (Fig. 6 de la práctica 1); esporangióforos, los esporangios se agrupan y forman una estructura con un verticilo, de forma cilíndrica que en la parte apical presenta una forma hexagonal (Fig. 7 de la práctica 1); estróbilos, los esporangios se presentan en una hoja modificada (esporófilas) que se agrupan o agregan en el extremo de las ramillas principales; Esporocarpo es una estructura especializada para la protección de los esporangios, que se forma en la parte basal por la fusión de las láminas de la hoja con los esporangios (Fig. 11 de la práctica 1). 5.- Esporas. De acuerdo a su origen y forma pueden ser de dos tipos trilete o monolete (Fig. 14 de la práctica 1), con respecto a su tamaño pueden ser: Homosporas y Heterosporas (megasporas y microsporas). En las esporas triletes la división meiótica va seguida de un tabica mentó simultáneo, las esporas resultantes son tetraédricas, es decir con tres caras laterales internas y una externa convexa. Las esporas monoletes se forman por divisiones meiótica sucesivas, tienen solamente dos caras latentes planas y una cara convexa. Las homosporas (o isosporas), son esporas del mismo tamaño y funcionan germinando cada una en gametofitos bisexuales.

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Las heterosporas, son esporas de diferente tamaño y función; las grandes (megasporas) germinan en gametofitos femeninos y las pequeñas (microsporas) germinaran en gametofitos masculinos. Las megasporas son de mayor tamaño y de membrana más gruesa que las microsporas. 6.- Mecanismo de fijación. Rizoma es un tallo modificado generalmente subterráneo y postrado, provisto de hojas modificadas llamadas catáfilas o bien cubierto por escamas o tricomas. Los rizoides son estructuras en forma y función semejante a una raíz pero de anatomía simple, careciendo de xilema y de floema. Rizóforo (o rizósforo) es una modificación del tallo en un tipo de raíces adventicias que surgen en el ángulo que forma en tallo y las hojas (axilarmente). La raíz fija a la planta al suelo o sustrato para la absorción de agua y nutrientes inorgánicos que serán transportados a los órganos donde se realizan las funciones de síntesis; consta de xilema y floema. Con lo anterior desarrolla un cuadro comparativo, manejando las características de los diferentes géneros.

BIBLIOGRAFÍA •

• • • •

Croquist, A. 1974. Introducción a la Botánica. Compañía Editorial Continental. S.A. México, D.F. 193 pp. Font-Quer. 1953 Diccionario de Botánica. 4ª reimpresión. Editorial Labor. S.A. México, D.F. 1244 pp. Foster. A.S. y E.M. Gifford. 1974. Comparative morphology of vascular plants. W.F. Freeman and Co. San Francisco. 751pp. Scagel. R.F., G.E. Rouse, J.R. Stein., Bandoni. W.B. Schofield., T.M.C. Taylor. 1995. El reino Vegetal. 3ª edición. Omega. Barcelona. Zimmermann, W. 1976. Filogenia de las plantas. Editorial Omega. Barcelona, España. 176 pp.

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Morfología comparada de pteridofitas. Cuadro comparativo

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PRÁCTICA Nº. 3

GERMINACIÓN Y OBSERVACIÓN DE ESPORAS DE FASE GAMETOFÍTICA DE HELECHOS HOMOSPÓRICOS LEPTOSPORANGIADOS

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I. INTRODUCCIÓN No. obstante el gran número de esporas que forman los helechos, en la naturaleza muy pocas completan su Desarrollo hasta gametofitos maduros ya que muchas son transportadas por corrientes' de aire a lugares desfavorables para su germinación. Aunque es frecuente encontrar gametofitos en suelos húmedos o en lugares protegidos como grietas en cercanías de poblaciones, de helechos, no son abundantes. La germinación de esporas de helechos y su Desarrollo en gametofitos fueron descritos por primera vez por Kaulfuss (1827). Para observar los gametofitos en el laboratorio, las esporas pueden ser sembradas en agar, suelo húmedo, pedazos de barro o medio líquido con sales inorgánicas. La germinación de las esporas se inicia con la formación de una célula rizoidal y una célula protálica la que se diferencia en una fase filamentosa (unidimensional); por cambios en los; planos de división, se inicia un estado bidimensional (laminar) con-una zona meristemática diferenciada. El gametofito maduro o prótalo es generalmente cordiforme (acorazonado) con un cojinete en la parte central, dos alas bien desarrolladas y una zona meristemática entre ellas; por su cara ventral se diferencian rizoides, anteridios y arquegonios. .De acuerdo con el tipo y tiempo de aparición de los gametangios, los gametofitos pueden ser monoicos o dioicos; en el primer caso se puede presentar protandria1 o protoginia2. En el ciclo de los helechos homospóricos se presenta la alternancia de fases, representada por una fase gametofítica (n) que se inicia con la espora y su germinación y el subsecuente Desarrollo de un prótalo fotosintético que en su madurez la mayoría de las veces es bisexuado y al haber singamia de las células sexuales se forma el huevo o cigoto. A partir de este momento se inicia la fase esporofítica (2n), se desarrolla un esporofito, el cual en su madurez presenta hojas fértiles, conteniendo esporangios en los que, por meiosis, se forman las esporas, con lo que termina y, a la vez, comienza el ciclo (Ver Figura 1).

II.

OBJETIVOS • Familiarizar al estudiante con el Desarrollo de la fase gametofítica de los helechos homospóricos y con las técnicas para su cultivo. • Observar gametofitos de helechos en diferentes grados de Desarrollo; así como la forma, distribución y localización de sus estructuras reproductivas.

III.

MATERIAL

MATERIAL PARA LA GERMINACIÓN DE ESPORAS Material general • Medio de cultivo (véase apéndice). • Agua destilada esterilizada 1

Protandria o Proterando: Aplícase a la planta, flor, etc., dicógama en la que los estambres alcanzan la madurez y el pólen está completamente formado antes de que el estigma sea apto para recibirlo, porque el gineceo no ha llegado a su perfección. 2 Protoginia: Cuando maduran antes los órganos femeninos

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• Hipoclorito de sodio (solución acuosa 1%, puede utilizarse cualquier blanqueador). • • • • • • • • • • • • •

Material por equipo Portaobjetos y cubreobjetos. Navaja de afeitar Pinzas de disección finas Agujas de disección. Microscopios compuesto y estereoscópico. Cajas de Petri (5). Pincel fino Hoja de papel estaño (20 x 20 cm) o una bolsa de polietileno negro. Bolsa de polietileno transparente. . Mechero. Vidrios de reloj o cajas de Petri (3). Tamiz de 0.50 a 0.70 mm o un colador de malla fina. 100 ml.de alcohol etílico 96%

Material biológico • Ejemplares fértiles de helechos, preferentemente Nephrolepis, Adiantum y Polypodium. MATERIAL PARA OBSERVACIÓN DE GERMINACIÓN DE ESPORAS • Microscopios compuesto y estereoscópico. • Portaobjetos y cubreobjetos. • Agujas de disección. • Frasco gotero con agua destilada. • Aceite de inmersión. • Triángulos de varilla de vidrio (2). Nota: Se puede apoyar esta práctica con preparaciones fijas y Material fijado fresco. •

Material Biológico Varias cajas de Petri con medio nutritivo y agar, donde estén creciendo gametofitos de helechos de diferentes edades.

IV.

DESARROLLO PROCEDIMIENTO PARA EL CULTIVO 1. Prepare el medio de cultivo de acuerdo con lo señalado por el técnico de laboratorio con base en los siguientes medios: A. Solucion de Bristol Prepare 6 soluciones madres, de 400 ml en volumen, cada una conteniendo una sal de las que acontinuacion se enlistan, con las correspondientes cantidades: Nitrato de sodio, NaNO3 10.0 g Cloruro de calcio, CaCl2 1.0 g Sulfato de Magnesio, MgSO4 3.0 g Fosfato de potasio monobásico, KH2PO4 7.0 g Fosfato de potasio dibásico, KH2PO4 3.0 g Cloruro de sodio, NaCl 1.0 g Agregue 10 ml de cada solución madre a un matraz conteniendo 940 ml de agua destilada y 18 | P á g i n a

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finalmente adicione una gota de cloruro férrico, FeCl3 al 1.0%. Si desea solidificar el medio incorpore 15 g de agar por litro. B. Medio de cultivo de Pringsheim (PGM) Pese las siguientes sales: Nitrato de potasio, KNO3 0.20 g Fosfato diamonico, (NH4)2 HPO4 0.020 g Sulfato de Magnesio, MgSO4 7H2O 0.010 g Cloruro de calcio, CaCl2 6H2O 0.0005 g Cloruro de ferrico, FeCl3 0.0005 g Agar 30.00 g Para preparar el medio de cultivo se adicionan las sustancias anteriormente citadas a 2 litros de agua destilada o del grifo. C. Solución de Moore Agregue a un litro de agu7a destilada las siguientes cantidades de sales: Nitrato de amonio, NH4NO3 0.5 g Fosfato de potasio monobásico, KH2PO4 0.2 g Sulfato de Magnesio, MgSO4 7H2O 0.2 g Cloruro de calcio, CaCl2 2H2O 0.1 g Para hacer utilizado el medio hacer una dilución en una relación 1:1 con agua destilada y agregue 1ml de la suolucion de micronutrimentos que acontinuacion se presenta, por cada litro de medio diluido, justo antes de meter a esterilizar. Solución de micronutrimentos o elementos traza para un litro de agua destilada. 0.04 g Cloruro de manganeso, MnCl2 4H2O Acido bórico, H3BO3 0.06 g Cloruro de zinc, ZnCl2 0.06 g Cloruro de cobre, CuCl2 2H2O 0.03 g Oxido de molibdeno MoO3 0.015g 0.25 g Cloruro de ferrico, FeCl3 Yoduro de potasio, Kl 0.001 g 0.04 g Cloruro de calcio, CaCl2 6H2O Sulfato de sodio, NaSO4 6H2O 0.045 g Nota: incorpore la solución de cloruro férrico a la solución de elementos traza hasta el final, justo antes de esterilizar. D. Medio nutritivo de Thompson empleado para el cultivo de gametofitos (Klekowski, 1969) Macro elementos Solución madre A. Nitrato de amonio, NH4NO3 2.5/100 B. Fosfato de potasio monobásico, KH2PO4 2.0 /100 C. Sulfato de Magnesio, MgSO4 7H2O 1.0 /100 D. Cloruro de calcio, CaCl2 1.0/100 Micro elementos Solución madre E. Sulfato de Manganeso, MnSO4 4H2O F. Sulfato de cúprico, CuSO4 5H2O

0.022 0.024 19 | P á g i n a

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G. Sulfato de zinc, ZnSO4 7H2O H. Acido bórico, H3BO3 I. Molibdato de amonio (NH4)6Mo7O24H2O J. Sulfato de ferroso, FeSO4 7H2O K. EDTA, Na2C10 H14 N2O82H2O 3.7 (Ácido etilendiaminotetracético disódico)

0.029 0.186 0.0035 2.5

Ingredientes del medio de cultivo: 1. 1 litro de agua 2. 10 g de agar 3. Adicione cada una de las soluciones en la cantidad que se indica acontinuacion: A.5 ml B. 25 ml C.12 ml D. 2 ml 1.- Agregue 10 ml de cada una de las soluciones madre de microelementos y esterilice a 20 libras de presión. 2.- Llene las cajas de Petri (Previamente esterilizadas) con el medio de cultivo estéril y déjelo solidificar. 3.- Seleccione pinnas con esporangios maduros y cerrados y proceda a esterilizarlas de la siguiente manera: con unas pinzas finas pase las pinnas por vidrios de reloj con alcohol etílico a 96 %, blanqueador al 1 % y agua destilada esterilizada, respectivamente. 4.- Coloque las pinnas esterilizadas en un portaobjetos; añada unas gotas de agua destilada esterilizada y con agujas de disección rompa los esporangios para dejar en libertad las esporas y escúrralas sobre las placas de agar. 5.- En caso de usar esporas previamente recolectadas en sobres de papel, tamícelas para eliminar residuos de tejidos y siémbrelas con un pincel, espolvoreándolas sobre la placa de agar. 6.- Etiquete las cajas con los siguientes datos: género (y especie, si se conoce), Fechas de recolección y de siembra y medio de cultivo utilizado. Envuelva una de las cajas ya sembradas con el papel de estaño y la bolsa de polietileno negro. .. . 7.- Para evitar la pérdida de humedad coloque las 5 cajas en la bolsa de polietileno. 8.- Colóquelas en un estante abierto, a 24°C aproximadamente, con un foto período de 12 horas luz y 12 horas oscuridad; de no ser posible lo anterior coloque las bolsas con las cajas en el antepecho de una ventana bajo luz difusa. 9.- Agregue unas gotas de agua destilada estéril a cada caja, una vez por semana.

PROCEDIMIENTO PARA OBSERVACIÓN DE GAMETOFITO 1.- Prepare 1 o 2 portaobjetos sobre los triángulos de vidrio y ponga una gota de agua en el centro de cada uno. 2.- Observe al microscopio estereoscópico cada una de las cajas de Petri en donde se encuentren creciendo gametofitos de los ejemplares utilizados en la práctica número dos o de las especies con que se cuente, y fije su atención en su distribución, grado de Desarrollo y fijación al medio en que se encuentran. 3.- Observe primero las cajas de cultivo con fecha de siembra más reciente, para ver gametofitos jóvenes y al final los más desarrollados, incluso que presenten algunos esporofitos jóvenes.

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4.- Con ayuda del microscopio estereoscópico examine las cajas con gametofitos, seleccione fases en distinto grado de Desarrollo y con cuidado tómelos con la punta de la aguja de disección y deposítelos en la gota de agua previamente puesta en el portaobjetos; coloque un cubreobjetos y obsérvelos al microscopio compuesto a 10x, 40x y, si es necesario, a 100x. 5.- Haga esquemas con leyendas alusivas de las diversas fases observadas en secuencia de su desarrollo, anotando la edad de los gametofitos. 6.- En los esquemas anexos señale las siguientes estructuras: cubierta de la espora, cojinete, rizoides, zona meristemática, alas, pelos, anteridios y arquegonios.

V. RESULTADOS 1. Observe los cultivos cada 8 días con el microscopio estereoscópico, excepto la caja envuelta en papel estaño; cuando se observen esporas germinadas, transfiéralas con una guja de disección a portaobjetos con una gota de agua destilada; cúbralas con un cubreobjetos y obsérvelas al microscopio compuesto. 2. Haga esquemas con las leyendas alusivas de las diversas fases observadas en su secuencia de desarrollo, anotando en ellos la edad de los cultivos.

3. ¿De cuántos días fue su período de latencia? ______________________________________________________________________________ 4. Mencione las diferencias morfológicas entre la fase unidimensional, bidimensional y adulta. ______________________________________________________________________________ ______________________________________________________________________________ _____________________________________________________________________________ 5. ¿A los cuantos días aparecen los anteridios y los arquegonios? ______________________________________________________________________________ ______________________________________________________________________________ 21 | P á g i n a

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6. Haga un esquema de un gametofito adulto con leyendas alusivas.

7. Al final del experimento revise la caja envuelta en polietileno negro. 8. Haga un esquema del ciclo de vida de un helecho ubicando en él las fases observadas, mediante lápiz o pluma de color rojo.

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6.- CUESTIONARIO 1.- Defina qué es una espora y qué condiciones requiere para poder germinar. _____________________________________________________________________________________

______________________________________________________________________________ ______________________________________________________________________________ ______________________________________________________________________________ 2.- ¿Cuál es el significado de los gametofitos desde el punto de vista biológico? ____________________________________________________________________________________ ______________________________________________________________________________ ______________________________________________________________________________ ______________________________________________________________________________ 3.- De acuerdo a las características de los anteridios y de los arquegonios observados durante la práctica ¿usted considera que son del tipo eusporangiado o leptosporangiado? ____________________________________________________________________________________ ______________________________________________________________________________ ______________________________________________________________________________ ______________________________________________________________________________ ______________________________________________________________________________ 4.- A partir de la germinación de las esporas ¿En qué tiempo se desarrollan arquegonios y anteridios en los gametofitos? ____________________________________________________________________________________ ______________________________________________________________________________ ______________________________________________________________________________

BIBLIOGRAFÍA •

• • • • • • • • • •

Bold, H. C., C. J Alexopoulos & T. Delevoryas. 1987. Morphology of Plants and Fungi. 4th Edition. Harper & Row, Publishers, New York. 912 pp. Foster, A. S. & E. M. Gifford. 1974. Compartive Morphology of Vascular Plants. 2nd Edition. W. H. Freeman and Co. San Francisco. Kaulfuss, G. F. 1827. Das Wesen der Farnkrauter, besonders ihrer Fruchttheile, zugleich mit Rucksicht auf systematische Anordnung betrachtet. Leipzig . Klekowski, E. J. Jr. 1969. Reproductive biology of the Pteridophyta III. A study of the Blechnaceae. J. Linn.Soc. Bot. 62: 361-377. Miller, J. H. 1968. Fern gametophytesas experimental Material.Bot. Rev.(Lancaster) 34:361-440. Nayar, B. K & S. Kaur. 1971. Gametophytes of homosporous-ferns, Bot. Rev. (London) 37(3): 295-396. Nayar, B. K. & S. Kaur. 1971. Gametophytes of homosporous ferns. Bot. Rev. (Lancaster) 37(3): 295-396. Parihar, N. S. 1965. An Introduction to Embryophyta. II. Pteridophyta, Central Book Depot. Allahaba d, India. pp. 224-236. Pérez-García, B. & Ma. E. Fraile Ortega. 1985. El gametofito de Holodictyum ghiesbreghtii (Fourn.) Maxon. Biótica 10(3): 399-314. Pérez-García, B. & I. Reyes-Jaramillo. 1990. Desarrollo del gametofito de Elaphoglosum petiolatum (Sw.) Urban (Lomariopsidaceae). Acta Botánica Mexicana. 10: 23-30. Pérez-García, B. & Ma. E. Fraile Ortega. 1985. El gametofito de Dicksonia sellowiana (Presl) Hooker. Biótica 11 (4): 281-287. Pérez-García, B. 1989. Morfogénesis de gametofitos de Cyatheaceae (Pteridophyta: Filicales). Tesis doctoral. Facultad de Ciencias, UNAM. 1-224 pp.

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Fig.1. Fases en el Desarrollo del gametofito de helechos. A, B, C, Gametofitos filamentosos de 2, 4 y 6 células protálicas respectivamente. D, E y F, gametofitos bidimensionales. G, zona meristemática. H. Talo gametofito adulto. I, arquegonio. J. Anteridio. 3) Gametofito y sus partes; 4) Gametofito con esporofito joven.

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PRÁCTICA Nº. 4

MORFOLOGÍA DE POLYPODIOPHYTA

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I. INTRODUCCIÓN La División Polypodiophyta agrupa a los helechos verdaderos, que corresponden al grupo más diverso de las Pteridophytas. Un helecho esta compuesto por las mismas partes que cualquier otro tipo de planta, raíces, tallos y hojas, pero estos órganos presentan apariencia y proporciones diferentes a las de otras plantas. La parte mas llamativa de un helecho es la hoja a la cual muy comúnmente se le llama fronda. La hoja o fronda en este grupo de plantas es siempre megafila, que ha diferencia de la hoja micrófila (de los helechos primitivos), la megáfila tine más de una nervadura (Fig. 1). El tallo es la parte relativamente inconspicua, su función principal es la producción de las hojas, raíces y almacenamientos de sustancias de reserva. Generalmente los tallos crecen horizontalmente sobre el suelo y producen raíces de tipo adventicio las cuales ayudan a anclar la planta al suelo, rocas o troncos de los árboles (Figura 2).

II.

OBJETIVO • Observar los principales caracteres morfológicos de la división Polypodiophyta.

III. • • • • • • • • • • •

MATERIAL Microscopio fotónico. Lupa estereoscópica Agujas de disección Portaobjetos Cubreobjetos Vaso de precipitado Caja de petri Mechero bunsen Rejilla de asbesto NaOH al 5% Solución de hipoclorito de sodio al 30%

Ejemplares de herbario • Los géneros: Adiantum, Dryopteris, Pteridium, Polypodium, Pteris, Cheilantes, Asplenium, Blechnum, Woodwardia, Woodsia, Elaphoglossum, Bomeria, Pellaea.

IV.

DESARROLLO

1.- Frondas (frondes). La fronda u hoja, se divide en dos partes principales, el estipe o pecíolo y la lámina; al eje central de la lámina se le llama raquis. La lámina puede carecer de divisiones (simples) o estar dividida (compuesta) en diferentes grados, cada grado de división tiene un nombre específico: Pinnatifida cuando las divisiones de la lámina llegan casi hasta el raquis; Pinnada cuando las láminas están divididas en foliolos (pinnas) que se unen al raquis por medio de un peciolulo o pueden ser sésiles. Las divisiones primarias se llaman Pinnas y los segmentos de segundo y de tercer orden se denominan Pinnulas, las láminas mas divididas se designan como bipinnadas, 26 | P á g i n a

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tripinadas o tetrapinnadas de acuerdo al número de divisiones; cuando presentan grados intermedios de división se usa el termino pinnatifido que significa que no está suficientemente dividida para llamarla pinnada (Fig. 3). Además, algunos helechos (principalmente los eusporangiados) las frondas se especializan en dos tipos: algunas láminas realizan la fotosíntesis (fronda estéril) y otras (en la misma planta) se especializan para la producción de esporangios (fronda fértil). Estas especies se les conoce como “con frondas dimorfas” (Fig. 4). Actividad 1 • En cada uno de los ejemplares que se te proporcionan identifica cada una de las partes de que constar un helecho, posteriormente clasifica las pinnas de acuerdo con su grado de división. 2.- Tallo Generalmente el tallo de los helechos es un rizoma y puede ser de diferentes formas (Fig. 5): Cortamente rastreros o cortamente cespitosos, cuando las frondas se agrupan muy cerca una de otras. Largamente rastreros o largamente cespitosos, cuando las frondas se encuentran muy espaciadas. En algunos otros el tallo es ascendente o erecto en su parte apical o raramente forma un tronco corto. El rizoma y con frecuencia las frondas están cubiertas con un indumento protector que puede ser de pelos o escamas. Los pelos son estructuras lineales de una o más células de longitud y una célula de grosor (Fig. 6). Las escamas son parecidas a pelos pero más anchas, generalmente de varas células de ancho. Aunque normalmente de una célula de grosor. Usualmente tiene color uniforme (concoloras) pero en otras el centro de las escamas es de un color café oscuro o negro y el margen de un color mas claro (bicolores). Un tipo distinto de escamas son las escamas clatradas. Las células de estas escamas son translucidas y de colores brillantes, como los vitrales de las iglesias, sus paredes celulares son muy gruesas y opacas (Fig. 7). Actividad 2 • En los ejemplos de herbario observe los diferentes tipos de rizoma, auxiliándose con las figuras que se proporcionan. • Observe el indumento del tallo en la lupa, en caso de presentar escamas, con una aguja de disección extráigalas y clasifíquelas auxiliándose con la figura. 3.- Venación Se refiera a la manera en que las hojas de los helechos se irrigan por el sistema vascular. En muchos helechos, las venas son libres, es decir corren de la vena media hacia el margen sin formar anastomosis, ellas se pueden ramificar unas con otras. La venación libre puede ser de dos tipos: dicotomica y pinnada. La venacion dicotomica es el tipo de ramificación que se va dividiendo en dos equivalentes y así sucesivamente. La venación pinnada presenta una vena prominente o una serie de venas principales formando ángulos de 30º a 45º a lo largo de su longitud.

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Cuando las venas están unidas entre si la venacion es reticulada, y consiste en un patrón complejo de venacion con venas mayores y menores formando una red o retículo (Fig. 8). Actividad 3 • Para observar la venación coloca pinnas de diferentes helechos en un vaso de precipitados en la solución de NaOH al 5% déjala hervir de 3 a 5 minutos, sácalas y colócalas en una caja de petri con agua de 10 a 15 minutos, posteriormente coloca las en solución de hipoclorito de sodio a 30% y déjalas hasta que los tejidos se transparenten, coloca las pinnas en agua fría, pon una pinna en un portaobjetos, colócale un cubreobjetos y observa en la lupa estereoscópica la venacion e identifica su tipo correspondiente para cada helecho. 4.- Esporangios Los helechos presentan dos tipos de esporangios: Eusporangios y Leptosporangios. Los primeros se originan a partir de un grupo de células y están presentes en todos los helechos primitivos y algunos helechos verdaderos. Sin embargo, en la mayoría de los helechos verdaderos los esporangios son de tipo leptosporangios, los cuales se originan a partir de una célula y presentan un anillo y un tallo delgado (pie) o pedicelo (Fig. 9). El anillo generalmente es vertical, aunque en algunas especies puede tener otra posición (Fig. 10). Los esporangios nacen en el envés o en el margen de la fronda (hoja) estos se presentan en agrupaciones llamados soros. Cuando llegan a la madurez, los esporangios parecen de color café, se pueden encontrar dispersos en toda la lámina (condiciones acrosticoide) o bien agrupados en soros o cenosoros continuos o discontinuos (Fig. 11). En la mayoría de los helechos los soros se localizan en el envés de la hoja entre la vena media y el margen (posición media) o cerca del margen (posición marginal). Con frecuencia presenta una cubierta protectora llamada indusio que cubre al soro inmaduro, los soros marginales frecuentemente están cubiertos por el margen reflejo de la hoja y se le conoce como falso indusio, o bien pueden estar desnudos. El indusio puede presentar diferentes formas: basifico cuando se encuentra fijo o adherido por su base, reniforme cuando tiene forma de riñón, peltado cuando tiene forma de paraguas y en forma de copa (Figs. 12 y 13). Actividad 4 • En cada uno de los ejemplares que se proporcionan observa la posición, agrupación, protección y forma de indusio que presentan los esporangios, auxiliándose con las figuras, darles su nombre correspondiente, realiza esquemas. 5.- Esporas. Las esporas pueden ser de dos tipos: monoletes y triletes (citadas en la práctica No. 1, inciso 4.5., Fig. 14). Actividad 5 • Con una aguja de disección en cada uno de los ejemplares que se proporcionan toma cuidadosamente los esporangios colócalos sobre un portaobjetos presionando para sacar las esporas, agrégales una gota de agua, coloca el cubreobjetos y observa al microscopio. • Identifica las esporas monoletes y triletes. 28 | P á g i n a

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BIBLIOGRAFÍA. •

• • • • •

Arreguín Sánchez, M. L., R. Fernández Nava y D. L. Quiroz. 2004. Pteridoflora del Valle de México. SEP/ Escuela Nacional de Ciencias Biológicas-IPN. México, D.F. 387 pp. Cronquist, A.1987. Introducción a la Botánica.Compañía Editorial Continental.S.A.México,D.F. 193 pp. Font-Quer. 1953. Diccionario de Botánica. 4ªreimpresión. Editorial Labor.S.A.México,D.F. 1244pp. Foster. A.S. y E.M. Gifford. 1974. Comparative morphology of vascular plants. W.F. Freeman and Co. San Francisco. 751pp. Mickel, J. T. y Smith, A.R. 2004. The Pteridophyte of Mexico. The New York Botanical Garden. New York, EU. 1054 pp. Scagel. R.F., G.E. rouse, J.R. Stein., Bandoni. W.B. Schofield., T.M.C. Taylor. 1995. El reino Vegetal. 3ª edición. Omega. Barcelona.

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Fig. 1. Hoja micrófila y megafila

Fig. 2. Partes de un helecho

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Fig. 3. Tipos de hoja en Polipodiophyta de acuerdo al grado de división

Botrychium

Ophioglossum

Elaphoglossum

Fig. 4. Frondas(es) dimorfas

A)

B) Fig. 5. Tipos de tallo

C)

A: Largo rastrero o cespitoso, B: corto rastrero o cespitoso y C: ascendente o erecto.

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Fig. 6. Tipos de pelos

Fig. 7. Tipos de escamas por inserción y color.

Libre dicotómica

Libre dicotómica

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Libre pinnada

Cerrada o reticulada

Fig. 8. Tipos de venación.

Eusporangio

Leptoesporangio Eusporangio, a partir de un grupo de células; Leptosporangio, a partir de una sola célula.

Fig. 9. Tipos de esporangios

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Anillo vertical

Anillos apicales (Osmunda y Schizaea)

Anillo oblicuo (Hymenophyllum)

Esporangio con cerdas o setas

Fig. 10. Tipos de anillos en leptoesporangios

Soros desnudos

Condición acrosticoide

Soros desnudos en la parte terminal de las venas Alimentados por una vena

Soros en la parte media de las venas

Soros desnudos en la parte terminal de las venas Alimentados por dos venas

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Cenosoros continuos Cenosoros discontinuos o interrmpidos (En ambos, son soros costales y corren de manera paralela con respecto a la nervadura)

Fig. 11. Agrupación y distribución de los esporangios y soros en la lámina

Indusio basifijo o linear

Indusio en forma de copa

Indusio reniforme

Indusio valvado, con tricoma

Indusio peltado

Indusio ovado e indusio globoso Ambos basifijos

Fig. 12. Tipos de indusio

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Cheilanthes Margen reflejo interrumpido

Pteris Margen reflejo continuo

Dennstaedtia

Midella Indusio inframarginal

Pteridium Margen reflejo e indusio interno

Fig. 13. Protección de esporangios

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Morfología de polypodiophyta Cuadro comparativo

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PRÁCTICA Nº. 5

CLASIFICACIÓN Y DETERMINACIÓN DE PTERIDOPHYTAS

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I. INTRODUCCIÓN. Los distintos sistemas de clasificación de Pteridophyta agrupan a las plantas más sencillas desde el punto de vista estructural y también a las más complejas. La clasificación seguida dentro del programa de plantae II. Corresponde a la de Conquist, y comprende cinco divisiones, las cuales se diferencian principalmente por características del esporofito y en particular de los esporangios. Los helechos corresponden al grupo más de Pteridophytas, se estima que existen 10,000 especies agrupadas en dos subclases (Eusporangiatae y Leptosporangiatae) y seis ordenes que se encuentran principalmente en habitas sombreados y húmedos y en climas tropicales o subtropicales. La determinación taxonómica es un proceso de remisión cuidadosa de las características particulares de cada especie con el fin de separarla de otras. Este proceso se facilita por el uso de herramientas metodológicas como son las claves de determinación taxonómica; para el caso de los helechos verdaderos las claves se basan en las siguientes características del esporofito: Grado de división de las hojas y nervación; agrupación, posición y tipo de protección de los esporangios; indumento de la lamina y rizoma, así como el tipo de esporas, principalmente.

II.

OBJETIVO. • Que el alumno adquiera las herramientas metodológicas y prácticas para la determinación de Polypodiophyta.

III. DESARROLLO. Cada uno de los ejemplares de Polipodiophyta que se encuentran depositados en las mesas de trabajo debe revisarse con cuidado para reconocer las estructuras del esporofito que serán de utilidad en la determinación taxonómica. Las claves de determinación proporcionadas para realizar esta actividad son de tipo dicotómico, por lo que se recomienda leer con cuidado las dos opciones antes de elegir la correcta, teniendo en cuenta que la revisión del ejemplar tanto a simple vista como a la lupa es necesaria para tomar una decisión adecuada en la determinación. Actividad 1 • Utilizando las claves de Pteridophytas y cuadros que se anexan en este manual de prácticas clasifica y determina cada uno de los ejemplares que se proporcionan. IV.

MATERIAL. • Microscopio compuesto • Microscopio estereoscópico • Claves de determinación Material biológico • Ejemplares de Polypodiophyta

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Clasificación de Pteridophytas Cuadro de clasificación DIVISIÓN

CLASE

SUB CLASE

ÓRDEN

FAMILIA

PSILOTOPHYTA*

PSILOTOPSIDA

PSILOTALES

PSILOTACEAE

LYCOPODIOPHYTA*

LYCOPODIOPSIDA

LYCOPODIALES SELAGINELLALES

LYCOPODIACEAE SELLAGINELLACEAE

ISOETOPSIDA

ISOETALES

ISOETACEAE

EQUISETOPSIDA

EQUISETALES

EQUISETACEAE

EQUISETOPHYTA*

EUSPORANGIATAE

OPHIGLOSSALES

SUBFAMILIA

OPHIOGLOSSACEAE CYATHEACEAE PLAGIOGYRIACEAE ADIANTOIDEAE

POLYPODIOPHYTA

PTERIDOIDEAE

POLYPODIOPSIDA PTERIDACEAE

CHEILANTHOIDEAE

POLYPODIACEAE LEPTOESPORANGIATAE FILICALES GRAMMITIDACEAE DENNSTAEDTIACEAE THELYPTERIDACEAE ASPLENIACEAE WOODSIACEAE ATHYRIACEAE

DRYOPTERIDACEAE

BLECHNACEAE LOMARIOPSIDACEAE MARSILEACEAE SALIVINIALES

SALVINIACEAE

GÉNERO Psilotum Lycopodium Selaginella Isoetes Equisetum Ophioglossum Botrychium Cyatheae Plagiogyria Adiantum Aleuritopteris Anogramma Pityrogramma Pteris Argyroschoma Astrolepis Bommeria Cheilanthes Mildella Pellaea Campyloneurum Pecluma Phlebodium Pleopeltis Polypodium Melpomene Tersichore Pteridium Thelypteris Asplenium Woodsia Athyrium Cystopteris Dyopteris Polystichum Plecosorus Phanerophlebia Blechnum Woodwardia Elaphoglossum Marsilea Azolla Salvininia

*Divisiones de helechos afines o primitivos. •

Arreguín Sánchez, M. L., R. Fernández Nava y D. L. Quiroz. 2004. Pteridoflora del Valle de México. SEP/ Escuela Nacional de Ciencias Biológicas-IPN. México, D.F. 387 pp.

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Clasificación de Pteridophytas Categoria taxonómica de las familias ASPLENIACEAE Asplenium ATHYRIACEAE Athyrium Cystopteris AZOLLACEAE Azolla BLECHNACEAE Blechnum Woodwardia CYATHEACEAE Cyatheae DENNSTAEDTIACEAE Pteridium DRYOPTERIDACEAE Dryopteris Polystichum Plecosorus Phanerophlebia EQUISETACEAE Equisetum GRAMMITIDACEAE Melpomene Tersichore ISOETACEAE Isoetes LYCOPODIACEAE Lycopodium LOMARIOPSIDACEAE Elaphoglossum MARSILEACEAE Marsilea

OPHIOGLOSSACEAE Botrychium Ophioglossum PLAGIOGYRIACEAE Plagiogyria POLYPODIACEAE Campyloneurum Pecluma Phlebodium Pleopeltis Polypodium PSILOTACEAE Psilotum PTERIDACEAE Adiantum Aleuritopteris Anogramma Argyrochosma Astrolepis Bommeria Cheilanthes Mildella Pellaea Pityrogramma Pteris SALVIACEAE Salvininia SELAGINELLACEAE Selaginella THELYPTERIDACEAE Thelypteris WOODSIACEAE Cystopteris Woodsia

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PRÁCTICA Nº. 6

CARACTERISTICAS GENERALES DE PINOPHYTA (GIMNOSPERMAS)

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I. INTRODUCCIÓN Las gimnospermas comprenden plantas con óvulos y semillas desnudos los cuales se forman sobre la superficie de la magasporófila (escamas del cono). La mayoría de sus componentes carece de vasos y en su lugar se encuentran traqueidas, presentan canales resiníferos, las “flores” están reducidas a sacos poliníferos (microsporangios) y a los óvulos (megasporangios), generalmente dispuestos es estróbilos o conos, con un ciclo de vida heterosporico. Existen cuatro clases: Cycadopsida, Pinopsida, Ginkopsida y Gnetopsida. II.

OBJETIVO • Observa y reconoce las características principales de las gimnospermas.

III. MATERIAL • Lupa estereoscópica, agujas de disección y pinzas. Material biológico • Cycas, Dioon, Ceratozamia, Taxodium, Cupressus, Juniperus, Cryptomeria, Araucaria, Podocarpus, Pinus, Abies, Pseudotsuga, Picea, Ginkgo biloba y Ephedra IV.

DESARROLLO

1.- Hojas Las hojas de las gimnospermas vivientes son hojas simples, que constan de una sola lámina no segmentada. En algunas formas primitivas existe segmentación de la hoja y se conoce como hoja compuesta. 1.1. Forma de las hojas. Aciculares, hojas largas y muy delgadas en forma de aguja que pueden ser puntiagudas, lineares son las hojas alargadas y aplanadas un poco mas anchas que las aciculares, lanceoladas tienen forma de lanza, lobuladas, tienen lóbulos o partes anchas, flabeladas en forma de abanico. Actividad 1 • De los ejemplares botánicos observe las diferentes formas de hojas: acicular, linear, lanceolada, lobulada, flabeladas y escamosa. 2.- Filotaxia Se refiere a la disposición de las hojas en la ramilla y pueden ser: alterna las hojas se encuentran aisladas en diferentes nudos, opuesta se encuentran una opuesta a la otra en el mismo nudo, espiralada cuando se encuentran dispuesta en forma helicoidal, verticiladas si 3 o más hojas salen de un mismo punto o nudo. Actividad 2 • De cada uno de los ejemplares identifica el tipo de filotaxia. 3.- Sexualidad Entre las gimnospermas es común encontrar individuos monoicos, es decir que en el mismo individuo se producen tanto las estructuras femeninas como las masculinas. Sin embargo, también se presentan especies dioicas, en las cuales algunas son plantas femeninas y otras son masculinas, dentro de la misma especie.

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Actividad 3 • De cada uno de los ejemplares identifica el tipo de sexualidad que presentan. 4.- Persistencia de la hoja Las hojas tienen diferente tiempo de permanencia en la ramilla. Si se desprende en el primer año son caedizas, si se conserva hasta 3 años es semipersistente y más de 3 años es persistente. Actividad 4 • Diferencia del Material herborizado una hoja caediza de una hoja persistente. 5.- Estróbilos Se refiere a las estructuras de reproducción masculina y femenina, antes de la polinización y fecundación, se diferencian por: los del sexo masculino son portadoras del polen dentro de los sacos polínicos o microesporangios y los femeninos son portadores de los óvulos, que la ser fecundados se transforman en las semillas. 5.1 Conos Para fines de taxonomía son utilizados las estructuras femeninas maduras o conos. El color es una característica importante hay conos que pueden tener colores amarillentos, ocres, obscuros, cafés, castaños, y sus combinaciones que son útiles en la identificación. La forma, varia también en las diferentes especies: cilíndrica, cuando el diámetro es semejante en todo el cono, ovoide en forma de huevo, oblonga, mas largo que ancho, tendiente a la forma cilíndrica; cónica si es de esta forma, globosa si es casi redondo. La consistencia puede ser leñosa si las escamas son lignificadas o carnosa de naturaleza suave. Dehiscencia se refiere a la liberación de la semilla mediante la apretura de escamas y se dice que es dehiscente. Cuando no ocurre en forma natural se dice que es indehiscente. 6. Semilla La semilla es el producto de la fecundación del óvulo a través del polen y el posterior desarrollo del embrión. Esta puede ser alada cuando presenta una expansión llamada ala, consistencia papiráceae, o bien si es carnosa carece de ala. Actividad 5 • En cada uno de los ejemplares que se te proporciono, observa el sexo, color, forma, consistencia y dehiscencia del estróbilo y del cono. En la semilla distingue si es alada o carnosa.

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Manual de prácticas de botánica II Ciclo 2011 BIBLIOGRAFÍA • Cronquist, A. 1987. Introducción a la Botánica. Compañía Continental.S.A. México D. F. 193 pp. • Font-Quer, 1953. Diccionario de Botánica.4ª reimpresión. Labor. S.A. México D. F. 1244 pp. • Foster, A. S. and E.M Gifford. Jr. 1974. Comparative morphology of vascular plants. W. F. Freeman and Co. San Francisco. 751 pp. • Scagel, R. F., G. E. Rouse; J.R. Bandoni; W. B. Schoield; T.M.C. Taylor. 1995. El reino vegetal. 3ª edición. Omega. Barcelona.

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Caracteristicas generales de pinophyta (gimnospermas)

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PRÁCTICA Nº. 7

CARACTERISTICAS DE IMPORTANCIA PARA LA IDENTIFICACIÓN DEL GÉNERO Pinus

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I. INTRODUCCIÓN Los pinos son árboles siempre verdes, más o menos resinosos, con hojas aciculares (en forma de aguja), en numero de 1 a 8, protegidas en la base por una vaina cuando son jóvenes y caediza o persistente cuando son adultas. Las estructuras reproductoras son los estróbilos y los femeninos después de la fecundación constituyen los conillos y los conos en la madurez., los cuales son leñosos con escamas que contienen semillas.

II.

OBJETIVO • Que el alumno conozca las características morfológicas de importancia para la identificación del genero Pinus.

III. MATERIAL • Lupa estereoscópica, agujas de disección y pinzas. Material biológico • Ejemplares herborizados del género Pinus

IV.

DESARROLLO

1.- Hojas Las hojas son aciculares, es decir, en forma de aguja, largas, más o menos delgadas y agudas en el ápice, están reunidas en grupos llamados fascículos (Figura 1), por medio de brácteas que constituyen la vaina. La ramillas pueden ser erectas o colgantes (Figura 4) y esta característica debe observarse en campo, en el momento de la colecta. El número de hojas por fascículo varía según la especies y en parte según las condiciones del medio, siendo de 3 y 5 las cifras más comunes en pocos casos se observan 4, 6, 7 y aún 8. Su longitud varía de 2.5 a 40 cm. Las hay también solitarias y por pares, en algunos otros se presentan en grupos de 3 a 5 en el mismo árbol y aún en la misma ramilla heteromonía normal. En el interior de las hojas se pueden distinguir los canales resiníferos, los cuales pueden variar de acuerdo a su posición: Internos, medios, medios con septos y externos (Figura 5) y en corte transversal, puede distinguirse que las células de las endodermis presentes diferencias en el grosor de sus paredes (Figura 6). 1.1. Vaina Consiste en un grupo de escamas en la base de los fascículos y que están más o menos unidas o sobrepuestas (Figura 2). En algunos pinos las vainas son persistentes, es decir, acompañan a las hojas de manera permanente, mientras que otras se desprenden al madurar las hojas, llamándose entonces vainas caedizas (Fig. 3)

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1.2. Brácteas Son estructuras en forma de escama pequeña, que se encuentran colocadas en la base de los fascículos. Las brácteas pueden tener una base decurrente, es decir que abrazan o se extienden en la ramilla, o no decurrente, que no tiende a rodear a la ramilla (Fig. 7). Actividad 1 • En cada uno de los ejemplares que se te proporcionan, realiza observaciones de hojas, anota si presentan vaina o carecen de ella, cuenta el número de hojas por fascículo, anota el tipo de brácteas (si son decurrentes o no decurrentes). 2.- Estructuras reproductoras Los pinos son plantas monoicas, es decir, producen estróbilos masculinos y femeninos en un mismo árbol. No tiene cáliz ni corola, sino únicamente los órganos esenciales, ó sea el androceo y el gineceo. Los masculinos se presentan en estróbilos formados por escamas membranosas, en las cuales hay dos sacos que contienen el polen (sacos poliníferos), en la parte externa o abaxial. Los estróbilos femeninos son subterminales, pedunculados o sésiles, solitarios o agrupados, con escamas o esporófilas más gruesas terminadas comúnmente en espina y con dos óvulos en la parte interna (adaxial) de la base (Fig.8). 2.1 Conos Se les llama comúnmente piñas o con otros nombres y tienen diferentes formas: ovoide: es más ancho en su base y más angosto en su ápice, oblongo: el cono es más largo que ancho, tendiente a la forma cilíndrica, subcilíndrico: muy semejante al cilíndrico, globoso: en forma más o menos redondeada, cónico: cuando es claramente ancho en la base y agudo en el ápice o también se puede presentar combinación de formas. Por su posición puede ser: erguido; cuando se encuentra perpendicular a la ramilla, encorvado se encuentra dirigido hacia la base de la ramilla, reflejado cuando está colocado en forma paralela a la ramilla. 2.2 Pedúnculo Es la estructura que sostiene los conos y pueden ser largo, corto o casi nulo, o nulo y en este último caso el cono es sésil (Fig.9) 2.3. Dehiscencia Los conos pueden ser dehiscentes, es decir que abren en la madurez para liberar la semilla o pueden ser indehiscentes cuando no abren y los conos serotinos, los cuales abren poco a poco en la madurez (Fig. 9). 2.4. Simetría Un cono es simétrico cuando las escamas son del mismo tamaño y se encuentran distribuidas en forma regular sobre el eje y asimétrico cuando las escamas son diferentes en tamaño y el eje se encuentra a un lado o excéntrico e la base (Figura 9). 2.5 Color El color de los conos puede ser: moreno, amarillento, ocre, rojizo, castaño y sus combinaciones; y pueden ser opacos o lustrosos.

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2.6. Persistencia Los conos pueden ser: tenazmente persistentes, cuando permanecen en la rama hasta que esta se seca, otros son persistentes cuando caen algún tiempo después de la dehiscencia en el mismo año o algo más tarde; o bien, son pronto caedizos caen inmediatamente o poco tiempo después de la dehiscencia (Fig. 9). Actividad 2 • En cada uno de los ejemplares que se te proporcionan, observa en los conos la forma, posición, tipo de pedúnculo, si son dehiscentes o no, la simetría, color y persistencia.

3. Escamas Una escama madura presenta las siguientes partes: base o lugar de la inserción, el cuerpo o limbo, bordes, umbo con sus partes conocidas como ápice, apófisis, cúspide, y espina. El umbo es la parte expuesta de sus escamas cuando el cono está cerrado y puede ser regular o irregular, terminal o dorsal. Es terminal cuando ocupa el ápice de las escamas y dorsal cuando está colocado en la parte terminal externa de la escama (Figuras 10 y 11). En el umbo terminal, la extremidad puede ser corta o convexa o bien laminar y más o menos prolongada, reflejada o enroscada (Figura 10). En el umbo dorsal se desarrolla una protuberancia o apófisis que puede ser subpiramidal, cónica gruesa o delgada, aplanada o más o menos saliente. En esta protuberancia se nota una quilla o costilla transversal más o menos levantada; en otros ocasiones se nota también otra costilla perpendicular que hace que la protuberancia sea piramidal, si desaparecen ambas quillas adquiere la forma cónica (Figura 11). En el centro de la apófisis se localiza la cúspide que es más pequeña y de color oscuro, más o menos saliente, a veces hundida y que remata en una espina persistente o caediza. La cúspide se prolonga en ocasiones hasta 25mm, más o menos encorvada. Actividad 3 • Auxiliándote con la figura esquemática identifica cada una de las partes de que consta una escama, en cada uno de los ejemplares que te proporcionan. 4. Semilla La semilla tiene testa dura, generalmente morena o negruzca, oval o vagamente triangular, que en ocasiones lleva una expansión más o menos desarrolla llamada ala; por lo común se encuentran dos semillas por escama. 4.1 Ala El ala es una estructura de transporte, que impulsada por el viento disemina las semillas llevándolas a considerables distancias. Está constituida por una lámina papirácea, en ocasiones está es completamente adherida a la semilla, al grado que no se puede separar sin destruirse, en cuyo caso se llama adnada. En otras ocasiones lleva en la base dos ganchos formados por tejido higroscópico, que cuando el ambiente está húmedo, abrazan y sujetan la semilla y cuando está húmedo se abren y la sueltan, en tal caso se llama ala articulada o libre (Fig. 12).

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Actividad 4 • En cada uno de los ejemplares identifica el tipo de semilla que presentan. BIBLIOGRAFÍA • • •

Cronquist, A. 1987. Introducción a la Botánica.Compañía Continental.S.A. México D.F. 193 pp. Font-Quer, 1953. Diccionario de Botánica.4ª reimpresión. Labor. S.A. México D. F. 1244 pp. Martínez, M. 1948. Los Pinos Mexicanos. Segunda edición. Ediciones Botas. México D. F.

Fig. 29. Fascículo joven de agujas de pino. Las hojas modificadas que forman la vaina del fascículo se muestran en negro.

Fig. 2 Forma y colocación de las escamas en la vaina en la base del fascículo

Fig. 3 Fascículos de hoja: vaina (a la izquierda ) y sin vaina (a la derecha)

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Fig. 4. Hojas aciculares de pino, en fascículos o grupos rodeados por vainas. En los esquemas, (a) las hojas caídas, encorvadas o con apariencia de marchitas; (b) las hojas erectas sobre la ramillas y, (c) hojas colgantes o suspendidas

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a)

b) Canales resiníferos externos

b)

c) Fig 5. Corte transvesrsal de hojas de Pinus mostrando la estructura interna y posición de los canales resiníferos: a) externos; b) medios; c) medios con septos; d) internos

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Células de la pared endodermal engrosadas Células de la pared endodermal delgadas Fig. 6. Células de la pared endodermal en diferentes estados.

No decurrentes

Decurrente Fig. 7 Brácteas

a)

b)

Fig. 8 Estructuras reproductoras a) Cono masculino; son amentiformes, pequeños, de 2-3 cm. Están formados por microsporofilos que se disponen en espiral alrededor del eje, portando dos sacos polínicos cada uno b) Cono femenino, son leñosos, de colores diversos y persisten en la planta, al abrirse las escamas leñosas liberan las semillas. 54 | P á g i n a

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d)

e)

f)

Fig.9 a) Cono de Pinus oocarpa, con escamas ampliamente abiertas en forma de roseta; b) P. oocarpa, las escamas están fuertemente cerradas, frecuentemente por años; el pedúnculo corpulento, largo, fuerte y muy tenaz (tenazmente persistente); c) Cono del pino piñonero Pinus cembroides, fácilmente deciduo, sésil, el pedúnculo muy pequeño, casi no visible, las escamas pronto se desintegran después de que el cono cae. d) Cono simétrico; e) Dos especies con cono asimétrico

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a)

b)

c)

d) Fig. 10 Escamas: a), Pino duro (Diploxilon), b) Pino suave (Haploxilon) c) Escama con umbo dorsal de un pino duro; d), Escama de pino suave son umbo terminal.

e)

f)

g)

Fig. 11 Partes de una escama con umbo dorsal

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Semilla sin ala

Semilla con ala rudimentaria

Semilla con ala articulada

Semilla con ala adnada

Fig. 12 Tipos de semillas en Pinus

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Características de importancia para la identificación del genero Pinus.

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PRÁCTICA Nº. 8

CLASIFICACIÓN E IDENTIFICACION DEL GÉNERO Pinus

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I. INTRODUCCIÓN Los representantes de este género constituyen las especies dominantes en los bosques de Coníferas de México, los cuales tiene gran importancia económica en la producción de madera y de resina, que es fuente importante de donde se extraen diversos productos.

II.

III.

OBJETIVO • Que el alumno adquiera las herramientas metodológicas y prácticas para la determinación del género Pinus.

MATERIAL • Claves para la determinación taxonómica.

Material biológico • Diferentes ejemplares de especies de Pinus.

IV. DESARROLLO La clasificación de los pinos se basa principalmente en los caracteres de las hojas y de los conos, en la presencia de alas en las semillas y en la caducidad o persistencia de las vainas. Actividad 1 • En cada uno de los ejemplares que se le proporcionen, revisa cuidadosamente cada una de las estructuras que son de utilidad, para la determinación taxonómica, usa las claves y recuerda que son de tipo dicotómico. • Una vez identificadas las especies, ubícalas de acuerdo al grado de clasificación que se te proporciona, de tal manera que se puedan reconocer las características Haploxylon y Diploxylon.

BIBLIOGRAFÍA •

•

Cronquist, A. 1987. Introducción a la Botánica. Compañía Continental. S.A. México D. F. 193 pp. Martínez, M. 1948. Los Pinos Mexicanos. Segunda edición. Ediciones Botas. México D. F. 362 pp.

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CLASIFICACIÓN DE LOS PINOS MEXICANOS (De acuerdo con Martínez, 1948) 1. Sección: HAPLOXILON Subsección Paracembra Grupo: Cembroides 1. Pinus cembroides 2. Pinus cembroides var. edulis 3. Pinus cuadrifolia 4. Pinus monophylla 5. Pinus pinceana 6. Pinus culminicola 7. Pinus maximartinezii 8. Pinus nelsoni 9. Pinus juarezensis Subsección Cembra Grupo: Ayacahuite 1. Pinus flexilis 2. Pinus reflexa 3. Pinus ayacahuite brachyptera 4. Pinus ayacahuite veitchii 5. Pinus ayacahuite 6. Pinus lambertiana 7. Pinus strobus chiapensis 8. Pinus rzedowskii 2. Sección: DIPLOXILON Grupo: Leiophylla 1. Pinus leiophylla 2. Pinus chihuahuana 3. Pinus humholzii Grupo: Teocote 1. Pinus teocote a) Pinus teocote f. macrocarpa b) Pinus teocote f. quinquefoliata 2. Pinus herrerai 3. Pinus lawsoni Grupo: Pseudostrobus 1. Pinus tenuifolia 2. Pinus douglasiana 3. Pinus pseudostrobus a) Pinus pseudostrobus coatepecensis b) Pinus pseudostrobus estevezii c) Pinus pseudostrobus apulcensis d) Pinus pseudostrobus oaxacana 4. Pinus pseudostrobus f. protuberans 5. Pinus pseudostrobus f. megacarpa 61 | P á g i n a

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Grupo: Montezumae Subgrupo: Rudis 1. Pinus hartwegii 2. Pinus rudis 3. Pinus cooperi a) Pinus cooperi ornelasi Subgrupo: Montezumae 1. Pinus Montezumae a) Pinus montezumae macrocarpa b) Pinus montezumae lindleyi Subgrupo: Michoacana 1. Pinus michoacana a) Pinus michoacana f. tumida b) Pinus michoacana f. procera c) Pinus michoacana cornuta d) Pinus michoacana cornuta f. nayaritana e) Pinus michoacana quevedoi Grupo: Ponderosa 1. Pinus ponderosa 2. Pinus reffreyi 3. Pinus engelmanni a) Pinus engelmanni blancoi 4. Pinus arizonica a) Pinus arizonica stormiae 5. Pinus duranguensis a) Pinus duranguensis f. quinquefoliata Grupo: Serotinos Subgrupo: Oocarpa 1. Pinus oocarpa a) Pinus oocarpa b) Pinus oocarpa microphylla c) Pinus oocarpa manzanoi d) Pinus oocarpa ochoterenai e) Pinus oocarpa trifoliata Subgrupo: Patula 1. Pinus greeggi 2. Pinus pringlei 3. Pinus patula a) Pinus patula longepedunculata Subgrupo: Peninsularis 1. Pinus contorta latifolia 2. Pinus remorata 3. Pinus muricata 4. Pinus radiata 5. Pinus radiata binata 6. Pinus attenuata Grupo: Coulteri 1. Pinus coulteri 62 | P á g i n a

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PRÁCTICA Nº. 9

IDENTIFICACIÓN Y CLASIFICACIÓN DE PINOPHYTA (EXCEPTO Pinus)

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I. INTRODUCCIÓN Las especies incluidas en esta división, comprende árboles más o menos resinosos de hojas aciculares, lineares o escamosa, las estructuras masculinas están constituidas por estróbilos formados por escamas que llevan los sacos del polen. Los femeninos tienen escamas que cubren dos o más óvulos. Los estróbilos femeninos fecundados y maduros, son globosos o alargados, cuyas escamas poseen las semillas las cuales pueden ser aladas o no.

II.

III.

OBJETIVO • Que el alumno adquiera las herramientas metodológicas y prácticas para la identificación de los representantes de esta división.

MATERIAL • Claves para la determinación de especies de Pinophyta.

Material biológico • Ejemplares de Abies, Pseudopsuga, Taxodium, Cupressus, Juniperus, Araucaria, Podocarpus, Taxus, Ginkgo, Ephedra.

IV. DESARROLLO La clasificación se basa principalmente, en las características de las hojas, de los conos, y de las semillas. Con el uso de las claves, determina cada uno de los ejemplares que se te proporcionan y posteriormente clasifícalos, de acuerdo con el cuadro adjunto.

BIBLIOGRAFÍA • •

Cronquist, A. 1987. Introducción a la Botánica. Compañía Continental. S.A. México D. F. 193 pp. Martínez, M. 1948. Los Pinos Mexicanos. Segunda edición. Ediciones Botas. México D. F. 362 pp.

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Clasificación de la división pinophyta. CLASE Cycadopsida

ÓRDEN

GÉNERO

Cycadaceae

Cyca

Stangeriaceae

Dioon

Pinaceae

Pinus Abies Picea Pseudotsuga

Taxodiaceae

Taxodium

Cupressaceae

Cupressus Juniperus

Araucariaceae

Araucaria

Podocarpaceae

Podocarpus

Taxales

Taxaceae

Taxus

Ginkgopsida

Ginkgoales

Ginkgoaceae

Ginkgo

Gnetopsida

Ephedrales

Ephedraceae

Ephedra

Welwitschiales

Welwitschiaceae

Welwitschia

Gnetales

Gnetaceae

Gnetum

Pinopsida

Cycadales

FAMILIA

Pinales

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PRÁCTICA Nº. 10

HERBARIO

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I. INTRODUCCIÓN Un herbario es una colección de plantas secas montadas e identificadas que representan la flora y la vegetación de un área, siendo por esto, una herramienta fundamental en los estudios florísticos y taxonómicos. Existen también colecciones de plantas vivas llamadas jardines botánicos, donde se cultivan plantas de una región o de todo un país y estas pueden ser silvestres o no. Los herbarios constan de plantas o partes de ellas prensadas, disecadas y montadas en forma permanente en gabetas especiales para consulta. Nos permite ver directamente al ejemplar las características que distinguen una especie de otras, así como las variaciones entre miembros de la misma especie para evitar confusiones. El primer herbario de México fue el de Mariano Mociño de Temazcaltepec y sus colaboradores, entre los años 1787 y 1801, este herbario fue enviado a la colección del jardín Botánico de Madrid. Los herbarios institucionales de la Ciudad de México, nacen hasta la segunda mitad del siglo XIX, Manuel Urbina, formaliza el herbario en el seno del Museo Nacional contando con unos 3000 ejemplares; y para 1937 ya contaba con 28000, todos ellos eran plantas vasculares.

II.

OBJETIVO • Que el alumno conozca lo que es un herbario, como funciona y para que sirve.

Importancia: La importancia fundamental de un herbario reside en su empleo como instrumento de trabajo, como herramienta básica de la botánica sistemática. Etapas de las que consta la elaboración de un herbario: búsqueda de las plantas en campo, su identificación, recolección, prensado, secado y montaje. Búsqueda: Primero en una fuente bibliográfica o directamente en campo Identificación: paso posterior a la recolección, o ser anterior a esta, tal es el caso de una planta que nos interesa conocer, buscamos infamación para reconocerla. Para la identificación debemos hacer uso de las claves de identificación, consulta bibliográfica especializada o consultar un especialista en el área. Recolección: se requiere de navaja, tijeras de podar (de mano) podadora con extensión; bolsa de plástico para guardar ejemplares; libreta de campo. En caso de ir a recolectar plantas espinosas guantes de jardinería. Una buena muestra debe ser lo más completa posible con hojas, flores y frutos la longitud de la ramilla debe ser del tamaño de la prensa y del periódico 30 cm. Menor que el tamaño de la cartulina en donde se va a montar el ejemplar. Colectado el ejemplar, hay que tener cuidado para evitar que se rompa, doble, se deshidrate o arrugue se procede a prensarlo inmediatamente. La muestra Debe ser representativa e ilustrativa; para lograrlo se requiere de acomodar las hojas mostrando el envés; cuando algunas partes sean muy gruesas (tallos, frutos, cortezas), estas deben cortarse en secciones laminares o secarse por separado debidamente etiquetadas.

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Datos de campo, fecha, número de colecta, lugar, tipo de vegetación, hábitat, altitud y colector. No se debe dejar para más tarde las anotaciones de los datos de campo ni a la memoria. Montaje: se realiza sobre una cartulina caple blanca de 28 cm. x 41 cm.; si la muestra es muy pesada como el caso de Pinus, se reforza la cartulina pegándole un cartón de la misma medida por atrás. Se pega la planta a la cartulina con delgadas tiritas de papel engomado y se cose con aguja e hilo cáñamo o zapatero. Antes de empezar a colocar la muestra en la cartulina se debe deja un espacio en la parte inferior derecha para colocar la etiqueta de herbario y en la parte superior puede ir colocada una bolsa de celofán con semillas, frutos, estróbilos, etc. O también se puede incluir fotografías (no sustituir al ejemplar) que de una idea de cómo es la planta viva. Para proteger la muestra se de ese herbario se envuelve en una funda se le pone en la parte superior izquierda el nombre científico y en la parte inferior izquierda la familia y se colocan en el interior de una gabeta en el lugar que le corresponda según el orden que se lleva en el herbario. Sugerencias para el uso se claves. 1. Observar detenidamente la muestra antes de iniciar la identificación. 2. Leer siempre las dos alternativas, aun en el caso de que hayamos hecho la elección. Puede que la segunda nos convenza más. 3. Entender el significado de los términos de no tratar de adivinar consultar el glosario botánico. 4. Usar una regla para realizar las mediciones necesarias no tratar de hacer estimaciones 5. Utilizar una lente de aumento (lupa o lupa estereoscópica) al observar el rasgo o estructuras no visibles o apenas visibles a simple vista. 6. La identificación no se basa en la observación de un solo rasgo (las plantas presentan variabilidad). 7. Si la alternativas se comparan no son claras, o si no se tiene la posibilidad de escoger la alternativa, por no contar con la información suficiente, deben seguirse las dos para llagar a dos posibles soluciones; de esta manera se leen las descripciones de cada una, para escoger la más convincente he ir a consultar al herbario. Manejo de herbarios La parte esencial consiste en una colección de plantas secas, debidamente preparadas y usualmente b montadas sobre cartulinas, o bien, en el caso de algunas criptógamas, conservadas en cajas o sobres de tamaño apropiado. Cada ejemplar lleva su nombre científico, así como los datos correspondientes al sitio, condiciones, fecha y autor de la colecta. El conjunto esta arreglado siendo una secuencia que permite la fácil consulta de cada espécimen. Las principales de los herbarios pueden agruparse en cuatro: investigación, enseñanza, servicios de identificación e información y labores básicas. Un aspecto importante del mantenimiento es la incorporación a los ejemplares, de cambios de taxonomía y nomenclatura, detección de especímenes mal identificados, mal etiquetados, mal intercalados o con equivocado señalamiento geográfico, revisión cuidadosa de Materiales que se reciben de afuera antes de su incorporación. Dentro de las actividades básicas de un herbario están el montaje, etiquetado e intercalado, que se verán con más detalle en una visita al herbario. Organización y funcionamiento Esta parte se explica en el herbario.

Condiciones físicas para el establecimiento de un herbario 68 | P á g i n a

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1. Que haya espacio para desarrollar las actividades del herbario y poder hacer uso de los ejemplares. 2. Un lugar seco, ya que de lo contrario sería un lugar propicio para el Desarrollo de microorganismos. 3. Evitar en lo posible la entrada de luz natural en forma directa ya que esta contribuye al deterioro de los ejemplares. 4. Los ejemplares deberán tener entrepaños para evitar maltratar los ejemplares. 5. ventilación adecuada para cuando se usan algunos tipos de insecticidas para su mantenimiento y conservación. 6. Limpieza y fumigación periódica para evitar el deterioro por insectos. Claves de identificación. Hay varias formas de hacer la identificación de plantas, la más usual es mediante el uso de las llamadas claves de identificación. Una clave es el medio para identificar fácil y rápidamente las plantas, en nuestro caso. Las estructuras a observar son las raíces, tallos, hojas, flores, frutos, semillas y otras. El tipo de claves usadas generalmente son llamadas Claves Dicotómicas, que son aquellas que se basan en dos posibilidades o alternativas a seguir. Se prefieren a las que presentan varias alternativas. Nombres comunes y nombres científicos Hay varias razones por las que los botánicos utilizan nombres científicos (latinizados), en lugar de nombres vulgares o comunes. Los nombres comunes o vernáculos no son universales y pueden aplicarse solamente en un idioma. Por otra parte los nombres científicos son universales y se entienden en todo el mundo. Los nombres comunes generalmente no proporcionan información que indiquen la relación y ubicación taxonómica, particularmente de géneros y familias. Si la planta es bien conocida, puede recibir varios nombres comunes según la región geográfica donde ocurren, las que son raras o pasan desapercibidas, pueden no tener nombre común; en ocasiones dos o mas plantas de especies distintas, pueden tener el mismo nombre común. Sin embargo el uso de los nombres comunes es recomendable junto con los nombres científicos, por que permiten hacer más amplio el uso de información por personas no muy relacionadas con la botánica y para estudios locales o regionales. El nombre científico El código internacional de nomenclatura botánica cuanta con un conjunto de normas y reglamentos para asignar nombre a las plantas (hierbas, arbustos y árboles) de manera que no haya más de una con el mismo nombre científico, ni más de un nombre para cada una y en este código se establece que los nombres deben de formarse con palabras griegas, latinas o latinizadas, y deben ser escritos en letras cursivas o subrayados, el de genero con inicial mayúscula y el se la especie con minúscula, seguidos por la abreviatura del apellido del botánico que bautizo la especie. Así la forma correcta de escribir el nombre científico del pirul es Schinus molle L., y para el colorín será Erythina americana Mill. (L. corresponde a LINNEO Carlos de Suecia, (1707-1778) y Mill. Corresponde a MILLER Phillip del Reino Unido (1691-1771)). En muchas ocasiones el nombre de la especie hace referencia a alguna característica distintiva de la planta, como el color de sus flores: rubra (roja), alba o leuda (blanca), lutea (amarilla) y aurea (dorada). En muchas ocasiones también hace referencia el nombre de la especie a la nacionalidad de la planta: mexicana, americana y peruana, o en ocasiones se toma el apellido de algún botánico o personaje ilustre por ejemplo: martinezii, xolocostli y rzedowskii. 69 | P á g i n a

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Glosario para pteridophytas (Arreguín-Sanchéz, et al. 2004) Acroscópico. Orientado hacia el ápice del eje que lo sustenta, hacia el extremo superior de un miembro. Acrosticoide. Condición en la que los esporangios cubren por completo en envés de la lámina. Adnado. Unido al eje que lo sustenta. La fusión de partes no semejantes. Aeróforo. Porción del tejido de areación en el peciolo y en el raquis, de bajo de la base de una pinna. Agudo. Con márgenes formando un ángulo de 45° en el ápice. Ala. Dilatación laminar a los lados de cualquiera de los ejes de una hoja. Anillo. Hilera de células con las paredes internas y dos paredes laterales engrosadas presente en los helechos leptoesporangiados, causa por desecación, la apertura del esporangio y la liberación de esporas. Aovado. El estremo más ancho por debajo de la parte media. Apiculado. Termina en una punta gradual o abruptamente formada en el ápice de un organo. Areola. Espacio abierto formado por nervaduras que se unen. Arista. Apéndice o parte setiforme, en forma de cerda sutil pero tiesa. Ascendente. Levantándose, proyectándose de una manera algo oblicua o indirectamente hacia arriba. Asimétrico (ca). Se dice de un órgano que no tiene un plano de simetría que lo divida en dos partes. Atenuado (a). Adelgazado, estrechado. Presentando un estrechamiento o disminución gradual y lenta, aplicado a las bases o ápices de las partes. Aurícula. Que semeja una orejita. Basifijo. Adherido por su base. Basiscópico (ca). Orientado hacia la base o parte interior. Bicoloro. De dos colores. Bífido. Dividido o hendido en dos partes. Bifurcado (da). Ahorcadillo, hendido. Bipinnado (da). Cuando la lámina foliar está dos veces pinnada.

Caduco (ca). Que cae pronto. Caedizo (za). Que cae fácilmente. Cartáceo (a). De consistencia de papel o pergamino. Caudado (a). Que lleva un apéndice a manera de cola. Caulinar. Que pertenece a un tallo o eje bien evidente. Ceráceo. Con aspecto o consistencia de cera. Cerda. Tricoma rígido. Seta. Cespitoso (a). Amacollado, formando césped; creciendo en mechones; en pequeños manojos densos. Cilio. Tricoma muy fino y largo derivado en el ápice o márgenes de una hoja. Tricomas que tienen una apariencia de pestañas. Clatrado (da). De forma de celosía o enrejado. Claviforme. Con forma de clavo, ensanchado gradualmente hacia el ápice. Comoso. Con un haz o mechón de tricomas en el punto de inserción. Cordiforme. De forma de corazón. Coriáceo (a). De consistencia como de cuero. Corrugado (a). Con la superficie arrugada o con pliegues irregulares. Cosmopolita. Con distribución en todas o casi todas las regiones del mundo. Costa. La nervadura o costilla media de una pinna. Cóstula. La nervadura media de un segmento foliar. Crenado (a). Someramente dentado, con dientes curvos u obtusos, ondeando. Crenulado (a). Diminutivo de crenado. Cresta. Prominencia aguda y baja, en una superficie. Crestado (da). Con cresta. Cuadripinnado (da). Hojas cuatro veces pinnadas. Cuneado. En forma de cuña. Cuspidado (da). Que termina en punta o cúspide. Decumbente. Reclinado o postrado sobre el suelo, pero con el extremo distal ascendente. Decurrente. Que se prolonga hacia abajo. 70 | P á g i n a

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Dentado (da). Con dientes gruesos, agudos y extendidos de manera perpendicular al margen. Denticulado. Que tiene dientecillos. Dicotomo. Dividiéndose más o menos en pares. Diente. Cada una de las divisiones agudas y poco profundas de los márgenes de las hojas. Dimorfo (fa). Que tiene dos formas como las hojas de algunas pteridofitas. Distal. Opuesto al punto que se toma como base u origen (lo contrario a proximal). Eláter o elaterio. Célula higroscópica estéril; parte externa de una espora que interviene en el proceso de dispersión de las esporas. Elíptico (ca). De contorno oval. Entero (a). De margen continuo. Envés. Cara inferior o dorsal de la hoja. Epífito. Que crece sobre otras plantas, en troncos o ramas, pero no parásito. Epipétrico. Vease rupícola. Equinado (a). Con espinas. Eroso (a). Irregularmente dentado o con apariencia de roído. Escabroso (sa). Lleno de asperezas, de tricomas cortos y rígidos que se aprecian bien con el tacto. Escama. Tricomas laminares. Esclerosado (da). Duro o endurecido. Escudo. Porción apical ensanchada del esporangióforo de Equisetum. Espora. Célula capaz de formar el gametofito. Esporangios. Estructuras multicelulares en donde son producidas las esporas. Esporangióforo. En los estróbilos de Equisetum, estructura en forma de sombrilla bajo la cual están varios esporangios. Esporocarpo. Órgano ovoide que encierra los soros en helechos acuáticos o semiacuáticos. Esporofilo (la). Hoja que lleva esporangios, morfológicamente distinta o no de las hojas vegetativas. Estéril. Carente de órganos sexuales funcionales. Estipe. Peciolo de un helecho.

Estriado. Provisto de líneas finas longitudinales; canales o surcos. Estróbilo. Agrupación de esporangios acompañados por hojas que pueden o no estar modificadas. Eusporangio. Esporangio formado por una pared pluricelular, carente de anillo que lleva varios cientos de esporas. Exina. Pared de las esporas. Farina. Exudado de aspecto ceroso, blanco amarillento o de otro color de ciertas glándulas especialmente en el envés de las hojas. Farinoso. Como harinoso por el aspecto ceroso. Fasciculado (da). Agrupado en forma de manojo. Fido (da). Sufijo latino, utilizado para designar partido; dividido por el centro hasta la mitad. Filiforme. De forma de hebra, largo y ancho. Filopodio. En especies de hojas deciduas (articuladas), la porción del peciolo que permanece unida al rizoma. Fimbriado (da). Dividido en lacinias. Flabelado (da). En forma de abanico. Flexuoso (sa). Flexible; torsido; cuando el tallo es flexuoso, de forma más o menos zigzagueante. Foliolo. Hojuela, segmento laminar articular de una hoja compuesta; hoja secundaria. Foveolado (da). Punteado, con fosas o cavidades. Fronde. Hoja de los helechos. Glabro (a). Desprovisto de tricomas o escamas. Glándula. Célula u órgano capaz de acumular o de expeler una secreción. Glauco (a). De color gris-azuloso. Gloquideo. Apéndice acicular con púas retrorsas variables que se encuentran en la másula de las salviniales. Glutinoso (a). Pegajoso o víscido. Granuloso (a). Granular, cubierto con granos muy pequeños. Haz. Cara adaxial o superior de las hojas. Heter o hetero. Prefijo griego que significa distinto, diferente de otra cosa.

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Heterosporía. Condición de las pteridofitas que producen megaesporas y microesporas. Hirsuto. Cualquier órgano cubierto de tricomas rígidos y ásperos al tacto. Indumento. Conjunto de tricomas, glándulas, farina, escamas, etc., que recubren la superficie de los diversos órganos de las plantas. Indusio. Estructura que protege a los esporangios cuando éstos están agrupados en soros. Lacinia. Cada una de las divisiones de un órgano laciniado. Laciniado. Con incisiones paralelas, formando segmentos angostos de ápice agudo. Lámina. La parte expandida de una hoja. Lanceolado (a). Con forma de punta de lanza, más largo que ancho. Lanoso (a). Con tricomas largos, suaves y entrecruzados que recuerdan la lana. Lígula. Órgano o cuerpo en forma de lengüeta. Linear. Largo y angosto, con los lados paralelos o casi paralelos. Megaespora. Espora de mayor tamaño que al germinar da origen al gametofito femenino. Megasporangio. Esporangio que contiene únicamente megaesporas. Megaesporofilo. Hojas que acompañan a los megaesporangios. Microespora. La de menor tamaño de las dos clases de esporas, la espora que produce el gametofito masculino. Microesporangio. Cavidad o envoltura que contiene microesporas. Microesporofilo. Hoja que porta los microesporangios. Monolete. Espora bilateral que tiene una sola apertura. Mucrón. Punta rígida, en ocasiones espiciforme o espolón, corto y agudo. Mucronado (da). Terminado en un mucrón. Nerviación. Conjunto y disposición de las nervaduras de una hoja. Nervadura. Vena, cada uno de los hacecillos fibrovasculares cuyo arreglo se llama nerviación o venación.

Oblanceolado (da). El inverso a lanceolado, como una hoja más ancha en el tercio distal que en el centro, disminuyendo hacia la base. Oblicuo (a). Asimétrico, inclinado o desviado de la horizontalidad, como en la base de las hojas donde un lado de la lámina es más inferior que el otro. Oblongo (a). Más largo que ancho y con los lados casi paralelos en la mayor parte de su extensión. Obovado (ga). De forma ovada, pero con la parte ancha en el ápice en forma de huevo, con el ápice más ancho que la base. El inverso de ovado, la mitad terminal más ancha que la basal. Obtuso (a). Redondeado en el ápice. Romo o redondeado. Orbicular. Circular, redondo. Ovado (a). De contorno de huevo. Aovado, el extremo más ancho por debajo de la parte media. Palmatífido (da). Cordado hasta casi la mitad en forma de palma. Palustre. Que vive en pantanos y cenegales. Papila. Protuberancia pequeña en forma de ampolla. Papiráceo (a). De la consistencia y delgadez del papel. Parafiso. Cualquier tricoma generalmente engrosado en el ápice entremezclado con los esporangios. Partido (da). Separado casi hasta la base. Peciolo. Pedicelo de la hoja. Eje de la hoja que la une con el tallo o la bese foliar. Peciólulo. Diminutivo de peciolo, aplíquese al eje de los foliolos. Pectinado (da). Pinnatífido con los segmentos angostos, a manera de los dientes de un peine. Pedicelado. Que tiene pedicelo. Pedicelo. El pie del esporangio. Pelo. Apéndice superficial que consiste de una sola célula. Peltado (a). Perteneciente a una hoja o algún otro órgano aplanado unido a su soporte por un punto de su superficie. Pinna. División primaria o foliolo de una hoja pinnada.

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Pinnado (da). Con la lámina foliar dividida en pinnas. Pinnatífido (a). Hoja, pinna o segmento de otro orden con bordes hendidos sin llegar hasta el raquis, costa o cóstula. Pínula. Segmento secundario de una lámina. Prolífico (da), prolífero (ra). Con yemas o brotes capaces de formar un anueva planta. Protestela. Tipo de estela que no presenta medula. Proximal. Extremo de un órgano más cercano al punto de origen. Pruinoso (sa). Revestimiento ceroso tenue de aspecto glauco o blanquecino. Puberulento (ta). Pubérulo, diminutamente pubescente. Pubescente. Que está cubierto por tricomas finos y suaves, como pelo de púber. Raquis. Eje primario de una lámina pinnada o más dividida. Reflejo (ja), reflexo (xa). Encorvado abruptamente hacia abajo o hacia atrás, de modo que las partes se dirigen hacia el eje sobre el que están insertadas. Reniforme. En forma de riñón. Reticulado (da). En forma de red. Retrorso (sa). Dirigido hacia atrás. Revoluto (ta). Enrollado o encorvado hacia el envés o hacia el exterior o hacia la cara inferior como una lámina foliar. Rizoide. Estructura similar a una raíz por su función y apariencia general, pero no así por su anatomía. Rizoma. Tallo por lo común horizontal subterráneo. Rómbico. En forma de rombo. Rugoso (sa). Arrugado. Normalmente cubierto con arrugas. Runpícola. Que crece sobre rocas o piedras. Saxícola. Planta que crece entre rocas. Segmento. Una de las partes de un órgano, como una hoja, rizoma, dividido pero no verdaderamente compuesto. Septado (da). Con septo, tabicado.

Seriado (da). Dispuesto en series. Seríceo (a). Sedoso, con aspecto de seda, cubierto con tricomas adpresos, finos y suaves. Serrado (da). Con dientes en el margen. Margen provisto de dientecillos a modo de una sierra. Serrulado (a). Finamente serrado, con dientes diminutos. Sésil. Que carece de pie o soporte. Seta. Tricoma algo rígido y no muy corto, cerda. Setáceo (a). Que tiene setas o cerdas. Simétrico. Que presenta por lo menos un plano de simetría que permite dividir a un órgano o parte de él al menos en dos partes similares. Sinuado (a). Que tiene senos, si se aplica a las hojas, generalmente con senos poco profundos. Sorífero (ra). Que lleva soros. Soro. Agregado de esporangios de forma característica, pueden ser soros alargados, esféricos, alo largo de la nervadura, etcétera. Sulcado (a). Con surcos o estrías. Ternado (a). En tríos, dispuestos de tres en tres. Tomentoso (a). Densamente cubierto de tricomas algodonosos. Tricomas. Se refiere en un sentido estricto a pelo. Trilete. Esporas con tres fisuras en la exina. Trofóforo. La parte vegetativa de la hoja como las de Botrychium y Ophiglossum. Vástago. Brote o rama nueva que surge de una planta. Verrugoso (a). Con prominencias como verrugas o pequeños nódulos en la superficie. Víscido (da). Pegajoso o con viscosidad apreciable. Yema. Bulbillo, estructura de propagación vegetativa.

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Glosario para coníferas (Madrigal – Sánchez 1982) Abayado (cono): Parecido o similar a una baya. Aciculares (hojas): Largas y delgadas, en forma de aguja, como en Pinus. Ala: Lamina papirácea o apergaminada unida a la semilla de varias especies de coníferas. Apófisis: Estructura principal del umbo, más o menos protuberante, rodea a la cúspide en la escama de Pinus. Arilo: Apéndice del funículo (filamento que une al óvulo o semilla con la pared del ovario), que puede ser más o menos carnoso y cubre total o parcialmente a la semilla. Bráctea decurrente (base de la): Cuando la base de la bráctea de las hojas, en las ramillas de Pinus, abraza o tiende a envolver a éstas. Bráctea no decurrente (base de la): Cuando la base de la bráctea de las hojas, en las ramillas de Pinus, no tiende a rodear a éstas. Bráctea (de los conos): Estructura laminar, que nace en la base de la escama y se prolonga hacia el ápice. Es notoria particularmente en Abies. Carinada (hoja): Con la cara o superficie dorsal muy ancha y la arista interior muy baja. Se observa más claramente en un corte transversal. Conillo: Estróbilo femenino poco desarrollado, cuando ya se ha efectuado la polinización. Cono: Estróbilo femenino ya polinizado y fecundado, más o menos desarrollado Conos caedizos: Que se desprenden de la ramilla tan pronto como maduran o poco tiempo después. Conos persistentes: Grado de permanencia de los conos en las ramillas después de que han madurado. Cúspide: Estructura más o menos abultada, situada en el centro del umbo cuando éste es de posición dorsal, o en el extremo apical cuando se trata de umbo terminal. Sobre la cúspide se

encuentra una espina más o menos persistente. Dehiscentes (conos): las escamas se separan al madurar los conos, liberando así las semillas. Dientecillos: Prolongaciones más o menos agudas de la epidermis en las hojas de muchas especies de Pinus. Dioico: (a) Planta o especie en la que se presentan solamante inflorescencias masculinas o femeninas en el mismo individuo. Dísticas (hojas): Disposición de las hojas en algunas especies de coníferas a uno y otro lado de la ramilla sobre un mismo plano. Drupáceo (a): Fruto parecido a una drupa. Semilla carnosa de algunas gimnospermas como en Podocarpus. Emarginado (ápice): Pequeña muesca o hendidura que se presenta en el extremo terminal de las hojas de Abies. Endodermo: Estructura interna de la hoja formada por una capa de células, generalmente uniforme, que limita al cilindro central separándolo del clorénquima. Eroso-denticulado (borde de escama o bráctea): de borde irregular con apariencia de haber sido roído y con pequeños dientecillos. Escama (del estróbilo): Estructura lamianar que cubre a los órganos masculinos (sacos poliníferos) o femeninos (óvulos) de las coníferas. Corresponde a una hoja carpelar y se llama también microsporofila cuando se refiere a los estróbilos masculinos y macrosporofila cuando se trata de los estróbilos femeninos, inclusive cuando ya están bien desarrollados (conos). Escamas caducas: Las escamas del estróbilo (cono) de Abies y Taxodium que se desprenden al madurar. Escuamiformes (hojas): Que tienen la forma o apariencia de escamas pequeñas, como en la familia Cupressaceae. Página | 74

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Estróbilo femenino: Inflorescencia que contiene los órganos femeninos de la flor en las gimnospermas, incluyendo a las coníferas. Estróbilo masculino: Inflorescencia que contiene los órganos masculinos de la flor en las gimnospermas, incluyendo a las coníferas. Exerta (bráctea): Estructura foliácea en las escamas del cono de Abies que sobresale de la misma por su mayor longitud. Falcada (hoja): En forma de hoz o sable, es decir, curva y aplanada, angostándose hacia el extremo terminal. Fascículo: Grupos de hojas en Pinus unidas por la vaina. Gálbula: Estróbilo o cono más o menos pequeño y redondeado de algunas conífera. Glaucas (hojas): Color verde ceniciento o blanquizco que presenta en sus hojas algunas especies de coníferas. Haces fibrovasculares: Estructuras de conducción que se encuentran en el cilindro central de las hojas de Pinus y otras coníferas, y que se utilizan como caracteres taxonómicos. Hipodermo: Estructura interna de la hoja formado por una o más capas de células, que se encuentra inmediatamente por debajo de la epidermis. Inclusa (bráctea): Estructura foliácea en las escamas del cono de Abies, que no sobresale de la misma por su menor longitud. Indehiscentes (cono): cuyas escamas permanecen unidas aun cuando el cono haya llegado a la madurez. Laciniado (a): Cortado en segmentos angostos y agudos que tienen la apariencia de presentar numerosas desgarraduras en sus bordes. Lineares (hojas): Largas, angostas y aplanadas, de bordes paralelos o casi paralelos de algunas coníferas, como en Abies

Macrosporofilas: Escamas y hojas carpelares que cubren a los óvulos en los estróbilos femeninos. Microsporofilas: Escamas pequeñas que cubren a los sacos poliníferos (que contienen los granos de polen) en los estróbilos masculinos. Monoico (a): Planta o especie en la que se presentan simultáneamente inflorescencias masculinas e inflorescencias femeninas en un mismo individuo. Oblicuo (pedúnculo): Posición sesgada o desviada con relación al eje central del cono, tendiendo a formar ángulo recto. Pedúnculo: Estructura leñosa más o menos larga que sostiene al cono unido a la ramilla. Peltada (escama): unida a un eje en la parte central interna, semejando un escudo. Quilla (de la escama): Protuberancia transversal o perpendicular de la apófisis, en la forma de costilla. Reflejado (cono): Escorvado o volteado abruptamente, colocado paralelamente a la ramilla y dirigido hacia la base o parte inferior de ésta. Serótino (o tardío): Relativo a especies de Pinus y conos de las mismas, cuyas escamas se abren y liberan en diferentes periodos a las semillas maduras. Subdísticas (hojas): Casi dísticas. Umbo: Parte saliente y visible de la escama en su extremo superior, cuando el cono está cerrado. Verticilo: Agrupación de tres o más estructuras y órganos similares, alrededor de un mismo punto. Vaina: Envoltura o cubierta formada por varias brácteas, que rodea la base de los fascículos de las hojas de Pinus.

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Clave para separar las familias de pteridofitas del Valle de México (Arreguín-Sanchéz, et al. 2004). 1.- Plantas acuáticas ……………………………………………………………..……………………………. 2 2.- Plantas flotantes pequeñas, hojas con la porción inferior constituida por aerénquima ………...…………………………………………………………………...….… SALVINIACEAE (Pág.85) 2’.- Plantas arraigadas, lámina tetrafoliada, dando la impresión de un trébol de cuatro hojas …………………………………….…………….……………………............… MARSILLACEAE (Pág.85) 1’.- Plantas terrestre epífitas o palustres, nunca acuáticas ………………..……………………..……………..3 3.- Tallos parecidos a los de la caña de azúcar, verdes, huecos articulados….… EQUISETACEAE (Pág.77) 3’.- Tallos por lo general subterráneos (rizomas) o si verdes nunca huecos o articulados……..……………4 4.- Hojas con una nervadura (micrófilos), a veces sin nervadura………………………………………….… 5 5.- Hojas lineares, largas de más de 10 cm de largo parecidas a los pastos, esporangios en la base de las hojas …………………...…………………………………..…...…….………….…. ISOËTACEAE (Pág. 77) 5’.- Hojas mucho más cortas, a veces de unos cuantos milímetros ……………………….………………… 6 6.- Esporangios dispuestos en estróbilos en la parte terminal de los tallos, plantas heterospóricas, hojas con una nervadura …………………………………………………….........….. SELAGINELLACEAE (Pág. 77) 6’.- Esporangios nunca dispuestos en estróbilos, solo en sinangios producto de la fusión de tres eusporangios, hojas sin vascularización ………………………………….…………….……...... PSILOTACEAE (Pág. 77) 4’.- Hojas con más de una nervadura…………………………………………………………….………… 7 7.- Esporangio de tipo eusporangio, frondes dimorfos……………….… OPHIOGLOSSACEAE (Pág. 78) 7’.- Esporangios de tipo leptoesporangios con anillo en diferentes posiciones, frondes uniformes, subdimorfos o dimorfos…………………………………………………………….………………………… 8 8.- Esporangios cubiertos por un indusio ……………………………….…………..………………………. 9 9.- Indusio linear…………………………………………………………..…….……………….………..… 10 10.- Soros paralelos a la nervadura media, continuo o interrumpido…………... BLECHNACEAE (Pág. 85) 10’.- Soros en otra posición, nunca paralelos a la nervadura media ………………………..…………….. 11 11.- Lámina pinnada-pinnatífida o más dividida, raquis y peciolo levemente pubescente, espora con exina (pared externa) lisa…………………..……………………………………….…. WOODSIACEAE (Pág. 83) 11’.- Lámina entera, pinnada o si pinnado-pinnatífida o más dividida, entonces raquis y pecíolo escamoso ……………………..………………………………………………………….…. ASPLENIACEAE (Pág. 82) 9’.- Indusio reniforme, ovado, en forma de copa, peltado o inframarginal…………................………… 12 12.- Indusio reniforme o peltado………………………………………………..………………...…………. 13 13.- Base del pecíolo con dos haces vasculares …………………….…. THELYPTERIDACEAE (Pág. 82) 13’.- Base del pecíolo con más de dos haces vasculares………….……. DRYOPTERIDACEAE (Pág. 84) 12’.- Indusio en forma de copa, ovado o inframarginal……….…………………………………………… 14 14.- Indusio en forma de copa u ovado ……………………......................…… WOODSIOIDEAE (Pág. 83) 14.- Indusio inframarginal…………….………………...…………………..…… PTERIDACEAE (Pág. 78) 8’.- Esporangios no cubiertos por un indusio, aunque pueden estar protegidos por el margen reflejo a veces más o menos modificado, bien el margen reflejo y un indusio interno………………………………..…….15 15.Láminas enteras, esporangios cubriendo el envés de la lámina (condición acrosticoide) ………………………………………………………………………..….. LOMARIOPSIDACEAE (Pag. 84) 15’.- Láminas enteras o más divididas, esporangios nunca en posición acrosticoide ………………...……16 16.- Esporas monoletes……………………………………………………………….……………….……. 17 17.- Soros protegidos por el margen reflejo …………………….………... DRYOPTERIDACEAE (Pág. 84) 17’.- Soros Sin protección……………………………………………………………………...…………….18 18.- Lámina pinnada-pinnatífida o más dividida, o si pinnada, entonces con esporas equinadas, base del pecíolo con dos haces vasculares ………………………………….……. THELYPTERIDACEAE (Pag. 82) 18’.- Lámina entera, pinnatífida a pinnada con 1, 3 o más haces vasculares en la base del pecíolo ……………...………………………...……………………………… ………. POLYPODIACEAE (Pag. 81) 16’.- Esporas triletes……………………………………………………………………………...…………19

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Manual de prácticas de botánica II Ciclo 2011 19.- Frondes subdimorfas, esporangios con anillo oblicuo, rizoma glabro a piloso ………………………….… ………………………………………………………………………………PLAGIOGYRIACEAE (Pag. 78) 19’.- Frondes uniformes, dimorfas o subdimorfas, esporangios con anillo vertical, rizoma con escamas ……………………………………………………………………………………………….………………. 20 20.- Plantas epífitas a menudo colgantes, soros sin protección, lámina pinnatífida a pinnada, pilosa o con cerdas esparcidas en el envés de la lámina, esporas verdes ..…………… GRAMMITIDACEAE (Pag. 82) 20’.- Plantas terrestres o rupíncolas, soros con o sin protección del margen reflejo, a veces con un indusio interno, lámina pinnatífida o más dividida, esporas nunca verdes ………….…..…………………………. 21 21.- Soros con el margen reflejo y un indusio interno………………… DENNSTAEDTIACEAE (Pag. 82) 21’.- Soros con o sin protección del margen reflejo, lámina pinnada a veces más dividida, glabra con indumento blanco, escamoso y/o piloso, en caso de ser pilosa, cubriendo densamente el envés, entonces la lamina bipinnada o más dividida …..…..…….…………………………………… PTERIDACEAE (Pag. 78)

PSILOTACEAE En el Valle de México un género y una especie Psilotum nudum (L.) P. Beauv.

SELAGINELLACEAE Clave para separar las especies de Selaginella 1.- Hojas con margen blanco, plantas heterófilas. ……………………………………………………………..2 2.- Hojas medias agudas o aristadas, microesporas libres …………….…………………..……… S. pallescens 2’.- Hojas medias obtusas a corto mucronadas, microesporas en grupos de cuatro…………… S. lepidophylla (Posiblemente presente en la zona) 1’.- Hojas sin margen blanco, hojas isófilas o heterófilas………………………………………………………3 3.- Margen de las hojas enteras o corto ciliado, pero solo en la mitad inferior, plantas heterófilas ……………...………………………………………….……………………………….….…… S. delicatissima 3’.- Margen de las hojas serrulado a largo o corto ciliado, pero en todo el margen, plantas isófilas………….4 4.- Rizóforos produciéndose sólo cerca de la base, tallos erectos o ascendentes, megaesporas vermiculadas, microsporas ruguladas ……………………………………....………………………………...….. S. rupincola 4.- Rizóforos produciéndose cerca del ápice, tallos postrados, decumbentes o irregularmente ascendentes 5.- Hojas vegetativas con seta de 1 mm o más de largo, megaesporas reticuladas con lúminas de más de 10 micras y microesporas ruguladas ……...………………………….....………………………………..S. sellowii 5’.- Hojas vegetativas sin seta o en caso de presentarse menor de 1 mm. de largo, megaesporas rugosas o reticuladas, microesporas arrugadas,granular o faveoladas…………………………………………………….6 6.- Hojas vegetativas con margen dentiforme, megaesporas reticuladas…………………………………….7 7.- Megaesporas con doble retículo, uno muy evidente y dentro de cada lumen otro retículo menor, microesporas mayores de 50 micras con ornamentación granular …………………………..….…. S. arsenei 7’.- Megaesporas con un solo retículo, microesporas menores de 50 micras con ornamentación arrugada …………………………………..……………………….………………………………………….S. peruviana 6’.- Hojas vegetativas largo-ciliado, megaesporas ruguladas y hacia la laesura reticulada, microesporas foveoladas que dan la impresión de formar un patrónreticulado …….…………………………… S. wrightii

ISOËTACEAE En el Valle de México Isoëtes mexicana Underw.

EQUISETACEAE En el Valle de México Equisetum hyemale var. affine (Engelmann) A.A. Eaton.

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Manual de prácticas de botánica II Ciclo 2011 OPHIOGLOSSACEAE Clave para separar los géneros de la familia Ophioglossaceae del Valle de México 1.- Sector vegetativo de la lámina entero …………...…………..………………………………. Ophioglossum 1’.- Sector vegetativo de la lámina pinnatífido o más dividido ………...………….……………… Botrychium

Clave para diferenciar las especies del género Botrychium. 1.- Sector fértil saliendo cerca de la lámina de la hoja estéril, plantas por lo regular de más de 35 cm de alto, lámina de textura delgada…………………………………….…………………………….…… B. virginianum 1’.- Sector fértil saliendo cerca de la base de la hoja estéril, plantas por lo regular de menos de 30 cm de alto, lámina de textura gruesa ………………………………………………………………...….…….. B. schaffneri

Clave para diferenciar las variedades de B. schaffneri 1.- Plantas laxas y largas, de 10 a 35 cm de alto …….…………………..…….…. B. schaffneri var. schaffneri 1’.- Plantas vigorosas, compactas y pequeñas, de menos de 10 cm……………….. B. schaffneri var. pusillum

Ophioglossum L. En el Valle de México Ophioglossum engelmanni Prantl Ber. Deutsch.

PLAGIOGYRIACEAE En el Valle de México Plagiogyria pectinata (Liebm.) Lellinger Amer.

PTERIDACEAE Clave para separar los géneros de la familia Pteridaceae del Valle de Mexico. 1.- Indumento farinoso………………………………………………………………………….………………2 2.- Esporangios sin protección saliendo de entre la farina ……..………………………………. Argyrochosma 2’.- Esporangios protegidos por el margen reflejo……………………………………………………………...3 3.- Margen reflejo son modificarse, venas oscuras sobresaliendo de la farina………………… Pityrogramma 3’.- Margen reflejo modificado con una membrana transparente, venas no sobresaliendo de la farina …………………………………...…………………..…………………………………………… Aleuritopteris 1’.- Indumento escamoso, piloso o glabro, nunca farinoso……………………………………………………4 4.- Indumento exclusivamente escamoso……………….…….………………..………...…………. Astrolepis 4.- Indumento piloso y escamoso, o bien sólo piloso o glabro………………………………………………5 5.- Indumento piloso y escamoso………………………………………………..…….………..... Cheilanthes 5’.- Indumento piloso o glabro…………………………………………………………………………………6 6.- Esporangios con Indusio inframarginal……………..………….…………………………………. Mildella 6’.- Esporangios sin protección o protegidos por el margen reflejo modificado o no, pero nunca con indusio..7 7.- Esporangios sin ninguna protección……………………………………………………………………….8 8.- Lámina palmado-pinnatífida, pilosa, a veces con algunas escamas sobre las venas………..… Bommeria 8’.- Lámina bifurcada, glabra………………………………….………..………….…..………... Anogramma 7’.- Esporangios protegidos por el margen reflejo modificado o no………………………………………..…9 9.- Segmentos flabelados, venación dicotómica, margen reflejo modificado a manera de media luna Adiantum 9’.- Segmento de otras formas, nunca flabelados, venación pinnada o reticulada, margen reflejo modificado o no, pero nunca en forma de media luna…………………………………………………………………….…10 10.- Venación reticulada, soros con parafisos………………………………...………………..…..…..… Pteris 10’.- Venación pinnada……………………………………………………………………………………..…11 11.- Pinnas basales bifurcadas, lámina con 3 a 12 pares de pinnas, soros con parafisos ………………... Pteris

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Manual de prácticas de botánica II Ciclo 2011 11’.- Pinnas basales nunca bifurcadas, lámina con más de 12 pares de pinnas, soros sin parafisos…………..12 12.- Pinnas inferiores ternadas o bien segmentos cordados a cordados-sagitados………………….…. Pellaea 12’.- Pinnas inferiores nunca ternada, segmentos de otras formas ……...……………….…...…… Cheilanthes

Adiantum L. Clave para separar las especies de Adiantum. 1.- Segmentos sésiles o subsésiles, base de los segmentos acroscópica, extendiéndose hacia el raquis …………………………………………………………………………….…………………..….. A. concinnum 1’.- Segmentos peciólulados, margen de los segmentos no extendiendose hacia el raquis…………………….2 2.- Color del peciólulo no pasa a través de la base de los segmentos………...…………………..... A. andicola 2’.- Color del peciólulo pasa a través de la base de los segmentos……………………………………………..3 3.- Escamas del rizoma con márgenes ciliados, segmentos de la lámina con margen de la lámina entero…….. …………………………………………………………………………………………………………A. poiretii 3’.- Escamas del rizoma con márgenes enteros, segmentos de la lámina con margen aserrado ………………………………………………………………..……………………………... A. capillus-veneris

Aleuritopteris Fée. En el Valle de México Aleuritopteris farinosa (Forssk.) Feé

Anogramma Link. En el Valle de México Anogramma leptophylla (L.) Link

Argyrochosma (J. Sm.) Windham. En el Valle de México Argyrochosma incana (C. Presl) Windham

Astrolepis D.M. Benham et Windham. Claves para separar las especies de Astrolepis 1.- Pinnas con 4 a 6 pares de lóbulos …………………………...…….………………..………….. A. sinuata 1’.- Pinnas con menos de 2 pares de lóbulos……………………………………………………………….…2 2.- Escamas del rizoma lineares con el margen entero, esporangios protegidos por las escamas, no sobresaliendo de entre ellas ……………………………………………….………………………A. crassifolia 2’.- Escamas del rizoma linear-lanceoladas con el margen dentado, esporangios sobresaliendo de entre las escamas ……………………………………………………...………………………….………. A. integerrima

Bommeria E. Fourn. Clave de las especies de Bommeria. 1.- Envés de la lámina con tricomas, de presentarse escamas muy delgadas, aparentando tricomas, venación libre …………………………………………………..………………………………………………. B. pedata 1’.- Envés de la lámina con tricomas y escamas ovadas, venación reticulada….………………. B. subpalacea

Cheilanthes Sw. Clave para separar las especies de Cheilanthes 1.- Plantas con indumento piloso y escamoso juntos ……………….…..…….…………………C. myriophylla 1’.- Plantas con indumento glabro o piloso……………………………………………………………………..2

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Manual de prácticas de botánica II Ciclo 2011 2.- Plantas con tricomas glandulares en la superficie de la lámina…………...….………………. C. kaulfusii 2’.- Plantas sin tricomas glandulares en la superficie de la lámina, y de presentarse sólo en el margen reflejo.3 3.- plantas con indumento densamente piloso, tricomas blancos…………………………..…… C. bonarensis 3’.- Plantas con indumento esparcidamente pilos, tricomas por lo general café rojizos, o bien lámina glabra...4 4.- Segmentos orbiculares…………………………………………………………………………………...…5 5.- Porción del margen reflejo de los segmentos modificado ancho, más ancho que el limiten de la parte verde, o bien del mismo ancho…………………………………………………………………………………6 6.- Peciolo y raquis con tricomas y escamas ………………………………………………..C. marsupianthes 6’.- Peciolo y raquis con tricomas, sin escamas ………………………………….…………...… C. lendigera 5’.- Del margen reflejo de los segmentos modificado estrecho, mucho menor que el límite de la parte verde ……………………………………………………………………………………………………... C. mexicana 4.- Segmentos ovados, lineares, pero nunca orbiculares………………………………………………………7 7.- Plantas con el margen reflejo evidentemente modificado, escarioso……………………………………..8 8.- Margen reflejo ciliado……………………………………………………………………………………....9 9.- Superficie del margen reflejo papilado ………………………………..………………...……….. C. hirsuta 9’.- Superficie del margen reflejo glabro o escasamente papilado………………………..…..… C. marginata 8’.- Margen reflejo entero, nunca ciliado ………………………………...…...……………..... C. angustifolia 7’.- Plantas con el margen reflejo no modificado, o poco modificado, no escarioso………….……………10 10.- Lámina bipinnada……………………………………………………………………… C. notholaenoides 10’.- Lámina bipinnada-pinnatífida o más dividida…………………………………………..………………11 11.- Envés glabro, pecíolo y raquis con tricomas esparcidos ……………..………………........ C. allosuroides 11’.- Envés con tricomas cortos castaños claro, pecíolo y raquis con tricomas densos………………………12 12.- Escamas del rizoma bicoloras, enteras, negras con margen hialino….…………………... C. microphylla 12’.- Escamas del rizoma de un solo color, margen ciliado ……………………………………..... C. cucullans

Mildella Trevis. En el Valle de México Mildella intramaginalis (Kaulf. ex Link) Trevis y Mildella intramarginalis (Kaulf. ex Link) Trevis var. serratifolia

Pellaea Link. Clave para diferenciar las especies de Pellaea. 1.- Lámina ternada en la parte inferior, pinnada la superior ………………….....…. P. ternifolia var. ternifolia 1’.- Lámina más dividida, nunca ternada………………………………………………………………………2 2.- Raquis fuertemente flexuoso………………………………………….………………....………… P. ovata 2’.- Raquis derecho……………………………………………………………………………………………..3 3.- Segmentos ovado-triangulares a sagitados, esporas crestado-reticuladas…..………………..… P. sagittata 3’.- Segmentos redondo-cordados, esporas ruguladas………………………………………….. P. cordifolia

Pityrogramma Link. En el Valle de México Pityrogramma ebenea (L.) Proctor, Brit. Fern Gaz.

Pteris L. Clave para separar las especies de Pteris. 1.- Lámina pinnada, las pinnas inferiores tripartidas, nerviación libre, frondes subdimorfos…….. P. cretica 1’.- Lámina pinnada-pinnatífida a bipinnada-pinnatífida, venación reticulada, frondes uniformes. P. orizabae

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Manual de prácticas de botánica II Ciclo 2011 POLYPODIACEAE Clave para separar los géneros de la familia Polypodiaceae del Valle de México 1.- Lámina entera……………………………………………………………………………………………….2 2.- Lámina cubierta por escamas densas o esparcidas, esporangios con parafisos peltados …..…… Pleopeltis 2’.-Lámina glabra o levemente pilosa, esporangios sin parafisos peltados……………….…. Campyloneurum 1’.- Lámina pinnatífida a pinnada………………………………………………………………………………3 3.-Segmentos lineares, más de 35 por lámina………………………………………………...………. Pecluma 3’.- Segmentos más anchos, menos de 35 por lámina…………………………………………………………..4 4.- Venación reticulada, soros alimentados por dos o más venas…….……….…………….……. Phlebodium 4.- Venación libre o reticulada, soros alimentados por una vena …………….…………….…….. Polypodium

Campyloneurum C. Presl. En el Valle de México Campyloneurum amphostenon (Kunze ex Klotzsch) Fée, Mén.

Pecluma M.G. Price En el Valle de México Pecluma alfredii (Rosent.) M.G. Price

Phlebodium (R. Br.) J. Sm. En el Valle de México Phlebodium aerolatum (Humb. Et Bonpl. ex Willd.) J. Sm.

Pleopeltis Humb. et Bonpl. ex Willd. Clave para separar las especies de Pleopeltis 1.- Lámina cubierta por el envés con escamas numerosas, imbricadas ………………………....… P. polylepis 1’.- Lámina cubierta por el envés con escamas esparcidas…………………. P. macrocarpa var. trichophora

Polypodium L. Clave para separar las especies de Polypodium. 1.- Lámina pinnada…………………………………………………………………..…….… P. subpetiolatum 1’.- Lámina pinnatífida, a veces los dos pares de pinnas inferiores pinnadas…………………………………2 2.- Lámina pilosa o glabra………………………………………………………………………………………3 3.- Lámina glabra ..……………………………………………….…………………....………. P. californicum 3’.- Lámina pilosa………………………………………………………………………………………………4 4.- Setas entre los esporangios de 0.5 a 0.8 mm de largo, escamas del rizoma de 8 a 12 mm de largo ………………………………………………………………………………………………...…… P. martensii 4’.- Setas entre los esporangios muy cortas, menores de 0.1 mm de largo o bien ausentes, escamas del rizoma de 4 a 6 mm de largo ………………………………………………………………………… P. hartwegianum 2’.- Lámina escamosa, por lo menos en el envés………………………………………………………………5 5.- Escamas imbricadas a densas en el envés de la lámina…..……………………………………………….6 6.- Peciolo más corto que la lámina, haz de la lámina glabra a glabrescente…………………………………7 7.- Haz glabro, con escamas densas sobre la costa, escamas negras a castaño oscuro. P. polypodioides 7’.- Haz con escamas numerosas, escamas castaño claro ………………..….……………………..... P. rosei 6’.- Peciolo igual o más largo que la lámina…………………………………………………………..………8 8.- Segmentos con el ápice dentado, escamas del peciolo hialinas ……..…….…..……………… P. platylepis 8’.- Segmentos con el ápice entero, escamas del peciolo castañas ………………………...… P. thyssanolepis 5’.- Escamas esparcidas en el envés del la lámina……………………………………………………………..9

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Manual de prácticas de botánica II Ciclo 2011 9.- Escamas de la lámina pequeñas, de 0.5 mm de largo, con margen entero a ondulado, escamas muy esparcidas ………………………………………………………………………………………...... P. plebejum 9’.- Escamas de la lámina mayores de 1 mm de largo, con margen dentado, fimbriado-dentado a laceradodentado, escamas esparcidas………………………………………………………………………………..…11 11.- Escamas anchamente ovadas, deltoide-ovadas a ovado-lanceoladas, margen bidentado, ápice largo acuminad, segmentos de 4 a 6 mm de ancho …………………………………………...……..…... P. guttatum 11’.- Escamas lanceoladas, margen dentado, segmentos de 1.5 a 3 mm de ancho……………… P. madrense

GRAMMITIDACEAE Clave para separar los géneros de la familia Grammitidaceae del Valle de México. 1.- Lámina pinnada, a veces la parte superior pinnatífida, escamas del rizoma con margen largo ciliado o bien glandulosas en ambas superficies y en los márgenes, caedizas con la edad………………………..Terpsichore 1’.- Lámina pinnatífida, a veces entera, diminutamente glandulares en el ápice, caedizas las glándulas con la edad o diminutamente erosas ……………………………………………………….……………… Melpomene

Melpómene A.R. Sm. et R.C. Morán En el Valle de México Melpómene pilosissima (M. Martens et Galeotti) A.R. Sm. et R.C. Morán

Terpsíchore A.R. Sm.. Clave para separar las especies de Terpsíchore 1.- Pinnas ovado-trapeciformes, escamas del rizoma ciliadas, de inserción sub-basal ..………… T. sphatulata 1’.- Pinnas lineares a angostamente oblanceoladas, escamas del rizoma enteras a erosas, inserción basal …………………………………………………………………………..……….………………… T. delicatula

DENNSTAEDTIACEAE Pteridium Scop. ex Gled. En el Valle de México Pteridium feei (W. Schaffner ex Fée) Faull, Contr. Arnold Arbor.

THELYPTERIDACEAE Thelypteris Schmidel. Clave para diferenciar las especies de Thelypteris Schmidel 1.- Soro cubierto por un indusio reniforme ………………………………………………………. T. puberula 1’.- Soros desnudos……………………………………………………………………..… T. pilosa var. pilosa

Clave para separar las variedades de Thelypteris pilosa 1.- Parte inferior de la lámina pinnada, parte media a superior pinatífida peciolo y raquis pilosos, lámina glabra a glabrescente o si pilosa sólo en la nervadura media …………………..…………T. pilosa var. pilosa 1’.- Parte inferior y superior de la lámina pinnada-pinnatífida, peciolo, raquis, y lámina pilosos…………….. ………………………………………………………………………………………………T. pilosa var. major

ASPLENIACEAE Asplenium L. Clave para separar las especies de Asplenium L. 1.-Lámina pinnada, tripinnada o inciso-lobada………………………………………………………………...2

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Manual de prácticas de botánica II Ciclo 2011 2.- Pinnas tripinadas o inciso-lobadas………………………………………………………………..…………3 3.- Peciolo y raquis escamoso …………………………………………………………………. A. praemorsum 3’.- Peciolo y raquis piloso o glabro ………………………………………………………….... A. sessilifolium 2’.- Pinnas nunca tripartidas o inciso-lobadas, pinnadas…………………………………………….…………4 4.- Plantas con ápice terminal prolífero, plantas menores de 15 cm de largo ……………………… A. palmeri 4.- Plantas sin ápice terminal prolífero, plantas mayores de 15 cm de largo……………………..……………5 5.- Pinnas asimétricas auriculadas, escamas del rizoma bicoloras………………………………..…………6 6.- Escamas del rizoma lineares, raquis alado-fibrilloso ………………….……………………... A. hallbergii 6’.- Escamas del rizoma lanceoladas a linear-lanceoladas, raquis no alado . …………………. A. monanthes 5’.- Pinnas simétricas, con o sin aurículas, escamas del rizoma bicoloras o de un solo color….……………7 7.- Escamas bicoloras con margen laciniado ………………………………………………….…..A. resiliens 7’.- Escamas de un solo color………………………………………………………………………………….8 8.- Indusio laciniado ……………………………………………….………………………..…... A. fibrillosum 8’.- Indusio entero a eroso, nunca laciniado ………………………………………..…………… A. castaneum 1’.- Lámina pinnada-pinnatífida o más dividida………………………………………………………………9 9.- Peciolo y raquis glabro a levemente piloso……………………………………………………. A. exiguum 9’.- Peciolo y raquis escamoso………………………………………………………………………………...10 10.- Lámina pinnada-pinnatífida a bipinnada, con 5 a 13 pares de pinnas ……………………. A. praemorsum 10’.- Lámina bipinnada a bipinnada-pinnatífida, con 15 a 20 pares de Pinnas ………………………………….………………………………………………………….. A. blepharophorum

WOODSIACEAE Clave para separar los géneros de la familia Woodsiaceae del Valle de México 1.- Indusio linear ……………………………………………..………………………………….…… Athyrium 1’.- Indusio en forma de copa u ovado…………………………………………………………………………2 2.- Indusio en forma de copa, plantas pilosas, lámina no delicadas …………...……………………… Woodsia 2’.- Indusio ovado, plantas glabras a levemente pilosas, láminas delicadas …….…………………. Cystopteris

Athyrium Roth. Clave de las especies de Athyrium 1.- Frondes de contorno linear a linear-lanceolar de 7 a 18 cm de ancho, pinna basal de 4.5 a 8 cm de largo por 2.5 a 3 cm de ancho, frecuentemente deflexas, escamas del rizoma castaño claro..................A. bourgeaui 1’.- Frondes de contorno deltoide-lanceolado a ovado-deltoideo de 8 a 32 cm de ancho, pinna basal de 8 a 17 cm por 2.5 a 8 cm de ancho, frecuentemente ascendentes, escamas del rizoma castaño oscuro..... A. arcuatum

Cystopteris Bernh. En el Valle De México Cystopteris fragilis (L.) Bernh. var. fragilis

Woodsia R. Br. Clave para separar las especies de Woodsia 1.- Pinnas glabras, indusio se rompe en fragmentos articulados o lóbulos en la madurez de los esporangios y entre éstos se encuentran tricomas, pinnas inferiores reducidas, plantas de no más de 20 cm de largo ………………………………………………………………………………………………......….W. mexicana 1’.- Pinnas pilosas, el indusio no se rompe en fragmentos en la madurez, esporangios sin tricomas entre éstos, pinnas inferiores más cortas, pero no reducidas, planta de 20 a 45 cm de largo …………………… W. mollis

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Manual de prácticas de botánica II Ciclo 2011 DRYOPTERIDACEAE Clave para separar los géneros de la familia Dryopteridaceae del Valle de México. 1.- Soros protegidos por el margen reflejo de la lámina ………………………………………….... Plecosorus 1’.- Soros protegidos por un indusio……………………………………………………………………………2 2.- Lámina pinnada ……………………………………………………………………………. Phanerophlebia 2’.- Lámina pinnada-pinnatífida o más dividida………………………………………………………………3 3.- Indusio peltado, segmentos con margen espinuloso …………...…………………………….. Polystichum 3’.- Indusio reniforme, segmentos con margen entero, ondulado, crenulado, lobado, nunca espinuloso………. ………………………………………………………………………………………………………..Dryopteris

Dryopteris Adans. Clave para separar las especies de Dryopteris 1.- Raquis y peciolo escamoso………………………………………………………………………………….2 2.- Segmentos oblongo-cuadrangulares, ápice truncado, lámina coriácea ……………………. D. wallichiana 2’.- Segmentos ovados, ápice redondo a subagudo, lámina herbácea …………………… D. pseudofilix-mas 1’.- Raquis y peciolo glabro a levemente pubescente, en caso de presentarse escamas, éstas sólo en la parte inferior del peciolo……………………………………………………………………………………………...3 3.- Soro submarginal cubierto por un indusio glabro adherido a los senos …….……………………..D. patula 3’.- Soro cerca de la nervadura media, cubierto por un indusio finamente glandular ……….… D. cinnamonea

Phanerophlebia C. Presl En el Valle de México Phanerophlebia nobilis (Schltdl. et Cham.) C. Presl

Plecosorus Fée En el Valle de México Plecosorus speciosissimus (A. Braun ex Kunze) T. Moore

Polystichum Roth Clave para separar las especies de Polystichum 1.- Plantas menores de 40 cm de largo, lámina menor de 12 cm de ancho, pinnas basales deflexas ………………………………………………………………………………………………………P. fournieri 1’.- plantas de más de 40 cm de largo hasta 1.5 m de largo, lámina mayor de 12 cm de ancho, pinnas basales no deflexas……………………………………………………………………………………………………...2 2.- Escamas del rizoma con margen entero, indusio café, anaranjado a veces negro, pero nunca claro ……………………………………………………………………………………………………... P. hartwegii 2’.- Escamas del rizoma con margen denticulado a corto ciliado, indusio claro ….…………. P. rachichlaena

LOMARIOPSIDACEAE Elaphoglossum Schott ex J. Sm. Clave para separar las especies de Elaphoglossum 1.- Láminas estériles con escamas muy evidentes, mayores de 2 mm de largo dispuestas en el peciolo y envés de la lámina……………………………………………………………………………………………………..2 2.- Escamas del peciolo y lámina con largos cilios o ciliado-dentadas………………………………………..3 3.- Lámina angostamente elíptica, de consistencia herbácea, escamas del peciolo de 1 a 3 mm de largo, lámina estéril mucho más corta que la fértil …………………………………………………………. E. laxipes 3’.- Lámina elíptica, coriácea, escamas del peciolo de 3 a 6 mm, lámina estéril un poco más larga que la fértil ……………………………………………………………………………………...............………… E. engelli

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Manual de prácticas de botánica II Ciclo 2011 2’.- Escamas del peciolo y lámina enteras o con dientes muy cortos……………………………………..……4 4.- Escamas del peciolo y lámina de 5 a 8 mm de largo, frondes de más de 50 cm de largo .… E. erinaceum 4’.- Escamas del peciolo y lámina menores de 4 mm de largo, frondes menores de 50 cm de largo…………5 5.- Envés de la lámina estéril, cubierto por escamas deltoides-lanceoladas, escamas del rizoma enteras ………………………………………………………...…………………………………………… E. hartwegii 5’.- Envés de la lámina estéril cubierto por escamas lineares, escamas del rizoma con pequeños dientes…6 6.- Lámina estéril oblongo-elíptica, escamas del pecilo y raquis enteras, peciolo sin tricomas glandulares …………………………………………………………………………………………….………… E. monicae 6’.- Lámina estéril ovada a ovada-lanceolada, escamas del pecilo y raquis con pequeños dientes y el peciolo además con tricomas glandulares …………………………………………………………………… E. lindenii 1’.- Láminas estériles sin escamas o bien con escamas menores de 2 mm de largo, dispuestas en el peciolo y envés de la lámina………………………………………………………………………………………………7 7.- Envés de la lámina estéril glabro, escamas del rizoma lineraes de 9 a 17 mm de largo …..… E. glaucum 7’.- Envés de la lámina estéril con escamas menosres de 2 mm de largo, escamas del rizoma menores de 9 mm de largo……………………………………………………………………………………………………..8 8.- Escamas del peciolo y raquis de forma estrellada…………………………………………………………9 9.- Lámina fértil sin escamas interesporangiales …………………………………………………… E. muelleri 9’.- Lámina fértil con escamas interesporangiales ……………………………………………..…… E. gratum 8’.- Escamas del peciolo y raquis de otras formas, nunca estrelladas………………………………………10 10.- Lámina fértil sin escamas interesporiales………………………………………………………………...11 11.- Escamas del rizoma lanceoladas, lámina fértil similar a la estéril en forma y tamaño o un poco más grande ………………………...……………………………………………………………………..… E. affine 11’.- Escamas del rizoma ovadas a ovado-lanceoladas, lámina fértil de forma similar pero mucho más grande que las estériles …………………………………………………………………………………….. E. minutum 10’.- Lámina fértil con escamas interesporangiales …………………………………………...… E. petiolatum

BLECHNACEAE Clave para separar los géneros de la familia Blechnaceae del Valle de México. 1.- Venación libre, soros lineares protegidos por un indusio continuo …………………………...…. Blechnum 1’.- Venación reticulada, soros lineares protegidos por varios inducíos ..……… ………………. Woodwardia

Blechnum L. Clave para separar las especies de Blechnum 1.- Frondes dimorfas, lámina estéril pinnatífida…………………………….…………………B. stoloniferum 1’.- Frondes uniformes, lámina pinnada en la porción media a la inferior, la porción superior pinnatífida ……………………………………………………………….…………………………….…… B. glandulosum

Woodwardia J.E. Sm. En el Valle de México Woodwardia spinulosa M. Martens et Galeotti

MARSILEACEAE Marsilea L. En el Valle de México Marsilea mollis B.L. Robinson et Fernald SALVINIACEAE Azolla Lam. En el Valle de México Azolla mexicana C. Presl

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Manual de prácticas de botánica II Ciclo 2011

Clave para los géneros de pterydophyta. Flora de Nueva Galicia De: Roger Mc Vaugh Universidad de Michigan, U.S.A. Traducción: Patricia Silva Sáenz (24 de Mayo de 1995). Herbario de la Facultad de Biología, U.M.S.N.M. 1. Plantas sin raíces ni hojas verdaderas (presentan diminutas enaciones escuamiformes sin nervadura); talos aéreos, verdes, ramificados dicotómicamente; esporangios triloculares……………………………. Psilotum 1’. Plantas con raíces (excepto en Trichomanes, un helecho con hojas membranosas compuestas) y hojas; tallos de forma diversa, a menudo postrados o subterráneos, raramente ramificados dicotómicamente; esporangios uniloculares………………………………………………………………………………….……2 2. Hojas con una sóla nervadura, simple sin ramificar. ……………………………………………………….3 3. Hojas en verticilos de 10 o más, unidas en forma de vaina dentada en los nodos; tallos huecos, acanalados longitudinalmente, con surcos y crestas……………………………………………………………. Equisetum 3’. Hojas arregladas en espiral o raramente verticiladas en No. de 4, sin unirse formando una vaina en los nodos; tallos sólidos, acanalados. ………………………………………………………………………..……4 4. Plantas acuáticas arraigadas, en Nueva Galicia principalmente en hondonadas o depresiones donde se inunda durante la estación lluviosa; hojas en roseta, basales, lineares o subuladas, mayores de 12-30 cm de long; hacia la base se dilatan e incluyen a los esporangios encerrados en un esporocarpo ……………………………………………………………………………………………...…………… Isoetes 4’. Plantas terrestres, epífitas o saxicolas, no acuáticas; hojas de menos de 3 cm de long; lineares a oblongas u ovadas, caulinares; los esporangios en las axilas de las brácteas especializadas, o en hojas no modificadas cerca del ápice de las ramas. …………………………………………………………………….………….…5 5. Esporofilas modificadas en brácteas, en estróbilos de 4 lados (conos); plantas heterospóricas; hojas lineares a ovadas ……………………………………………………………………………………Selaginella 5’. Esporofilas similares o idénticas a las hojas vegetativas (algunas de menor tamaño), o los conos redondos en sección transversal; plantas homospóricas; hojas usualmente lineares ………………………. Lycopodium 2’. Hojas con nerviación ramificada (dividida). …………………………………………………………..….6 6. Plantas acuáticas flotadoras o arraigadas. …………………………………………………………………7 7. Hojas de 2 cm de long; o menos; plantas flotantes sobre el agua o descansando en el cieno…………..…8 8. Hojas vegetativas flotadoras oblongas u orbiculares, 2 en cada nodo, 1 a 2 cm de long; pilosas en la superficie adaxial …….…………………………………………………………………..…………… Salvinia 8’. Hojas imbricadas en dos hileras, sobre delgados tallos ramificados, 1 a 2 mm de long; glabras ………………………….…………………………………………………………………………...…… Azolla 7’. Hojas (incluyendo el estípite) comúnmente de 5 cm de long; o más; plantas arraigadas en el cieno..… 9 9. Hojas principalmente entre 5-18 cm de long; con 4 pínulas delgadas y flaveoladas en el ápice del estípite; plantas heterospóricas, con esporangios en esporocarpos nuciformes en la base del estípite ………..…….………………………………………………………………………………………….Marsilea 9’. Hojas comúnmente de 1.5 a 3.5 m de long; pinnadas con muchas pinnas coriáceas; plantas homospóricas, con esporangios cubriendo la superficie abaxial de la lámina………………………………….. Acrostichum 6’. Plantas terrestres (a veces, como en Osmunda, en suelos muy humedos), saxícolas epífitas…………...10 10. Esporangios naciendo en espigas erectas o panículas desde cerca de la base de la parte vegetativa en la lámina del fronde. ……………………………………………………………………………………………11 11. Dos panículas fértiles erectas; plantas no carnosas; rizoma en la superficie del suelo; raíces delgadas, tiesas …………………..………………………………………………………….…………………..... Anemia 11’. Una porción fértil erecta; plantas, al menos hacia la base, carnosas; raíces carnosas. Lamina vegetativa simple, entera; plantas, al menos hacia la base, carnosas, raíces carnosas.. ………………….Ophioglossum 12. Lamina vegetativa compuesta, dividida en forma variable; porción fértil del fronde es una panícula ………………………………………………………………………………….………………….. Botrychium 10’. Esporangios naciendo en la superficie abaxial de la lámina, o al menos no en espigas erectas o panículas desde la base, pero a veces en fronde modificados o en parte de los frondes que se modifican. ……………………………………………………………………………………………………….………..13 13. Hojas trepadoras (ascendentes), el raquis alargado o de crecimiento indefinido, trepador ...…...Lygodium 13’. Hojas no trepadoras (ascendentes), pero a veces repetidamente bifurcadas y extendidas……………..14

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Manual de prácticas de botánica II Ciclo 2011 14. Hojas bifurcadas dicotómicamente. ……………………………………………………………..……….15 15. Plantas terrestres, a menudo en habitats soleados; las hojas de 0.7 a 4 m de largo, con una yema o crecimiento continuo axilar en las bifurcaciones; todas las frondes semejantes; esporangios en soros redondos sobre la superficie abaxial de la lámina …………………………………………………. Gleichenia 15. Plantas epifitas, en bosques húmedos, las hojas de 5-12 cm de largo, sin yemas axilares en las bifurcaciones; frondes dimórficos, el fronde fértil más grande que el estéril y casi sin divisiones; esporangios cubriendo la superficie abaxial de la lámina fértil …………………………………..…...…………Peltapteris 14’. Hojas sin bifurcaciones dicotómicas, en pocos géneros el raquis algunas veces se bifurca en el ápice. ………………………………………………………………………………………………………….……..16 16. Esporangios de pared gruesa, en cada soro fusionados firmemente, formando una sola estructura (sinangio), el sinangio con 12-16 lóculos que se abren y exponen a los esporangios individuales; frondes carnosos de 2-4 m de largo, con estipulas masivas conspícuas en la base (éstas raramente presentes en los especimenes del herbario) .. …………………………………………..……………………………… Marattia 16’. Esporangios no fusionados en sinangios; hojas de textura membranosa a coriácea, pero no conspicuamente carnosas (flexibles) estipulas raras. ………………………………………………………17 17. Frondes fértiles y estériles diferentes, porciones del fronde fértil o del fronde entero modificadas para la producción de esporangios. ……………………………………………………………………..……………18 18. Lámina fértil simple esencialmente entera (en los géneros de Nueva Galicia); lamina estéril similar, comúnmente con una lámina ensanchada y un estípite corto en proporción con el tamaño de la lámina ………………………………………………………………………………………...……….. Elaphoglossum 18’. Lámina fértil, o la porción de la lámina fértil, compuesta……………………………………………19 19. Porción estéril de la lámina dos veces pinnada (en los géneros de Nueva Galicia), la porción fértil confinada más o menos al cuarto distal en la lámina; rizoma y lámina cubierta con pelos ……………………………………………………………………………………………………….. Osmunda 19’. Fronde estéril profundamente pinnatífido a una vez pinnado, el fronde fértil distinto; rizoma con escamas o desnudo; lámina glabra, escamosa o con pelos.…………… ……………………………………20 20. Lamina estéril profundamente pinntífida-pectinada; venas libres …………………………... Plagiogyria 20’. Lámina estéril 1 a 3 veces pinnada; venas reticuladas. …………………………………………………21 21. Fronde fértil una vez pinnado……………………………………………………………………..Bolbitis 21’. Fronde fértil 2 a 3 veces pinnado…...…………………………………..……………………Onocleopsis 17’. Frondes fértiles y estériles semejantes (monomórficos). ………………………..……………………..22 22. Esporangios confinados al par de pinnas basales, las que presentan su lámina ligeramente contraída hacia dentro …..……………………………………………………………………………………………… Anemia 22’. Esporangios no confinados al par de pinnas básales…………………………..………………………23 23. Soros marginales o submarginales en el fronde. …………………………………………………………24 24. Soros en copas o tubos marginales submarginales, a todo lo largo del márgen, el margen del fronde no se recurva. …………………………………………………………………………………………………….…25 25. Lamina muy delgada (1 célula de grosor), soros sobre cubiertos por un invólucro en forma de copa o tuvo, con un margen entero a bilobulado; esporangios adheridos a un eje alargado (receptáculo), éste a menudo prolongado más allá del invólucro. …………………………………………………………..…….26 26. Invólucro alargado; receptáculo usualmente exerto, como una cerda proyectada más allá del invólucro……………………………………………………………………...……………………Trichomanes 26’. Invólucro en forma de copa o bivalvado; los lóbulos redondeados; receptáculo no exerto (en los géneros de nueva Galicia)……………………………………………...……… ………………...…….Hymenophyllum 25’. Láminas de más de una célula de grosor; invólucro bivalvado, en copa o con cabo; el receptáculo no se prolonga demasiado. …………………………………………………………………………………………27 27. Soros continuos alo largo del margen, más largos que anchos (medidos a lo largo del margen). …………………………………………………………………………………………………..….… Lindsaea 27’. Soros interrumpidos, cortos, en forma de copa, no más de dos veces en largo que la anchura (medido alo largo del margen) ……………………………………………………………...………………….Dennstaedtia 24’. Soros casi cubiertos con el margen recurvado de la lamina (falso indusio), o abiertos, sin cubierta de este tipo.…………………………………………… …………………………………………………………..…28 28. Rizoma piloso, usualmente alargado frondes ásperos, frecuentemente de 1m o más de largo; lamina anchamente deltoidea, dividida en 3 (ternada), a veces más larga que el estípite…..………………Pteridium

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Manual de prácticas de botánica II Ciclo 2011 28’. Rizoma escamoso, corto o erecto fronde de distintas formas, comúnmente más pequeños que 1 m de largo, la lamina casi siempre linear a elíptica o lanceolada, rara mente deltoidea y dividida en 3 (ternada), si este es el caso, entonces el fronde es comúnmente más pequeño.……… ……………………………….….29 29. Lámina simple, entera, linear a estrechamente elíptica; soros sin indusio………...……………………30 30. Lámina linear, 0.8 a 2 mm de ancho, con una hilera simple de areolas entre la vena media y el margen…………………………………………………………………………………………..………Vittaria 30’. Lámina linear-elíptica, 6 a 11mm de ancho, con 2 a 3 hileras de areolas entre la vena media y el margen………………………………………………………………………..…………………..Ananthacorus 29’. Lámina completamente pinnada, a varias veces pinadamente dividida; a menos con falso indusio presente, consistente en el margen enrollado y modificado. ………………………………..………………31 31. Esporangios sobre la superficie abaxial de porciones recurvadas en segmentos dístales de la lámina, escondidos de bajo de ellos…..…………………………………………………...…………………..Adiantum 31’. Esporangios cubiertos por el margen reflejo de la lamina, pero no nacen sobre la superficie del mismo falso indusio…………………………………………………………………………………………..………32 32. Extremos de las venas fértiles conectadas por una comisura marginal en su porción apical (nervadura cerrada) portando los soros, en otros casos las venas son libres o reticuladas; esporas con una cresta sobre su ecuador; superficie adaxial de la lamina a menudo provista de delgadas espículas en las puntas donde raquis se dividen; frondes pequeños o grandes, 0.2 a 2 o 5 m de longitud…………………………….……….Pteris 32’. Extremos terminales de las venas fértiles libres, no conectadas por una comisura marginal (nerviación abierta); las otras venas también libres; esporas sin cresta ecuatorial; espículas ausentes; frondes pequeños a tamaño medio, casi siempre menores que 60 a 65 cm de longitud..……… …………………………………33 33. Estípite y raquis densamente revestidos con escamas de 2-4mm de ancho; segmentos del fronde, al menos las porciones fértiles, arrosariadas (de rosario), con márgenes fuertemente enrollados; estípite con varios haces vasculares; esporas bilaterales; plantas de grandes elevaciones, 2600 a 3350msnm, en nueva Galicia…………………………………………………………………………….…………………Plecosorus 33’. Estípite y raquis revestidos con escamas estrechas o sin escamas; segmentos (excepto en unas pocas especies de Cheilantes) raramente arrosariados; estípite con 1-2 haces basculares; esporas tetraédricas (triletes); diversas habitats. …………………………………………………………………………….……34 34. Surco adaxial del estípite y raquis densamente pubescente, con pequeños pelos claviformes; soros marginales cubiertos por un falso indusio, los segmentos del fronde producen un falso margen que se proyecta más allá del indusio………………………………………………………………………...…Mildella 34’. Surco adaxial del estípite y raquis no pubescente con pelos claviformes, falso margen ausente estípite gris mineral a café claro, o si es atropurpúreo, entonces glabro y pinnado-ternado o simplemente pinado con menos de 5 pares de segmentos (pinnas); el eje foliar no escamoso …………………………………Pellaea 35. Estípite atropurpúreo o castaño, o si es café claro o amarillo entonces con glándulas viscosas; frondes pinnados, no ternados raramente simplemente pinadas (una vez); ejes foliares a menudo escamosos. ……………………………………………………………………………………………………..………….36 36. Soros pequeños (hasta 0.5 mm de largo), discretos, no continuos, laminas glabras, excepto por la presencia de pelos dispersos menores de 0.1 mm de longitud, membranosos; ejes atropurpúreos ……….…………………………………………………………………………………...………... Adiantopsis 36’. Soros contínuos o si discretos, la lamina firme a coriácea, lamina escamosa, pilosa o glabra; ejes diversos. ……………………………………………………………………………………………….……..37 37. Indusio (falso) contínuo o interrumpido, ancho o estrecho, esencialmente plano membranoso; segmento de fronde arrosariado a linear, laminas pinadas a tetrapinnadas …………………………………Cheilanthes 37’. Indusio (falso) continuo, ancho, convexo, coriáceo; segmentos del fronde deltoideos o anchamente lanceolados a oblongo-lanceolados; laminas pinnadas-pinnatífidas a bippinadas-pinnatífidas. …………………………………………………………………………………………...……… Cheiloplecton 23’. Soros sobre la superficie abaxial de la lámina, a lo largo de las venas o de la vena media, o dispersos en toda la superficie de la lámina. ………………………………………………………………………………38 38. Soros dispersos en toda la superficie de la lámina, abaxiales. …………………………..………..……39 39. Lamina entera; frondes de 60 cm de longitud o menores; plantas epífitas, saxicolas o terrestres ……………………………………………………………………………………………..……Elaphoglossum 39’. Lámina una vez pinnada; frondes de 1.5-3.5 m de longitud; plantas de pantanos…………. Acrostichum 38’. Soros discretos o corriendo a lo largo de las venas; pero no dispersos en toda la superficie abaxial de la lámina. ………………………………………………………………………………………………………..40

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Manual de prácticas de botánica II Ciclo 2011 40. Indusio ausente, el soro prolongado a lo largo de las venas. …………………………………………...41 41. Lámina simple sin lóbulos; plantas epifitas, raramente sobre rocas, usualmente tienen escamas clatradas. …………………………………………………………………………………………………...……………42 42. Soros extendidos en toda la longitud del fronde en dos largos canales, uno sobre cada uno de los lados de la vena media. …………………………………………………………………………………….…………..43 43. Lamina linear, 0.8-2 mm de ancho, con una hilera simple de areolas entre la vena media y el margen …………………………………………………………………………………………………………..Vittaria 43’. Lámina linear-elíptica, 6-11 mm de anchura, con 2-3 hileras entre la vena media y el margen …………………………………………………………………………………………..………. Ananthacorus 42’. Soros no extendidos en toda la longitud de la lámina; alargados paralelamente a la vena media o en ángulo a la misma. …………………………………………………………………………………..………..44 44. Rizoma con escamas diminutas, redondas, distintivamente comosas; lámina con escamas diminutas; soro alargado paralelamente a la vena media; raíz con pelos finos laxa ………...………………………..Pleopeltis 44’. Rizoma con escamas linear-lanceoladas, glabro; lámina glabra; soro alargado en un ángulo ligero respecto de la vena media; pelos en las raíces y rizoma fuertes, rígidos ………………………..Loxogramme 41’.Lámina simple profundamente lobulada a tripinnada; diversos habitats; escamas clatradas ausentes.45 45. Láminas simples, palmadamente (raramente pinadamente) lobuladas, no seríceas sobre la superficie abaxial. ……………………………………………………………………………...………………………..46 46. Venas reticuladas; esporangios extendidos en casi toda la longitud de la venas………………Hemionitis 46’.Venas libres; esporangios confinados al tercio o dos tercios terminales de las venas…………Bommeria 45’. Lámina una vez pinnada, o más dividida, seríceas o no sobre la superficie abaxial…. …………...…47 47. Lámina serícea sobre la superficie abaxial, glaucas a blancas o amarillas. ……………………………48 48. Esporangios sobre la superficie abaxial, extendidos sobre toda la longitud de las venas, no concentrados cerca del margen; estípite con 2 haces vasculares; lámina glabra; frondes (16) 30-115 cm de longitud…………………………………………………………………………….…………….Pityrogramma 48’. Esporangios cerca del margen, hacia el extremo Terminal de las venas, formando una banda de 0.5- 1.5 mm de ancho; estípite con 1 haz vascular; lámina con escamas o glabras; frondes 6-40 cm de longitud………………………………………………………………………………………...…...Cheilanthes 47’. Láminas no seríceas debajo. ….…………………………………………………………………………49 49. Lámina bipinnada a tetrapinnada, glabra excepto en la base; fronde de 31 cm de longitud o menos; tallo (rizoma) pobremente desarrollado, cerca de 1 mm de diámetro, inconspicuo, las bases viejas de los estípites no son persistentes …..……………………………………………………………………………. Anogramma 49’. Lamina una vez pinnada a pinnada-pinnatífida, glabra a pilosa o escamosa; frondes (7-) 30-100 cm de longitud; rizomas bien desarrollados; bases de los estípites persistentes. …………………….……………..50 50. Superficie abaxial de la lámina densamente revestida con escamas o pelos …………………Cheilanthes 50’. Superficie abaxial de la lamina glabra o con pelos dispersos. ………………………………………...51 51. Lámina una vez pinnada, glabra; soro 5-14 mm de longitud………………………..…………Hemionitis 51’. Lámina pinnada-pinnatífida, con pelos aciculares; soro de 1-4 mm de longitud. …………………….52 52. Soro en posición media sobre las venas; lámina con pelos aciculares unicelulares sobre ambas superficies; venas medias sin escamas; esporas bilaterales…………………………………...……Thelypteris 52’. Soros confinados a los 2-4 mm terminales de las venas; lámina con pelos segmentados sobre la superficie abaxial solamente; vena media dispersamente escamosa en la superficie abaxial; esporas tetrahédricas (triletes) ……….…………………………………………………..………………Hemionanthes 40’. Indusio usualmente presente, o si el indusio ausente el soro es redondo. ………………………….…53 53. Soro alargado, sobre la vena media de los segmentos, todos con indusios también alargado……….…54 54. Soro continuo a lo largo de la vena media; frondes mayores de 0.6 m de longitud……………...Blechnum 53’. Soros interrumpidos, a lo largo de la vena media y el margen. ……………………………….………55 55. Soros alargados, con indusios alargados. ………………………………………………………….……56 56. Soro simple, no encorvado ni doblado; nuestras especies frecuentemente terrestres, algunas veces creciendo sobre rocas, o menos frecuentemente son epífitas ……………………………………… Asplenium 56’. Soros, o algunos de ellos, encorvados sobre la vena en su porción distal, o contrapuestos a ambos lados de la vena; terrestres. …………………………………………………………………………………………57 57. Soros (al menos algunos de ellos) encorvados sobre la vena en el extremo distal ………….....Athyrium 57’. Soros (al menos algunos de ellos) dobles, opuestos uno a otro en la misma vena ……………Diplazium 55’. Soros redondos a ligeramente oblongos, con o sin indusio. ………………………………………..…58

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Manual de prácticas de botánica II Ciclo 2011 58. Helechos arborescentes, con frondes mayores de 3 m de longitud; láminas bipinnadas-pinnatífidas; tronco mayor de 10 m de altura y de 10 cm de diámetro; el indusio surge de debajo del soro, globoso, o ausente, reemplazado por 1-3 escamas centrales ………..…………………………….………….…Cyathea 58’. Plantas no arborescentes; hojas e indusios de varias formas. …………………………………………59 59. Indusio ausente; frondes simples a una vez pinnadas……………………………….……………..……60 60. Frondes con pelos; lámina pinnada o pinnatisecta, las pinnas o lóbulos menores de 15 mm de longitud; esporas verdes, tetrahédricas, con una cicatriz (huella) en Y ………………..………….. Grammitis 60’. Frondes con escamas, al menos en la base, o glabras, raramente con pelos; pinnas o lóbulos, si presenta, comúnmente mayores de 15 (hasta 20) mm de longitud; esporas doradas, en forma de fríjol. ….…..61 61. Lámina simple, entera……………….……………………………………………………………………62 62. Soros en 1 hilera a cada lado de la vena media, oblongos a alargados; con parafisos peltados semejantes a escamas (estos frecuentemente son deciduos) ……………….………..………………Pleopeltis 62’. Soro en 2 o más hileras a cada lado de las venas medias, redondo, sin parafisos……. Campyloneurum 61’. Lámina pinnatífida, pinnada o más dividida. ………………………………………………..…………63 63. Venas libres. …………………………………………………………………………………………...…64 64. Rizoma con escamas peltadas a veces clatradas; estípite acanalado, gris mineral, raramente oscuro; frondes pinnatífidos, algunas veces pectinados………..…………………….……………………Polypodium 64’. Rizoma con escamas adheridas basalmente, nunca clatradas; estípite negro a café rojizo; frondes pectinados…………………………………………………………………………………………….. Pecluma 63’. Venas reticuladas……………………………………………………………………………………..…65 65. Soros incluidos en una vena libre terminal, en 1 o varias hileras entre la vena media y el margen; parafisos presentes o ausentes. ……………………………………………………………………… 65’. Soros en la unión de dos o más venas emergentes incluidas (inclusas), en 1 hilera a cada lado de la vena media. ………………………………………………………………………….…………………...……...66 66. Rizoma con escamas de 1.5 a 2 mm de longitud, negras con una porción pálida estrecha en el margen; 1 a 2 pares de pinnas con 4 a 10 cm de longitud; soros con parafisos peltados semejantes a escamas, a menudo tempranamente deciduos………………………………………………...……………………………Pleopeltis 66’. Rizoma con escamas de 4 -9 mm de longitud, café a doradas; 4 a 13 pares de pinnas, a menudo de 10 a 20 cm de longitud, sin parafisos…………………………………………………………………..Phlebodium 59’. Indusio presente, o si ausente, los frondes más de una vez pinnados (hasta 4 veces pinnados)…...…67 67. Indusio en forma de capota o copa. ………………………………………………………………………68 68. Indusio en forma de capota, adherido por un lado y arqueado sobre el soro. ……………..… Cystopteris 68’. Indusio en forma de copa o en 4 lóbulos aplanados debajo del soro …….…………………… Woodsia 67’. Indusio reniforme, peltado o ausente. ……………………………………………………………..……69 69. Venas reticuladas. ………………………………………………………………………………..………70 70. Estípite con 2 haces vasculares; lámina con pelos aciculares; venas a veces libres; indusio presente o ausente, si se presenta, reniforme ….………………………………………………..………………Thelypteris 70’. Estípite con más de 2 haces vasculares; pelos aciculares ausentes; venas abundantes y finamente anastomosadas; indusios presentes, peltados. …………………………………………………………Tectaria 69’. Venas libres. ………………………………………………………………………………….……….....71 71. Indusio peltado. ……………………………………………………………………………..………...…72 72. Lámina bipinnada………………………………………………………………………...…… Polystichum 72’. Lámina una vez pinnada………………………………………………………..…………Phanerophlebia 71’. Indusio reniforme o ausente. …………………………………………………………...………………..73 73. Estípite con 2 haces vasculares; lámina con pelos aciculares; venas algunas veces anastomosadas…….. ……………………………………………………………………………………………………….Thelypteris 73’. Estípite con más de 2 haces vasculares; pelos aciculares ausentes; venas todas libres. ………………74 74. Láminas una vez pinnadas; extremos de las venas a menudo con puntos blancos; plantas frecuentemente estoloníferas y con o sin tubérculos escamosos……………………………………………………Nephrolepis 74’. Lámina pinnadas-pinnatífidas hasta 4 veces pinnadas; extremos de las venas sin puntos blancos; tubérculos ausentes. …………………………………………………………………….……………………75 75. Láminas catádromas………………………………………………………………….………..……Ctenitis 75’. Láminas anádromas...…………………………………………………………………………...Dryopteris

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Manual de prácticas de botánica II Ciclo 2011 Clave para los géneros de pteridofitas de Chiapas Por Alan R. Smith.3 Traducción de Juan Manuel Ortega R. Géneros relacionados a los helechos (“helechos afines o primitivos”) 1. Tallos y ramas conspicuamente acanalados y con células epidérmicas impregnadas de sílice, huecos; hojas de 10-15 en verticilos, formando vainas en los nudos; los esporangios nacen en el lado interno de escamas peltadas pendunculadas………………………….………………………………...………………………….……..Equisetum 1’. Tallos, ramas y hojas con otras características………………………………………………….……………..2 2. Hojas incospicuas, a veces bífidas, tallos desnudos con ramificación dicotómica; esporangios triloculares; plantas sin raíz………...……………………………….…………………..……………………...……Psilotum 2’. Hojas conspicuas, nunca bífidas, tallos foliosos con ramificación variada; esporangios uniloculares; plantas con raíz…………………………..………...….………………………………………………………..…………3 3. Hojas con más de 3 cm de longitud; juncoides; que surgen de un tallo corto parecido a un cormo; planta acuática……………………………………………..……….…………………………………………....Isoetes 3’. Hojas con menos de 3 cm de longitud; nunca juncoides; que surgen de un tallo alargados; planta terrestres o epifitas ……………………………………………….……………………………………………………….……….4 4. Estróbilos cuadrangulares; hojas estériles anchas, frecuentemente membranáceas, usualmente dimórficas; planta heterospóreas; terrestres o rupícolas……………………………………………………..….Selaginella 4’. Estróbilos si se presentan usualmente rollizo (cilíndrico y prolongado); hojas aciculares a latifoliadas, frecuentemente coriáceas, usualmente monomórficas; planta homospóreas; epífitas o terrestres …………………………………………………………………………………………….....…..…Lycopodium

Polypodiophytas (helechos verdaderos) 1. Plantas acuáticas; homospóreas o heterospóreas ……………..……………….………………..…………. 2 1’. Plantas terrestres, epífitas o rupícoias; homospóras ……………..………..……..….………………………… 6 2(1). Frondas menores de 3 cm de longitud, exestipitadas; homospóreas ……....….…….………………....3 2’. Frondas mayores de 3 cm de longitud, estipitadas; homospóreas o heterospóreas ………..…………………... 4 3(2). Frondas de 5-30 mm de longitud, hirsutas ……..…….…………………………..…………..… Salvinia 3’ .Fronda de ca. 2 mm de longitud, glabras ……….………..……………………………………….…….. Azolla 4(3). Lámina cuadripartida, semejante a la del trébol (Trifolium); heterospóreas …....………....… Marsilera 4’. Lamina pinnada o subdicotómica; homospóreas ……..……………………….………………………………..5 5(4). Frondas generalmente menores de 0.5 m de longitud, fuertemente dimórficas, carnosa a membranáceas; soros marginales .…………………………………….………………. ………………………….. Ceratopteris 5’. Frondas se 2-3 m de longitud, monomórficas o ligeramente dimórficas, coriáceas; esporangios cubriendo la superficie de la lamina fértil …..……………………………….……………………………….………. Acrostichum 6(1). Esporangios que nacen sobre pinnas especializadas fértiles (espigas o panículas), insertadas o en justo debajo de la base de la lámina ………...……………………..…………………….…………………………. 7 6’. Esporangios dispuestos de manera diferente, o si se presentan pinnas especializadas, estas en el mismo plano que el resto de la lámina ……………………………………………………………………………………….. 9 7(6). Pinnas fértiles erectas 2 por fronda; lámina no carnosa, 1-pinnada o más dividida; esporangios de pared delgada (1 célula de grosor); anillo presente……..………..……………..…… Anemia 7’. Pinnas fértiles erectas 1 por frondas; lámina algo carnosa, simple a pinnada o más dividida; esporangios de pared gruesa; anillo ausente …………………………………….…..……………………………………………… 8 8(7). Lámina simple (palmatilobada en 1 especie); venas reticuladas; pinna fértil espiciforme.Ophioglossum 8’. Lámina ternado-compuesta; venas libres; espiga fértil paniculada …………………..……….… Botrychium 9(6). Frondas extremadamente delgadas (usualmente de 1 célula de grosor, excepto en la vena media), traslucidas; soros marginales, involucro soral bivalvado o tubular ……………..……………………..…. 10

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 Smith, A.R. 1981. Flora of Chiapas. Part 2 Pteridophytes. California. Academy of Sciences. 370 pp.

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Manual de prácticas de botánica II Ciclo 2011 9’. Frondas de 3 a muchas células de grosor, membranosas a coriáceas, usualmente no traslúcidas; soros varios …………………………………...………………………………………………………………….…..…… 11 10(9). Involucro soral tubular, hipocrateriforme; receptáculos exsertos de los involucro..Trichomanes 10’. Involucro soral bivalvado; receptáculo usualmente incluido dentro del involucro… …………….………………………………………………………………………………………………………………………………Hymernophyllum 11(9). Eje principal de la fronda ramificado dicotómicamente; indusio ausente ……..…..………………. 12 11’. Eje principal de la fronda no dicotómico; indusio ausente o presente……………….……...……………… 16 12(11). Frondas trepadoras, arriba de 0.5 m de longitud; ramificaciones finales pectinadas………..… 15 12’. Frondas trepadoras, menores de 0.5 m de longitud; ramificaciones finales no pectinadas………………. 13 13(12). Venas de los segmentos foliares 2-3 divididas; típicamente 6 o más esporangios por soro ……………………………………………………………………………...……………..….…. Dicranopteris 13’. Venas de los segmentos foliares 1 ves divididas; típicamente menos de 6 esporangios por soro……………………………………………………………………………………………………………………………………………….……………14 14(13). Lamina pectinada por encima de la última división, usualmente dividida más de una vez por fronda...………………………………………………………………………… ……….…..…….… Sticherus 14’ Lamina bipinnada por encima de la última ramificación, frecuentemente solo una división por fronda..….…………………………………………………………..…..………… ……………… Diplopterygium 15(12). Frondas decididamente estipitadas, de 30-50 cm de longitud, los estipes usualmente angulosos; esporangios sobre proyecciones marginales o terminales…………………………………………… Shizaea 15’. Frondas más o menos exestipitadas, de 1-7 cm de longitud, los estipes, si se presentan, rollizo (cilíndrico y prolongado) y alados; esporangios a lo largo de las venas………………………………………..…… Hecistopteris 16(11). Raquis o rizoma trepador…………………………………………………………………………….17 16’. Raquis o rizoma de otro tipo………………………………………………………………………..….......23 17(16). Rizoma trepador densamente escamoso………………………….………………………..……...…18 17’. Rizoma subterráneo, raquis trepador o escandente, poco escamoso……………….……….………….... 20 18(17). Pinnas fértiles al menos lobuladas; venas de las pinnas estériles anastomosadas, al menos con una comisura marginal……………………………………………….…………………………………. Polybotrya 18’. Pinnas fértiles simples; venas areoladas o libres …………..………….…….………………………………. 19 19(18). Venas areoladas………………………………………….……………………….....……….… Bolbitis 19´. Venas libres…………………………………………………………..….…………………….…. Lomariopsis 20(17). Esporangios nacen sobre proyecciones marginales (lóbulos)……...…….………... ………. Lygodium 20’. Esporangios dorsales o marginales, nunca sobre proyecciones…………...………………………………. 21 21(20). Indusio ausente; esporangios dorsales a lo largo de las venillas; raquis sin espinas……..…Eriosorus 21’. Indusio presente; esporangios (soros) marginales o casi marginales; raquis con o sin espinas………….22 22(21). Indusio un ala extrosa, soros en una copa marginal; últimas divisiones de la hoja linearesOdontosoria 22’. Indusio un ala marginal modificada e introsa; últimas divisiones foliares oblongas … …………..Hypolepis 23(16). Frondas, al menos las estériles, simples, el margen entero a ondulado pero no profundamente lobadas…………………………………………………………..……………..……………………………………..…..24 23’. Frondas lobadas o divididas a descompuestas………………………….…..…………………………...……45 24(23). Frondas dimórficas………..……………………………..…………………………….……….……25 24’. Frondas monomórficas……………………………………………………...……………..…………….…..27 25(24). Esporangios acrosticoides………………………….………………………….……….Elaphoslossum 25’. Esporangios organizados en soros discretos o cenosoros…………….……………………………………...26 26(25). Soros redondos; rizoma largamente rastrero; plantas epífitas o rupícolas……………………Microgramma 26´. Soros marginales elongados (cenosoros); rizoma rastrero; plantas terrestres………………….Dyctyoxiphium 27(24). Estipe setoso, los pelos obscuros; frondas usualmente menores de 12 cm de longitud……Grammitis 27’. Estipe sin setas o si se presentan, los pelos claros, frondas usualmente mayores de 12 cm de longitud (ver Cochlidium)………………………………………………………..…………… ………………………….…....28 28(27). Soro redondeado o casi redondeado…………………………………….………….……………….29 28’. Soros elongados (cenosoros) o esporangios acrosticoides……………………………………………….…34 29(28). Plantas terrestres o rupícolas; rizoma erecto; soros indusiados……………..……..………...Tectaria 29’. Plantas epífitas o más o menos terrestres; rizoma rastrero; soros indusiados o exindusiados…………30 30(29). Frondas decididamente articuladas, filopodios delgados; soros indusiados; venas libres….Oleandra

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Manual de prácticas de botánica II Ciclo 2011 30’. Frondas indefinidamente articuladas o no articuladadas, o si lo están, entonces filopodios cortos y obscuros; soros exindusiados; venas anastomosadas………………………………………………………..……31 31(30). Frondas escamosas, opacas, usualmente menores de 20(30) cm de longitud………………Pleopeltis 31’. Frondas glabras, brillantes, de varias longitudes…………………………….…….………………………….32 32(31). Frondas menores de 15 cm de longitud; soros en una sola hilera a cada lado de la vena media……………………...…………………………………………………………………...…Microgramma 32’. Frondas mayores de 15 cm de longitud; soros usualmente más de una hilera a cado lado de la vena media………………………………...……………………………………………………...………………...33 33(32). Soros en una hilera sencilla entre las venas laterales principales……………..…………...Niphidium 33’. Soros en hileras dobles entra las venas laterales principales…………………………………Campyloneurum 34(28). Soros indusiados……………………………………………………..…….………..….……………35 34’. Soros exindusiados…………………………………………………………………………………………..38 35(34). Lámina orbicular; estipe negro, brillante………………………………………...…………Schaffneria 35’. Lámina linear; estipe no es negro, opaco o exestipitada…………………………………………………….36 36(35). Lámina cordada en la base, entera hacia el ápice, peciolada…………….…………..……….Phyllitis 36’. Lámina cuneada o redondeada en la base, usualmente serrada hacia el ápice, peciolada o no.. ……….37 37(36). Indusio, al menos los basales, juntos a ambos lados de las venas; láminas pecioladas; terrestres……………………………………………………………………………..…………..…...Diplazium 37’. Indusio a lo largo de un solo lado de las venas; láminas más o menos sésiles usualmente epífitas……………………………………………………………………………….…...………………Asplenium 38(34). Soros, al menos en la madurez, aparecen como una sola línea arriba de la vena media escamas del rizoma, naranjas, concoloras………………….…………………..……………………………..….Cochlidium 38’. Soros no sobre la vena media; escamas del rizoma cafés a negruzca; frecuentemente clatradas……………………………………………………………………………………………………….…..39 39(38). Esporangios no dispuestos en soros, dispersos a lo largo de la venillas y también entre ellas………………………………………………………………….……………….………...……….Anetium 39´. Esporangios organizados en soros discretos………………………………………….………………………40 40(39). Soros confinados al tercio distal de la fronda, marginales……………………………..…Neurodium 40’. Soros a todo lo largo de la lámina, marginales o no…………………………………………….………..…41 41(40). Soros 2 o en dos líneas, paralelas a la línea media; escamas del rizoma clatradas o no…………....42 41’. Soros varios, a lo largo de las venas; escamas del rizoma clatradas…………….…………..………...44 42(41). Escamas del rizoma no clatradas; láminas mayores de 5 mm de ancho; tejido foliar con escamas pequeñas……………………………………...……………………………...………………….….…Pleopeltis 42’. Escamas del rizoma clatradas; lámina de varios anchos; tejido foliar glabro……………………………….43 43(42). Areolas de una sola hilera entre la vena media y el margen; lámina menor de 5 mm de ancho……………………………………………………………………………………...……………..Vittaria 43’. Areolas de dos a más hileras entre la vena media y el margen; lámina mayor de 5 mm de ancho………………………………………………………………………………….………….…...Ananthacorus 44(41). Vena media ausente o extendiéndose solo en parte del camino hacia el ápice de la fronda……………………………………………………………………….……………...……….Antrophyum 44’. Vena media alcanzando el ápice de la fronda…………………………..………..………………Loxogramme 45(23). Lamina palmatilobulada, dividida o radiada…………………………………………………..…….46 45’. Lámina pinnatilobulada o dividida……………….……………………….…………………………………50 46(45). Lámina glabra; soros marginal…………………………………………….…….……………..…….47 46’. Lámina con escamas o pelos pequeños en el envés; soros ausentes, los esporangios acrosticoides o dispersos a lo largo de las venas…………………………………………………………………………………………48 47(46). Lámina pinnado-pinnatifida o bipinnatifida; segmentos poco, anchos, no dimidiados.....Doryopteris 47’. Lámina bipinnada; segmentos numerosos, estrechos, un poco dimidiados………….…………..Adiantosis 48(46). Lámina con escamas pequeñas en el envés; frondas disorficas, las fértiles más o menos orbiculares……………………………………………………….………………….………..……...Peltapteris 48’. Lámina hirsuta a tomentosa en el envés; frondas monomórficas o subdimórficas, las fértiles palmatilobulada…………………………………………………………………..……….…………….………...49 49(48). Venación areolada; esporangios dispersos………………………………………………....Hemionitis 49’. Venación libre; esporangios en su mayoría cerca de los márgenes de las frondas…..……………..Bommeria

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Manual de prácticas de botánica II Ciclo 2011 50(45). Lámina lobulada a pinnatífida, nunca pinnada a descompuesta o pinnada-pinnatifida……….…..51 50’. Lámina pinnada a descompuesta o pinnada-pinnatifida……………………………………..………..…..60 51(50). Fronda decididamente dimorfica, las fértiles grandemente contraídas………………………..…….52 51’. Frondas monomórficas o solo ligeramente dimórficas…………………………………………….…………53 52(51). Rizoma escamoso; frondas coríaceas………………………………….……………………..….Blechnum 52’. Rizoma glabro; frondas membranosas…………………………………..………….…………….Plagiogyria 53(51). Estipe con setas obscuras, en su mayoría menor de 15 cm de longitud; venas libres……..Grammitis 53’. Estipe escamoso o glabro, usualmente de más de 15 cm de longitud; venas libres a anastomosadas…………………………………………………………………….………….…………………...54 54(53). Soros definidamente alargados; venas libres…………………………….…………...………………55 54’. Soros redondeados, o si están alargados, las venas anastomosadas…………………………..…………56 55(54). Indusios, al menos basales, junto a ambos lados de las venas; escamas del rizoma no clatradas; pedúnculos esporangiales de 2 a 3 hileras de células………………….…..…...…………………...Diplazium 55’. Indusio a lo largo de un solo lado de las venas; escamas del rizoma clatradas; pedúnculos esporangiales de una sola hilera de células……………………..................................…………………………………………Asplenium 56(54). Soro con indusio……………..…………………………………..……………………………..……57 56’. Soros exindusiado…………………………………………………………..……………………………….58 57(56). Venación compleja reticulada; soros dispersos…………..…………………………………..Tectaria 57’. Venación libre; soros a lo largo de las venas medias (costas)………… ……………………………Blechnum 58(56). Lámina con escamas pequeñas en el envés; lámina con (1) 2-4 pares de segmentos laterales……………………………………………………………………………………………….Pleopeltis 58’. Lámina con escamas pequeñas en el envés; pelos o glabras usualmente con 5 pares de segmentos laterales……………………………….…………………………………………………………………..…..………..59 59(58). Lámina frecuentemente glauca en el envés; venación simple o reticulada, con 2 a varias hileras de areolas………………………………………………………………...………………………...…..Phlebodium 59’. Lámina nunca glauca en el envés; venación libre reticulada, con 1 (2) hileras de areolas…Polypodium 60(50). Lámina pinnada, las pinnas sin lóbulos, algunas veces serradas, dentadas o espinulosas………….61 60’. Lámina pinnada-pinnatifida o más dividida, las pinas al menos ligeramente lobuladas……………………..94 61(60). Fronda decididamente dimórficas, las pinnas fértiles grandemente contraídas……………….…...62 61’. Frondas monomórficas o solo ligeramente dimórficas, las pinnas fértiles nunca o solo ligeramente contraídas………………………………...................................................................……………………………….....68 62(61). Rizoma erecto o cortamente rastrero; estipes fasciculados………….……..……………………….63 62’. Rizoma largamente rastrero; estipes remotos……………………………...…….………………………….65 63(62). Esporangios sinangiales………………………..……….…..…………………………………..Danaea 63’. Esporangios de otro tipo……………………………………………………….…………………………….64 64(63). Rizoma escamoso; lámina coriácea……….…………………………….….………...………Blechnum 64’. Rizoma sin escamas, lámina delgada……………………………………..…………….…………Plagiogyria 65(62). Pinnas con glándulas basales, articuladas al raquis, márgenes cartilaginosos serrados....Lomariopsis 65. Pinnas sin glándulas basales, no articuladas al raquis, márgenes de otra forma………….…………..….66 66(65). Pinnas fértiles lobuladas o más dividida; venas de las pinnas estériles anastomosadas, al menos con comisura marginal………...………………………………………………..………………………..Polybotrya 66’. Pinnas fértiles enteras; venas libres o anastomosadas……………………….……………………………67 67(66). Venas de las pinnas estériles libres……………………...………….………………..………Blechnum 67’. Venas de las pinnas estériles anastomosadas……………………………..…….……………………….Bolbitis 68(61). Esporangios acrosticoides o en sinangios; frondas ligeramente monomórficas……..……………..69 68’. Esporangios organizados en soros discretos, pero nunca en sinangios; frondas monomórficas. ………70 69(68). Esporangios acrosticoides………………………………………….….………..…...…….Acrostichum 69’. Esporangios en sinangios…………………………………………….………..………………………Danaea 70(68). Soros redondeados o reniformes, dorsales…………………...…………..…………...…………….71 70’. Soros alargados, dorsales o marginales, o casi redondeados y marginales……………………….……..83 71(70). Venas anastomosadas………………………………………………………………..……………...72 71’. Venas libres………………………………..…………………………………………..…………………….76 72(71). Venación compleja de patrón irregular, sin venas laterales prominentes; rizoma de cortamente rastrero a suberecto; plantas terrestre o rupícolas; frondas no articuladas.................. ……………………... 73

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Manual de prácticas de botánica II Ciclo 2011 72’. Venación más o menos simple, con patrón regular, usualmente con venas laterales prominentes; rizoma de corta a largamente rastrero; plantas terrestre o epífitas; frondas articuladas o no………………………………74 73(72). Venillas libres inclusas presente; soros con indusio……………………………………..…....Tectaria 73’. Venillas libres inclusas ausentes; soros con o sin indusio……………………………….…… Phanerophlbia 74(72). Plantas usualmente epífitas; frondas articuladas…………………………………….….. Polypodium 74’. Plantas terrestres; frondas no articuladas………………………..…………………………………………..75 75(74). Indusio basal, semicircular a circular; esporas tetrahedricas……………….…………….Cnemidaria 75’. Indusio reniforme o ausente; esporas bilaterales…………………………………………….……..Thelypteris 76(71). Soro sin indusio…………………………………………………………...…….……………..……..77 76’. Soros con indusio…………………………………………………….…………………………………...…80 77(76). Plantas terrestres; frondas usualmente de más de 1 m de longitud………………………..………..78 77’. Plantas epífitas, ocasionalmente rupícolas; frondas en su mayoría menores de 0.6 m de longitud……..79 78(77). Pinnas distales anchamente adnadas al raquis……………………….…………..……..Stigmatopteris 78’. Pinnas distalessesiles o ligeramente adnadas basiscopicamente al raquis………………………….…Metaxya 79(77). Estipe (y con frecuencia la lámina), con cerdas obscuras; no articulado; esporas tetrahedricas, verdes…………………………………………………………………………………….…………..Grammitis 79’. Estipe glabro o escamoso, a veces piloso, pero nunca con cerdas obscuras; articulado; esporas bilaterales, usualmente blancuzcas o amarillentas……………………………………………………..Polypodium 80(76). Indusio reniforme; pinnas frecuentemente con hidatodos adaxiales; pinnas con frecuencia articuladas………………………………………………………………………...………….….….Nephrolepis 80’. Indusio peltado; pinnas sin hidatodos, articulados o no………………………………………..……………..81 81(80). Lámina linear, menor de 5 cm de ancho; pinnas dentadas…………….……..….……….Polystichum 81’. Lámina ovada, mayor de 5 cm de ancho; pinnas enteras a espinulosas………….…………………………..82 82(81). Pinnas con frecuencia en más de (12) 18 pares, articuladas al raquis, lóbulo basiscopico que se traslapa al raquis...………………………………………………………….…….. ……………….…….Cyclopeltis 82’. Pinnas en número menor de 12 (17) pares, no articuladas al raquis, si están articuladas entonces el lóbulo basiscopico no se traslapa al raquis…………………………………………………………..….Phanerophlebia 83(70). Soros marginales………………………………………………………………...……………..…….84 83’. Soros dorsales………………………………………………………………………………………………..87 84(83). Márgenes de la fronda no reflejos; lámina densamente escamosa en el envés, obscureciendo frecuentemente a los esporangios……………………………………………………..…….……...Notholaena 84’. Margenes de la fronda reflejos o revolutos sobre los soros……………………………………….…………85 85(84). Esporangios nacen sobre indusios delgados reflejos; estipe y raquis atropurpureos a negruzcos, brillantes………………………………………………………….……………………….…………..Adiantum 85’. Esporangios nacen marginalmente sobre tejido foliar grueso y no modificado, cubierto por un margen reflejo modificado; estipe y raquis de colores variados……………………..…………………………………………86 86(85). Estipe y raquis obscuros, usualmente con pelos flexuosos…………………….……………...Pellaea 86’. Estipe y raquis de color claro, glabros…………………………………………...………………….…..Pteris 87(83). Soros discretos, con indusio…………………………………………………………………….…...88 87´. Soros dispersos o confluyentes, sin indusio…………………………………………………………..…….91 88(87). Soros paralelos a la vena media…………………………………….……………….………..Blechnum 88’. Soros diferentes al anterior…………………………………………….…………………………………..….89 89(88). Indusios, al menos los basales, junto a ambos lados de las venas…….………….…………Diplazium 89’. Indusio a lo largo de un solo lado de la vena……………………………………………………………..…90 90(89). Venas libres; frondas generalmente menores de 0.6 m de longitud………………………..Asplenium 91’. Venas anastomosadas cerca del margen de las pinnas; frondas de un metro o más de longitud……………………………………………………………………………………………………………………………………Hemidicetyum 91(87). Frondas indeterminadas; pinas orbiculares de 5 mm o menos de longitud; plantas de regiones elevadas……………………………………………………………….…………………..….....……Jamesonia 91’. Frondas determinadas; pnnas oblongas a lanceoladas, mayores de 5mm de longitud; plantas de regiones de baja o mediana elevación, ocasionalmente en regiones elevadas.........…….……… ……………………………..92 92(91). Raquis acanalado adaxialmente, con cerdas……………………….……………..…………Theypteris 92’. Raquis adaxialmente rollizo (cilíndrico y prolongado), o si está acanalado entonces sin cerdas…….93

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Manual de prácticas de botánica II Ciclo 2011 93(92). Lámina escamosa en el envés la superficie obscurecida, esporangios al menos parcialmente ocultos…….………………………………………………………………………...…………..…..Notholaena 93’. Lámina glabra o con pubescencia dispersa en el envés, la superficie y los esporangios claramente visibles……...……………………………………………………………………………………….……….Gymnopteris 94(60). Frondas dimórficas o hemidimórficas.……………………….……………… ………………………… 95 94’. Frondas monomórficas ……………………………………………..…………………….……………..… 99 95(94). Frondas de menos de 15 cm de longitud; rizoma filiforme………………………..………Peltapteris 95’. Frondas mayores de 30 cm de longitud; rizoma grueso ……………………………………………… 96 96(95). Venas de las pinnas estériles anastomosadas…………………….……………...…………....Bolbytis 96’. Venas de las pinnas estériles libres ……………………………………………………….……………….. 97 97(96). Rizoma con el ápice piloso; los esporangios abren transversalmente, sin anillo bien diferenciado; esporas verdes……………………………………………………….……………………….……….Osmunda 97’. Rizoma escamosa; esporangios con anillo vertical bien desarrollado; esporas amarillentas a cafés……………………………………………………………………………………………………….………98 98(97). Pinnas dimórficas en la misma fronda, las fértiles muy contraídas; rizoma cortamente rastrero a subrecto………………………………………………………………..……………………..…………..Llavea 98’. Pinnas monomórficas en la misma fronda, esta es completamente fértiles o exclusivamente estéril; rizoma largamente rastrero……………...………………….……………………………..…...……………Polybotrya 99(94). Soros dorsales……………………………..…………………………….……………………..……100 99’. Soros marginales o submarginales…………………………..…………….......…..……………………….131 100(99). Soros dispuestos o confluyentes, alargados, sin indusio……….….……….……………….……101 100’. Soros discretos, frecuentemente con indusio………………….…………………….……………………104 101(100). Venas anastomosadas…………………………..…………………..………………….…Thelypteris 101’. Venas libre……………………………………...………………………………………….……..……….102 102(101). Lámina membranosa, menos de 15 (30) cm de longitud, sin cera en el envés……......Anogramma 102’. Lámina firme, mayor de (15) 30 cm de longitud, con o sin cera en el envés………..…………………...103 103(102). Rizoma escamoso; lámina frecuentemente con cera en el envés……..….………..…Pityrogramma 103’. Rizoma piloso; lámina si cera en el envés…………...……………………..………………………Eriosorus 104(100). Esporangios sinangiales, estípulas de la base del estipe grandes y carnosas…………..…Marattia 104’. Esporangios diferentes a los anteriores; estipes exestipulados ………………..………………………….105 105(104). Soros alargados…………………………………………………………….………..…………...106 105’. Soros redondeados o reniformes………………………………………….………..…………………….102 106(105). Soros en cadenas paralelas a las costuras o costas…………………….………………Woodwardia 106’. Soros diferentes al anterior………………………………………..………….……….……………………107 107(106). Indusios, al menos los basales, ambos lados de las venas………………………...……………108 107’. Indusios a largo de un solo lado de las venas……………………………………….……………………109 108(107). Lámina bipinnada, las pínnulas más o menos enteras, dimidiadas, sin una vena media bien diferenciada…………….…………………………………………...…………………………..Didymochlaena 108’. Lámina variadamente dividida, si es bipinnada entonces las pinnas no dimidiadas, usualmente con una vena media bien diferenciada ………………………..……….……………………………………..………Diplazium 109(107). Escamas del rizoma y de la base del estipe clatradas……………….….………………………110 109’. Escamas del rizoma y de la base del estipe de otro tipo………….……………………….……………….111 110(109). Indusio de 2 o más veces más largo que ancho, libre en los extremos………………….Asplenium 110’. Indusio escasamente más largo que ancho, adnado en los extremos, parecido a un bolsa.....Loxoscaphe 111(109). Pínnulas articuladas, subdimidiadas...……………………………… ………...…….Didymochlaena 111’. Pínnulas nunca articuladas o dimidiadas………………...……………….…….………………….Athayrium 112(105). Plantas arborescentes, troncos de 1 m o más de longitud; frondas de 1-5 m de longuitud..…..113 112’. Plantas de otro tipo, frondas menores de 1.5 m f de longitud (exepto en Lophosoria quadripinnata y Cnemidaria decurrens)…..………………………………………………… ……………………………………….…..107 113(112). Escamas del estipe y otros ejes con cerdas apicales oscuras, las cuales a veces se presentan también en los márgenes……………………..…………………….…….…………………………………114 113’. Escamas del estipe y otro ejes sin cerdas oscuras……………………..……….………………………116 114(113). Estipes, ráquis y costas negruzcos; indusio ausente; aflebias* presentes en las bases de las fronda……………………………………………….……………………………………...………….Alsophila

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Manual de prácticas de botánica II Ciclo 2011 114’. Estipe, raquis y costas cafés a pajizos, indusio presente o ausente; aflebias ausentes…………...…. 115 115(114). Estipe con espinas cónicas robustas, aguadas y negruzcas; indusio presente; escamas de la base del estipe marginadas, es decir, con las células del margen de forma y color distinto a las del centro; ejes castaños…………………………………………………………………….……………………..…..Nephelea 115’. Estipe sin espina robustas, aunque a veces muricados con las bases persistentes de las escamas; indusio presente o ausente; escama de la base del estipe con las células marginales y centrales similares en tamaño, forma y orientación; ejes tostados a pajizos…………………………………………………………………………Sphaeropteris 116(113). Indusio presente, con forma de platillo, copa o globoso, con frecuencia hendidos en la madurez………...……………………………………………………………..…………………...……Cyathea 116’. Indusio ausente…………………………………………………………..……………….……….Trichipteris 117(112). Lámina con cera blanca en el envés; rizoma y lámina con pelos, sin escamas; frondas mayores de 1-3 m de longitud………………………………………………………………………………....…Lophosoria 117’. Lámina si cera en el envés; rizoma, y algunas veces la lámina, escamosas; lámina de varios tamaños…………………………………………………………………………………………………………………………………………………..118 118(117). Venas conniventes o anastomasadas……………..……………………………………………..119 118’. Venas libres………………………………………………………………………………………….…….121 119(118). Indusio sujetos basalmente, semicirculares a circulares; esporas tetrahédricas; frondas de 1-2.5 m de longitud……………………………………………………………………………………..……Cnemidaria 119’. Indusio uniforme, peltado o ausente; esporas bilaterales; lámina de varias longitudes, con frecuencia menores de 1 m de longitud……………………………………………………..………………………………..…..120 120(119). Surcos costales adaxiales usualmente con cerdas aciculares; base del estipe con 2 haces vasculares………………………………………………………………….………...………..……..Thelypteris 120’. Surcos costales adaxiales sin cerdas aciculares, pero con pelos multicelulares muy cortos y rojizos; base del estipe con numerosos haces vasculares……………………………………………………….....…..Tectaria 121(118). Indusio en forma de copa………….……………………………………….………………Woodsia 121’. Indusio de otra forma, a veces ausente………………………………….………………………………….122 122(121). Indusio extrorso, basifijo………………….……………………………...……...………Cystopteris 122’. Indusio de otra forma, a veces ausente…………………………….……………………………………..123 123(122). Lámina escamosa en el envés, escamas ovado-peltadas……………………..…………Polypodium 123’. Lámina sin escamas en el envés, o si es escamosa con estas lanceoladas a fribrilosas, no peltadas………………………………………………………………………………………….……………….124 124(123). Raquis sin surco adaxial, o si este se presenta, entonces no se abre para admitir los surcos costales; vasculaturas del estipe variada………………………………………………….…………………….……125 124’. Raquis con un surco adaxial el cual se abre para admitir los surcos costales; estipe con numerosos haces vasculares……………………………………………………………………………………………………….127 125(124). Pelos del raquis unicelulares, aciculares, tiesos y blanquecinos; si los pelos son multicelulares, entonces mayores de 0.5 mm de longitud; escamas con frecuencias glandulares o pilosas; lamina pinnadapinnatifida, decompuesta en Thelyperis torresiana; estipe con 2 haces vasculares en la base….…Thelypteris 125’. Pelos del raquis multicelulares, usualmente rojizos; escamas sin pelos o glándulas superficiales; lamina de muchas especies bipinnada o más dividida, excepto unas pocas especies de Ctenitis; estipe con numerosos…………………………………………………………………………………………………...126 126(125). Ala decurrente de la lámina no engrosada .……………………………… ……….…….…Ctenitis 126’. Ala decurrente de la lámina engrosada…………..……………………………………………….Lastreopsis 127(124). Indusio ausente……………………………………………………..…………………..………..128 127’. Indusio presente……………………………………………………………..………………………..….129 128(127). Segmentos espinulosos en la punta y con frecuencia en el margen; parte inferior de los ejes fibriloso-escamosos…………………………………………………….…………………..………Polystichum 128’. Segmentos no espinulosos en la punta y margen; parte inferior de los ejes sin cobertura fibrilosoescamosa……………………………………………………………………………….….……………Estigmatopteris 129(127). Indusio verdaderamente peltado………………………..…………………….…………Polystichum 129’. Indusio reniforme, a veces aparentemente peltado debido al traslape de los lóbulos del indusio…..130 130(129). Lámina deltoide, (4)5-pinnada; segmentos libres en su mayoría, cuneados en la base espinulosos, en la punta………………………………………………………………………...……….…….…Arachniodes

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Manual de prácticas de botánica II Ciclo 2011 130’. Lámina deltoide a lanceolada, 1-4-pinnada; segmentos en su mayoría adnados, carentes de puntas cerdosos………………………………………………………………………….………………………..…Dryopteris 131(99). Margen de la lámina escasamente reflejos o no, sin cubrir los soros………………….…………132 131’. Margen de la lámina fuertemente reflejo, cubriendo los soros………………….……………..……..…..140 132(131). Indusios extrorsos ausentes……………………………………………….…………………...…133 132’. Indusios extrorsos presentes, formando una copa o hendidura marginal……………………..……….134 133(132). Soros redondeados; frondas usualmente mayores de (50)100 cm de longitud…………..Hypolepis 133’. Soro extendidos o confluentes, alargados; frondas en su mayoría menores de 50 cm de longitud………………………………………………………………………....……………….………Notholaena 134(132). Indusio alargado paralelo al margen; rizoma escamoso…………….………………….......Lindsaea 134’. Indusio en forma de copa, concha o tubular; rizoma piloso o escamoso………………….…………….135 135(134). Rizoma escamoso; soros inframarginales, con el tejido marginal con el tejido marginal visible más allá del indusio extrorso……………………………………………………………..……………….Saccoloma 135’. Rizoma piloso; soros marginales…………………………………………………………………………...136 136(135). Lámina menor de 50 cm de longitud; últimos segmentos lineare a oblanceolados, cuneados en la base; rizoma de 1.2 mm de diámetro…………………………………………………………...…Sphenomeris 136’. Lámina mayor de 50 cm de longitud, con frecuencia de más de 1 m; últimos segmentos oblongos; rizoma mayor de 5mm de diámetro……………………………………………………………..………….137 137(136). Rizoma largamente rastrero, no forma cáudice erecto o suberecto……..………....….Dennstaedtia 137’. Rizoma cortamente rastrero a suberecto o erecto, formando un cáudice masivo………………………..138 138(137). Lámina 4-pinnada o más dividida; costa y costuras sulcadas adaxilamente, los canales flanqueados por costillas prominentes decurrentes en los ejes de siguiente orden………………………………..…Culcita 138’Láminas tripinnadas o subtripinnadas; costas y costulas realizadas ligeramente surcadas, las costillas, si las hay, no decurrentes en los ejes del siguiente orden……………………………………………………………..…139 139(138). Valva externe del indusio similar a la interna, ambas cartilaginosas; tricomas sobre costa y cóstulas laxos y filiformes, blanquecinos a estramíneos; paráfisis escasos, pequeños, ocultos por esporangios………...…………………………………………………………..……………..….……Cibotium 139’. Valva externa del indusio consistente de una crenación revoluta del margen foliar; tricomas de la superficie del lado adaxial de las costas y costula rigidos y robustos, café obscuro: paráfisis abundantes, tan largos o mayores que los esporangios………………..…………….……………………………………………..Dicksonia 140(131). Estipe y raquis densamente escamoso, con escamas anchas……………….…………….Plecosorus 140’. Estipe y raquis sin escamas o escasamente escamoso , con escamas angostas……….….……………141 141(140). Rizoma piloso, mesclado con escamas en Histiopteris, largamente rastrero……….……….….142 141’. Rizoma exclusivamente escamoso, corto rastrero a erecto, con excepción de algunas especies, de Adiantum y Cheilanthes ……………………………………………………………….………………….………145 142(141). Soros discretos; rizoma largamente rastrero………………………...………………………..Hypolepis 142’. Soros continuos, rizoma variado…………………………………….……………………………..……143 143(142). Venas anatomosadas; esporas bilaterales, monoletes………….………………………Histiopteris 143’. Venas libres; esporas tetrahédrico-globosa, triletes………………………..…………………..,….….144 144(143). Lámina pinnada; tejido foliar membranáceo; rizoma corto rastrero, suculentos. ……….Lonchitis 144’. Lámina tripartida; tejido foliar cartáceo a subcoriáceo; rizoma largamente rastrero, leñoso… Pteridium 145(141). Esporangios nacen sobre el margen reflejo de la lámina; segmentos foliares con frecuencia dimidiados o cuneados-flabelados……………………………………………………………....…….Adiantum 145’. Esporangios cubiertos por el margen reflejo de la lámina pero naciendo sobre tejido no modificado; segmentos foliares no dimidiados, rara vez cuneados………………………………………………..……….………146 146(145). Surco adaxial de la estipe y raquis densamente hirsuto-clavado………………………......Mildella 146’. Surco adaxial de estipe y raquis, si se presenta, diferente al anterior……………………………………147 147(146). Frondas de muchas especies mayores de 80 cm de longitud, con un borde ecuatorial…..….Pteris 147’. Fronda menores de 60 cm de longitud; esporas sin borde ecuatorial………....……………..…………148 148(147). Estipe gris y castaño claro, de ser más oscuro, entonces glauco, glabro y con las pinnas ternadas a solo pinnadas, con pocos segmentos, menos de 5 pares; ejes sin escamas…..………………………….Pellaea 148’. Estipe castaño oscuros a atropurpureo, de ser castaño claro, entonces con glándulas víscidas; pinnas nunca ternadas, rara ves simplemente pinnadas; ejes con frecuencia escamosos ….…………………………….… 149

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Manual de prácticas de botánica II Ciclo 2011 149(148). Lámina deltoide; últimos segmentos anchamente lanceolados a oblongo-lanceolados; venas conspicuas; indusio continuo, ancho, convexo; rizoma suberecto…………………………..…. Cheiloplecton 149’. Lámina lanceolada a deltoide; últimos segmentos con forma de cuenta a lineares; venas inconspicuas o interrumpidas; anchas a angostas; rizoma rastrero a suberecto……….….……………………………………Cheilanthes

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Clave a las familias del orden pinales (Benson, 1957) 1.- Semillas en conos, adheridos a las escamas del cono (el cono en el mismo a veces carnoso o abayado y con solo 1-3 semillas, y en ese caso la planta se distingue por hojas pequeñas, escamosas o poco alargadas, apretadas firmemente en contra de las ramillas)…………………………… ………………………………..2 2.- Óvulos ( semillas) usualmente dos o más por escama del cono, rara vez en algunas escamas o solo 1-3 por cono (abayado), la semilla no incrustada en la escama; hojas lineares, en forma de agujas o escamosas………………………………………………………………………………………….…………...3 3.- Hojas y partes del cono una en cada nudo, esto es, arregladas alternadamente o en espirales en un género las hojas adultas en fascículos de 2, 3 ó 5 rara vez el fascículo unido en la base por una vaina membranosa; los conos femeninos con escamas leñosas, las escamas numerosas………………………………………….4 4.- Las hojas unidas (más tarde separadas) en las bases y después de varios años individualmente deciduas o deciduas en grupo, unidas por vainas, de un número pequeño y constante (usualmente 2, 3 ó 5 rara vez 1 ó 4); escamas de yemas presentes, membranosas; sacos polínicos 2 en cada microesporofila; dos semillas en cada escama del cono ……………………………………………………………………...…….. PINACEAE 4’.- Hojas no unidas en la base, no deciduas, ya sea individualmente o en grupos unidos por vainas, pero persistentes sobre las ramillas elongadas las cuales son finalmente deciduas; escamas de yema ninguna; sacos polínicos varios en cada microesporófila; dos semillas en cada escama del cono …………………………………………………………………………..…………..………. TAXODIACEAE 3’.- Hojas y escamas del cono más de una en un nudo, arregladas en ciclos de dos o tres; ninguna escama de yema; escamas del cono femenino duras y leñosas o a veces papiráceas, pulposas o suculentas, los conos femeninos compactos y las escamas no más de 14 ……………………………………….. CUPRESSACEAE 2’.- Óvulos (y semillas) 1 por escama del cono, la semilla a menudo incrustada en la escama, la escama fusionada con la (más grande) bráctea; hojas usualmente lanceolada pero a veces estrechas y entonces más gruesas que anchas ……………………………………………………………………… ARAUCARIACEAE 1’.- Semilla no incluidas en un cono ( excepto a veces en podocarpaceae) solitarias, con brácteas subyacentes escamosas o con un conspícuo arilo de tejido carnoso, éste a menudo es una copa coloreada que cubre toda o casi toda la semilla; hojas elongadas, no escamosas. 5.- Dos sacos polínicos por microesporófila, semillas solitarias…………………..… PODOCARPACEAE 5’.- Tres a siete sacos polínicos por microesporófila; óvulos (y a menudo semillas) en pares ………………………….………………………………………………………..… CEPHALOTAXACEAE

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Clave a los géneros de pinophytas (Martínez, 1963) 1.- Hojas agrupadas (solitarias en el Pinus monophylla), largas y agudas con vaina en la base ………...………………...…………………………………………………..……………………………. Pinus 1’.- Hojas solitarias, lineares, casi cuadrangulares o escamiformes ………………..………….………….... 2 2.- Hojas lineares, aplanadas o casi aplanadas …………………………………………………...……….... 3 2’.- Hojas cuadrangulares, punzantes, sostenidas por bases salientes ………..…………………..……. Picea 2’’.- Hojas escuamiformes ………………………………………..….…………………………….……….. 5 3.- Cono globuloso, con escamas gruesas; hojas caedizas ………………..………...………………. Taxodium 3’.- Cono alargado, con escamas delgadas; hojas persistentes …………………...………….……………... 4 4.- Cono colgante, escamas persistentes ………………......……..…………………………..…...Pseudotsuga 4’.- Cono erecto, escamas caedizas ……………………………………………………...…..………..... Abies 5.- Fruto indehiscente, abayado…………………...……………………………………………..… Juniperus 5’.- Fruto dehiscente, seco ……………………………………………………………………….....……….. 6 6.- Fruto alargado; escamas oblongas no peltadas …………………………………...………….. Libocedrus 6’.- Fruto globuloso; escamas poligonales, peltadas …………………..............…………..……... Cupressus

Clave a los géneros mexicanos de pinaceae (Martínez, 1953) 1.- Hojas aciculares, agrupadas (solitarias en P. Monophylla), largas o cortas, con vaina decidua o persistente en la base del fascículo ………………………………………………………………………….……….. Pinus 1’.- Hojas solitarias, lineares, cuadrangulares o aplanadas, sin vaina …………………....…………..….… 2 2.- Hojas cuadrangulares, punzantes, fácilmente caedizas, cuando la semilla muere, dispuestas sobre bases salientes, éstas persistentes sobre las ramillas; cono colgante ………………………………………..… Picea 2’.- Hojas lineares, aplanadas, no fácilmente caedizas y no dispuestas sobre bases salientes, cono colgante o erecto …………………………………………….………………………………………………………….... 3 3.- Cono colgante con escamas (esporófilas) persistentes; yemas no cubiertas por resina …….... Pseudotsuga 3’.- Cono erecto con escamas (esporófilas) caedizas, yemas cubiertas con resina…………………….. Abies

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Clave de las especies mexicanas de Abies (Martínez, 1953) Primera clave 1.- Hojas de ápice emarginado a lo menos en algunas hojas (las demás, de ápice redondeado o truncado) …………………...…………………………………………………………………………………..………... 2 1’.- Hojas de ápice no emarginado (obtuso o agudo, a veces redondeado) ………………………………... 7 2.- Bráctea exerta ………………………………………………..……………………...……………..……... 3 2’.-Bráctea inclusa ……………………………………………..……………………………………..….…... 6 3.- Ramillas glabras. Hojas gruesas y aglomeradas. Canales resiníferos de 8 a 12………………. A. oaxacana 3’.- Ramillas hirsutas ………………………………………..………………………………………..……… 4 4.- Canales resiníferos de 4 a 8 ………………………………....................……………………….. A. hickeli 4’.- Canales resiníferos 2 ……………………………………………………………………...…………….. 5 5.- Cono de 10 cm. Bráctea poco saliente o casi al nivel del borde. Escasos estomas en la cara superior …………………………..……………………………….………….………. A. guatemalensis var. tacanensis 5’.Cono de 12 a 13.5 cm. Bráctea saliente. Numerosos estomas en la cara superior ………………...…………………………………………………...…..…………. A. religiosa var. emarginata 6.- Bráctea llegando a la mitad de la altura de la escama o menos, rara vez hasta cerca del borde ……………………...………………………………………………………....……………... A. guatemalensis 6’.- Bráctea llegando a los dos tercios de altura de la escama o al borde. Escamas reflejadas ………………...………………….……………………………...………….… A. guatemalensis var. jaliscana 7.- Hojas dísticas o subdísticas …………………………………………..…………………………………..8 7’.- Hojas orientadas en todos sentidos …………………………………………..…...............……….…… 11 8.- Bráctea exerta ………………………………………………………...............…………......... A. religiosa 8’.- Bráctea inclusa ………………………………………..…………………………….……..…...……….. 9 9.- Cono de 9 cm. o menos ………………………..………..………………………..………. A. duranguensis 9’.- Cono de 10 a 12 cm ………………………………………………….…………………...…………….. 10 10.- Hojas de 15 a 25 cm. por 1.7 a 2 mm. Escasos, estomas en la cara superior …………...…………….…………………………....…………………….... A. duranguensis var. coahuilensis 10’.- Hojas de 25 a 58 mm. Por 2 a 3 de ancho. Estomas numerosos en ambas caras ………….. A. concolor 11.- Bráctea inclusa …………………………..……………………………………..……………. A. mexicana 11’.- Bráctea exerta ………………………………………………………………...………..…..………….. 12 12.-Cono de 6 a 8.5 cm ……………………………………………….………….…………………... A. vejari 12’.- Cono de 10 a 15 cm .……………………… ………..……..………. .………. A. vejari var. macrocarpa Segunda clave. 1.- Bráctea exerta ………………………………..………………………………..………………....…..…… 2 1’.- Bráctea inclusa ………………………………………………...…………….……….………………...… 8 2.- Hojas dísticas o subdísticas …………………………………….……….………………….…………..…. 3 2’.- Hojas orientadas en todas direcciones ………………….………………………..……………....……... 7 3. Ramillas glabras. Hojas gruesas y aglomeradas …………………………...…………..…….. A. oaxacana 3’.- Ramillas más o manos hirsutas …………………………………………………….….……..…………... 4 4.- Ápice de las hojas no emarginado ……………………………...……….……………………. A. religiosa 4.- Ápice de las hojas emarginado ………………...…………………………….……...…………………… 5 5.- Cono de 12 a 13.5 cm .……………………..…. ………..………………..… A. religiosa var. emarginata 5’.- Cono de 10 cm. o menos ……………………...………………..….………………………………….… 6 6.- Bráctea muy saliente. Canales resiníferos de 6 a 8 ………………...……….….………..……... A. hickeli 6’.- Bráctea igualando la altura de la escama o algo saliente. Canales resiníferos 2 ………………..……….. ………...……….……….……….…….………….………………………..…A. guatemalensis var. tacanensis 7.- Cono de 6 a 8.5 cm ……………...………..………………..………………………..…….……...A. vejari 7’.- Cono de 10 a 15 cm .…………………..……………….…… ……….………. A. vejari var. macrocarpa 8.- Hojas dísticas o subdísticas ……………………………………………………...…….………………… 9 8’.- Hojas orientadas en todas direcciones ………………………….……..……….………….… A. mexicana 9.- Hojas de 2 mm. o más de ancho, frecuentemente encorvadas ………………..…...…….…… A. concolor 9’.-Hojas de menos de 2 mm. de ancho ………………………………..………………….…….…….…… 10

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Manual de prácticas de botánica II Ciclo 2011 10.- Ápice emarginado ………………………………..……………….…….…….………………………... 11 10’.- Ápice no emarginado ……………………………………….……………….…….…………...……… 12 11.- Bráctea llagando hasta la mitad a un tercio de la escama. Escamas no reflejadas …….. A. guatemalensis 11’.- Bráctea llegando hasta el borde de la escama. Escamas reflejadas….… A. guatemalensis var. jaliscana 12.-Bráctea llegando hasta un tercio o a la mitad de la altura de la escama, acuminada en el ápice ……………………………………………….….…….…….…….……….………...……….. A. duranguensis 12’.- Bráctea llegando más allá de la altura de la escama o hasta el borde, truncada en el ápice ………………………………………………….…….…………...….……. A. duranguensis var. coahuilensis

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Clave a las especies mexicanas de Juniperus (Martínez 1953) Se toman en consideración sucesivamente el número de semillas, el tamaño de los frutos y los caracteres de las hojas y de la corteza (Martínez, 1953). 1.- Fruto de una o dos semillas (rara vez más) ………………...…...………………..………………………. 2 1’.- Fruto de tres semillas o más ……………………………………………………………...…………….. 12 2.- Fruto de 10 mm o más …………………………………………………………...………………..……… 3 2’.- Fruto de 8 a 9 mm. o menos ………………………………………..………...…………………………. 6 Oligospermos macrocárpicos 3.- Fruto de 1 o 2 semillas. Ramillas muy largas (20 a 50 m) ……………………………..…..... J. californica 3’.- Fruto de 1 o 2 semillas, en pocos casos 3 o más; ramillas menores de 20 mm ……………………….. 4 4.- Corteza del tronco rasgada ………………….………………..…………….………...……… J. patoniana 4.- Corteza cuadriculada por lo menos en la parte inferior …………………...…………………………..… 5 5.- Corteza cuadriculada en todo el tronco. Ramillas amarillentas………… J. depeana var. robusta 5’.- Corteza cuadriculada en la parte inferior del tronco y rasgada en la superior; ramillas verdes ……………………..…………………………………………………..…………….... J. patoniana f. obscura Oligospermos microcárpicos 6.- Fruto de forma irregular, (bilobado, obcordado, giboso, etc.) ………………………….……………...... 7 6’.- Fruto de forma regular ……………………………………………………..……………………..……... 8 7.- Semillas compactas y tetrágonas. Hojas muy gruesas frecuentemente en forma de capuchón. Madera amarillenta …………………………………………………………………………....………. J. duranguensis 7’.- Ramillas ralas y no tetrágonas. Hojas no en forma de capuchón. Madera violácea ….………. J. blancoi 8.- Fruto rojo o intensamente anaranjado. Pericarpio blando, arrugado y fácilmente desprendible, dulce …………………………………….………………………….………………J. erythrocarpa var. coahuilensis 8’.- Fruto moreno azuloso …………………………………………...…………………..………………….. 9 9.- Corteza cuadriculada en todo el tronco o en parte ………………………..………...…………...……… 10 9’.- Corteza rasgada …………………………………………………………………..……….……………. 11 10.- Corteza cuadriculada en todo el tronco. Fruto globuloso de 8 mm. ……………………..... J. gamboana 10’.- Corteza cuadriculada en parte. Fruto globuloso u oval, de 4 a 5 mm………………………….. ………...…………………………………………………………………………...J. monosperma var. gracilis 11.- Ramillas cortas y gruesas, de 6 a 12 mm. fruto de 5 a 6 mm …………………………… J. monosperma 11’.- Ramillas largas y delgadas, de 10 a 20 mm. fruto de 8 mm …………………...… …………J. comitana Polispermos macrocárpicos 12.- Fruto de 10 mm o más ………………………………….…………………………...…..……………... 13 12’.- Fruto de 8 a 9 mm o menos ……………………………………..………………….……………...…. 17 13.-Ramillas colgantes y más o menos dísticas ………………………………..…………………...….…… 14 13’.- Ramillas no colgantes ni dísticas ………………………………………..………..……………..……. 15 14.- Hojas lanceoladas y punzantes ……………………..………………………...……………..… J. flaccida 14.- Hojas no lanceoladas ni punzantes …………..………….……………….…….. J. flaccida var. poblana 15.- Hojas con glándula que revienta espontáneamente, quedando la resina solidificada en el dorso ……………………………………………...……………………………….…… J. depeana var. pachyphlaea 15’.- Hojas sin glándulas o si la tienen nunca revienta espontáneamente …………………….……...……. 16 16.- Hojas con glándula linear. Ramilla y hojas uniformes. Fruto casi blanco por una capa densa de cera ……………………………….…………………………………..……....…….… J. depeana var. zacatecensis 16’.- Hojas sin glándula, salvo algunas adultas. Ramilla y hojas desiguales. Fruto moreno rojizo.. J. depeana Polispermos microcárpicos 17.- Ramillas aglomeradas, y a veces dísticas. Fruto globuloso y de forma irregular. Corteza muy delgada ………………………………………………………...…………………………………………….……….. 18 17’.- Ramillas ralas, no dísticas. Fruto irregular. Corteza gruesa y fofa ……………………..…. J. jaliscana 18.- Ramillas marcadamente dísticas. Hojas gruesas, pero no en forma de capuchón ……….… J. standleyi 18’.- Ramillas no dísticas o, a veces, subdísticas. Hojas gruesas, pero no en forma de capuchón …………………………...………………………………………………………...……...….…….J. montícola

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Claves a las especies mexicanas de Cupressus Esta clave es una adaptación de la traducción hecha de la clave prestada por Wolf (1948). A.- Superficie dorsal de las hojas maduras usualmente llevando una glándula o boca, lo cual puede sertivar, pero usualmente exudan una resina clara la cual se vuelve gris o blanquecina con la sequedad. Follaje gris verde grisáceo o glauco u opaco, verde polvoriento, pero nunca verde brillante ( especies de hábitat lejanos al mar) ……...…...…..…...…...…..…...…...…...…...………………………………………………………...… B B.- Árboles con ramillas usualmente de más de 1.3 mm de diámetro, la copa más compacta; conos estaminados por lo común de más de 3 mm de longitud, compuesto de 8-20 escamas (usualmente 10 o más); conos ovulados rara vez de menos de 20 mm de diámetro ( comúnmente de 25-30 mm); a veces con la superficie rugosa; semillas generalmente de mas de 4 mm de longitud (comúnmente de 5 mm ), glaucas o no glaucas …...…...…..…...….…………………………………...…..…...…...…..…..……………..………… C C.- Troncos de los árboles maduros con la corteza, rugosa, fisurada, fibrosa, gris o café obscura, no exfoliante, por lo menos en la porción baja del tronco principal…………………………...………………..D D.- Los conos ovulados abren después de la madurez (en el mismo otoño o invierno) esparciendo sus semillas las cuales son estrictamente no glaucas (Sierra de San Pedro Martir, Baja California) …...…...…..…...…...…..…...…...….……………………………………………..……..………… C. montana DD.- Los conos ovulados permanecen cerrados por varias estaciones después de la madurez; la semillas ocasionalmente glaucas…………………………………...…...…..…...…...….……………………………. E E.- Corteza de las ramas, la porción superior del eje principal y las de los renuevos hasta 1.5 cm de diámetro, exfoliándose en placas delgadas, no fibrosas, dejando una superficie tersa, lisa y de color cereza o caoba; a veces glándulas visibles sobre la mitad de las hojas, sin exudar abundantemente resina. (Sur de Arizona, Nuevo México, Texas y Norte de México) ………..………………………………………..…… C. arizonica AA.- Superficie dorsal de las hojas maduras usualmente sin una glándula aparente o una boca, a veces presente como una boca cerrada inconspicua o rara vez unas pocas son activas y exudan resina. El follaje puede ser verde brillante verde obscuro, o rara vez verde polvoriento o un poco azul-glauco, nunca un gris verdadero ..………………………………..… …………………………………….………………………… F F.- Árboles con ramas colgantes, elegantes las cuales aunque están compuestas de ramillas más bien gruesas no son de follaje áspero; en aspecto los árboles son ligeramente azul verdoso, los conos ovulados de la primera estación son densamente glaucos y llevan cuernos prominentes o umbos, pero en la madurez no son todos glaucos, rara vez más de 15 mm de diámetro y aparentemente abren pronto después de la madurez. ( parte central de México, Guatemala, y Costa Rica) ………………………………………………………… G G.- Ramillas no dísticas, de 10 a 15 mm de longitud, a veces más. Gruesas, de 1.5-2.0 mm de ancho, ásperas. Frutos de 12-15 mm de longitud, a veces hasta 20 mm. De 8 escamas, a veces 6. (ampliamente distribuido de Chihuahua a Guatemala) ……………………..……………………………………………...…….. C. lindleyi GG.- Ramillas dísticas, de 10-12 mm de longitud, rara vez más. Delgadas, de 1.0 a 1.5 mm de ancho, poco ásperas. Frutos de 10 a 15 mm de longitud, rara vez más. 6 escamas, a veces 4, rara vez (Estado de Hidalgo, N.O. de Veracruz y n. de Puebla) …………………………..…….………………………………. C. benthami FF.- Árboles con ramas erectas o rígidas, de color verde brillante, verde obscuro, o verde polvoriento, o poco glauco en C. guadalupensis. Conos ovulados de la primera estación verdes a cafés, nunca glaucos; en la madurez usualmente de más de 15 mm de diámetro permaneciendo en los árboles y cerrados por mucho tiempo …………….………………………………………………………………..………………………… H H.- Los troncos y las ramas más grandes con corteza tersa lisa y de color cereza o caoba, exfoliándose en placas delgadas y no fibrosas ………….……………………………………………………………..……… I I.- Follaje verde brillante a ligeramente opaco; árboles maduros usualmente de menos de 10 m de altura; conos estaminados con 10 a 14 escamas; las semillas no todas glaucas (Montañas Orange y Costa de San Diego, California y Baja California) …………………………………………………….....………. C. forbesii H.- Follaje verde azuloso o a veces glauco, especialmente cuando jóvenes; árboles maduros usualmente de más de 10 m de altura; conos estaminados generalmente con 14-18 escamas, semillas usualmente ligeramente glaucas (conocidos solamente de la Isla de Guadalupe, Occidente de México) …...................................…...…...…..…...…...…..…...…...…..…..………………...…....... C. guadalupensis

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Clave para la determinación de pinos mexicanos (Martínez 1948) 1.- Vaina caediza ………………………………………….……………………...………..……….………… 2 1’.- Vaina persistente ………..………………………………………………..…..…..…..………………… 14 2.- Umbo terminal ……………………………………………………………...…..…..…………....……….. 3 2’.- Umbo dorsal …………………………………………………………………….…....…...………..….… 9 3.- Semilla con ala bien desarrollada ……………………………………………...…..………..…..….……. 4 3’.- Semilla sin ala o con ala rudimentaria ……………..…………………………………….…..…..….…... 7 SECCION AYACAHUITE (Escamas con umbo terminal de 4 al 8) 4.- Ápice con prolongación laminar más o menos encorvada …..………………………..…..…..…..……. 5 4.- Ápice sin prolongación laminar ……………………………………..……………...………..…..……… 6 5.- Escamas angostas y frágiles. Ala larga y angosta (30 a 45 mm de largo por unos 8 de ancho)……….. ..… ..… ..… ..… ..… ……………………………………………………………..………….…. P. ayacahuite 5’.- Escamas anchas y duras. Ala mediana y ancha ( 15 a 20 mm. de largo por 6 de a 10 de ancho) …..………..…..…..…..…..……………………………………………...……..……….. P. ayacahuite veitchii 6.- Cono no mayor de 16 cm. escamas rugosas y opacas, pedúnculo largo.… ..………. P. strobus chiapensis 6’.- Cono mayor de 16 cm. Escamas lisas y lustrosas ………………..…...…...……….…..…. P. lambertiana 7.- Ápice con prolongación laminar ……………………...……….…..…...……… P. ayacahuite brachyptera 7’.- Ápice sin prolongación laminar ………………………………..………..…..………….……………….. 8 8.- Ápice alargado casi triangular ……………………………..…………....…………..…..….…… P. reflexa 8’.- Ápice corto, semilunar en la cara interna …………………………………….....…………..….. P. flexilis 9.- Semilla con ala …………………………………………………………..…..…..….….…..…………… 10 9’.- Semilla sin ala …………………………………………………..…………………..…...……….…….. 12 SECCIÓN LEIOPHYLLA (Hojas de vaina caediza y semilla con ala; de 10 al 11) 10.- Cono pronto caedizo. Hojas verticalmente caídas ………………..…..…..…...…………… P. lumholtzii 10’.- Cono tenazmente persistente (que no se desprende de la ramilla aunque esta muera) …..…………… 11 11.- Cinco hojas delgadas y finas (medio mm de ancho o un poco más) ..…...….….... ..……….. P. leiophylla 11’.- Tres, cuatro o cinco hojas, anchas tiesas y fuertes ……………….......……………….... P. chihuahuana SECCION DE PIÑONEROS (Semillas sin alas, comestibles; del 12 al 14) 12.- Con una hoja (cifra predominante) ……………………….......…..…....………………… P. monophylla 12’.- Con dos hojas (cifra predominante) ……………………..…..…....…………....….. P. cembroides edulis 12’’.- Con cuatro hojas (cifra predominante) ………...……………....…..…..………..…… P. quadrifolia 12’’’.- Con tres hojas (rara vez dos a cinco en algunos fascículos)…………………….…..………..………13 13.- Cono oblongo o suboblongo, cúspide hundida. Hojas rectas .............…. ..………..….….... P. pinceana 13’.- Cono subgloboso, cúspide saliente, hojas por lo común encorvadas …..……..………... P. cembroides 14.- Semilla sin ala……………………………….…………………..…..…...……….….…...…… P. nelsoni 14.- Semilla con ala ……………………………………………………...………..…..……………………. 15 PINOS DE DOS HOJAS 15.- Dos hojas (cifra predominante) ……………………………………..…..…..…..………..…………… 16 15’.- Tres o más hojas ………………………………………………………...……….……..…………….. 18 16.- Cono simétrico casi simétrico apófisis no salientes ……………………...……....…………..…..…… 17 16’.- Cono asimétrico muy oblicuo. Apófisis saliente con prolongaciones irregulares…..………. P. muricata 17.- Espina fina, delgada y persistente ………...……..…..…..….………..………... P. contorta var. latifolia 17’.- Espina pequeñísima, casi rudimentaria ……………………...……….…..……... P. radiata var. binata 17’’.- Espina ancha, corta dirigida hacia la base…………………………...……….…..…..…… P. remorata PINOS DE SEIS HOJAS 18.- Con seis hojas (cifra predominante) ……………………………………...…....…………..….………. 19 18’.- Con menos de seis hojas ……………………………………………………………....……………… 20 19.- Cono de 16 a 25 cm. Hojas grandes y fuertes ………………..………….… P. michoacana var. quevedoi 19’.- Cono de 7 a 10 cm. Hojas delgadas y flexibles ……..…………………….……....….. P. duranguensis 20.- Vaina con tres hojas (cifra predominante) …………………………..…..…..…...……….…………… 21 20’.- Con 3, 4 ó 5 hojas en el mismo árbol …………………………………………..………..…………… 37

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Manual de prácticas de botánica II Ciclo 2011 20’’.- Con cinco hojas (cifra predominante) ……………………………………..…...……….…………... 48 PINOS DE TRES HOJAS 21.-Cono de 20 a 25 cm, fuerte y pesado, con larga prolongación en la cúspide. Pino de baja California ……………………………..…..…..…..…...………………………..…………..……….…………. P. coulteri 21’.- Cono de 17 cm o menos …………………………..…….………………………....………..………… 22 22.-Cono tenazmente persistente (que no se desprende de la ramilla aunque esta muera) ……..………… 23 22’.- Cono más o menos pronto caedizo……………………………………….…………...………...……. 26 23.- Hojas largas colgantes, muy finas y delgadas. Cono sésil ..…….….…..……………………….. P. patula 23’.- Cono pedunculado……………………………………...…..………....….. P. patula longepedunculata 23’’.- Hojas no colgantes, más o menos tiesas y gruesas…………………..…...……….…..……………… 24 24.- Cono oblícuo, reflejado …………………………………………..…..…..…...……………………….. 25 24.- Cono casi asimétrico, ovoide extendido ……………………………..……..…..…....…………P. radiata 25.- Apófisis saliente, con punta más o menos alargada. Cono moreno rojizo ……..……………. P. attenuata 25’.- Apófisis no saliente, sin puntas. Cono de color ocre ………………..…....…………………. P. greggii 26.- Cono muy obscuro, casi negro, con escamas delgadas y frágiles, con apófisis aplastada, rara vez protuberante. Espina muy corta o casi nula ..…..…..…..…………………..……….…….……... P. hartwegii 26’.- Cono moreno rojizo u ocre. Apófisis más o menos engrosada ……..………..…….……….……….. 27 27.- Pinos procedentes de Baja California ………………………………......…....…………..…………… 28 27’.- Pinos procedentes de otros lugares del país ……………..………………………....…………..……. 29 28.- Espina saliente delgada y aguda, extendida o dirigida hacia el ápice..……..…… ..………. P. ponderosa 28’.- Espina fuerte, gruesa ganchuda, encorvada hacia la base ………..…...……….………….… P. jeffreyi 29.-Apófisis reflejadas, alargadas y cónicas. Hojas muy gruesas y tiesas. Vaina muy oscura ..…..… ..…..……………………………………………………………….....…….…...……………..…P. engelmanni 29’.- Apófisis subpiramidal, más o menos engrosadas …………………………..…..……..…………….. 30 30.- Cono globuloso o cortamente ovoide, pedúnculo débil, delgado y largo (de 15 a 30 mm) ..… . ..………...….....…..…..………………………………………………………………………...…... P. oocarpa 30’.- Cono ovoide, sésil o sbsésil …………………………………………………......…..………..………. 31 31.- Cono pronto caedizo (cae tan pronto como suelta la semilla o muy poco tiempo después) ……..…..…..…..…..…………………………………………………………………………..………..…... 32 31’.- Cono más o menos persistente (comúnmente cae hasta el año siguiente) ………….....……....……… 34 32.- Hojas muy finas y delgadas (1 milímetro de ancho o algo más). Cono de unos 3 cm rara vez hasta cinco ….…..…..…..…..…....…………………………………………………..…………..……….....…. P. herrerai 32’.- Hojas más o menos gruesas y fuertes (mas de 1 mm de ancho) cono de 5-7 cm (excepcionalmente menos en P. teocote)…………………….....….…………….....…………..…………………...………….33 33.- Apófisis uniforme. Hojas tiesas y rígidas (en muchos ejemplares de Durango se observa fascículos de dos hojas y conos menores de 5 cm). ..…..…..…..…..…..…………..… ..………….………….........P. teocote 33’.- Apófisis desiguales. Hojas no rígidas (3, 4 y 5 en el mismo árbol) ………..………......…...…P. lawsoni 34.- Cono ovoide casi simétrico ……………………………………………....…..…..…..……….……….. 35 34.- Cono largamente ovoide o casi oblongo, oblícuo ……………………………..…….……..……….… 36 35.Hojas de 12 a 16 cm. canales resiníferos 5 o más ……………..…..…..….……...………..... P. arizonica 35’.- Hoja s de 18 a 22 cm. Canales resiníferos 3 o 4 ………..……………..………….. P. arizonica stormae 36.- Cono de 5.5 a 8.5 cm . De color ocre o rojizo, brillante. Apófisis no saliente …...…..……… P. pringlei 36’.- Cono de 12 a 16 m. de color moreno rojizo, opaco. Apófisis saliente …..……… P. engelmanni blancoi PINOS DE 3,4 Y 5 HOJAS EN EL MISMO ÁRBOL 37.- Cono muy obscuro, casi negro. Escamas delgadas frágiles. Umbos aplastados, rara vez salientes ………..…..…..…..…..…………………………………...…………..…….……………………. P. hartwegii 37’.- Cono moreno rojizo, no obscuro, escamas más o menos gruesas y duras ………….....……….…….. 38 38.- Apófisis reflejadas, alargadas y cónicas …………..………..…..…..………..….…….… P. engelmanni 38’.- Apófisis no reflejadas ni cónicas ……………………………….…………..…………………...……. 39 39.- Conos pedunculados …………………………………….…………………..………..………….……. 40 39’.- Conos sésiles o subsesiles ………………………………………………………..………....………… 41 40.- Cono ocre, escamas lisas y duras. Espinita extendida ………………..………..….. P. oocarpa manzanoi 40’.- Cono rojizo ligero. Escamas rugosas. Espinita dirigida hacia el ápice .. ..…… P. oocarpa ochoterenai

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Manual de prácticas de botánica II Ciclo 2011 41.- Cono tenazmente persistente (que no se desprende de la semilla aunque ésta muera). Corteza roja ………………………………….…………………...…………………………………..……………. P. patula 41’.- Cono persistente pedunculado ……………………..…………………...… P. patula longepedunculata 41’’.- Cono más o menos pronto caedizos después de la dehiscencia ………..………………..……….…. 42 42.- Cono oblícuo ………………………………...……………………………………...….…..………….. 43 42’.- Cono simetrico o casi simetrico …………...…………………………………...……….....………….. 45 43.- Cono ovoide no mayor de 8.5 cm ..................................................................... …………...……….... 44 43’.- Cono largamente ovoide o casi oblongo, de 12 a 16 cm ………..……………….. P. engelmanni blancoi 44.- El cono se abre en la madurez (todas las escamas se abren a un tiempo). Apófisis desiguales, opacas; pedúnculo débil…………………………………………….…………...………..…………..…….. P. lawsoni 44’.- El cono se abre en diferentes épocas (se encuentra en parte abierto y en parte cerrado). Apófisis uniformes, más o menos brillantes. Pedunculo fuerte…………………….…………………….P. pringlei 45.- Cono pronto caedizo. No se encuentran conos del año anterior ……....……… P. teocote macrocarpa 45’.- Cono persistente ………………..………………………………….…………..…………….…..…… 46 46.- Cono muy obscuro casi negro, escamas frágiles: umbo aplastado. Espina pequeña o casi nula ……………….………………………….……………………..…………………..………...……. P. hartwegii 46’.- Cono moreno rojizo, espina patente y apófisis prominente ………………………..……………….. 47 47.- Hojas de 12 a 16 cm. canales resiníferos 5 o más ................................. ..…………………… P. arizonica 47’.- Hoja de 18 a 22 cm. Canales resiníferos 3 o 4 …………..…………………….… P. Arizonica stormiae PINOS DE 5 HOJAS 48.-Cúspide con prolongaciones aplanadas, más o menos encorvada………..........P. pseudostrobus oaxacana 48’.- Cúspide sin prolongación aplanada ………………………………..……………………………….… 49 49.- Pedúnculo débil, delgado y largo (15 a 35 mm). Escamas de umbo algo achatadas, duras, color ocre lustrosas. Cono fuerte ovoide o casi globuloso …………………………………..………..……………….. 50 49’.- Pedúnculo fuerte, grueso y corto casi nulo. Cono largamente ovoide u oblongo o cilíndrico-cónico…51 50.- Hojas muy delgadas no mayores de 15 cm …………..…………….………….. P. oocarpa microphylla 50’.- Hojas gruesas mayores de 15 cm (18 a 35) ……………..……..…………………………… P. oocarpa 51.- Pedúnculo oblicuo acompañando al cono, el cual es pronto caedizo. Cono rojizo.…… ..……………. 52 51’.- Pedúnculo no oblicuo ………………………………………………………….....…………………... 54 52.- Hojas muy delgadas y flexibles (menos de 1 mm de grueso) ……………….……………..……….…. 53 52’.- Hojas gruesas y robustas (1 mm de grueso o más). Apófisis abultadas …..………….…. P. douglasiana 53.- Cúspide protuberante (como pezón). Brácteas espaciadas o casi unidas…………..……………………… ……………………………………………………..………………………….P. pseudostrobus f. protuberans 53’.- Cúspide no protuberante ……………...……………..…………..…………P. maximinoi ( P. tenuifolia) 54.- Cono muy obscuro, casi negro. Escamas débiles ……………..………...….....….…………. P. hartwegii 54.- Cono moreno rojizo o moreno amarillento …………………..………..…………..….....…………… 55 55.- Apófisis prolongada, reflejada y cónica ....................................…………….... ..……….... P. engelmanni 55’.- Apófisis no prolongada ni cónica ..................................... …………….......................………............. 56 56.- Cono de más de 16 cm. .........................................................……………............................ ..………... 57 56’.- Cono de menos de 16 cm …………………………………………………..………..………….…….. 62 57.- Cono oblongo cónico. Recto o casi recto, con la mayor anchura cerca de la base, siendo esta anchura equivalente a la tercera cuarta parte de la longitud. Umbos regularmente cuadrangulares. Cono moreno rojizo ……………………………..…………………………………………...…………..…………..…….....…… 58 57’.- Cono cilíndrico-cónico angosto y gradualmente atenuado, casi siempre encorvado, con la anchura equivalente a la tercera cuarta parte de la longitud. Umbos regularmente cuadrangulares. Cono moreno rojizo o amarillento verdoso ………………………………………..…………..…………..………………..…….. 61 58.- Cono de 16 a 20 cm …………………………………...……….………… P. montezumae f. macrocarpa 58’.- Cono de 23 a 30 cm ………………………..…………………..……………..………………………. 59 59.- Umbos casi uniformes, con el ápice regular ………………….…………..……………… P. michoacana 59’.- Umbos casi irregulares, abultados o angulosos ..………… ..………… ..………… ..………………... 60 60.- Apófisis redondeadas, mamiladas, con la cúspide más o menos hundida ….… P. michoacana f. tumida 60’.- Apófisis salientes, cúspide y ápice salientes ………………………..………. P. michoacana f. procera 61.- Apófisis no reflejadas, con la espina muy pequeña. Con amarillento verdoso ………………………………………………………………………..………….....…. P. michoacana cornuta

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Manual de prácticas de botánica II Ciclo 2011 61’.- Apófisis reflejada, saliente, con espinas patente, cono agudo y moreno obscuro ……………………………………………….……………..……….….. P. michoacana cornuta f. nayaritana 62.- Base de las brácteas espaciadas, alargadas, delgadas y casi hundidas …………..……………..……… 63 62’.- Base de las brácteas muy aproximadas, salientes que fácilmente se descaman, o ramilla casi lisa pero escamosa …………………………………………………………………………...…………..…….…….. 66 63.- Escamas delgadas, con apófisis más o menos achatadas, cúspide protuberante cono amarillento o anaranjado ............................................………………………… ..……….. P. pseudostrobus f. protuberans 63’.- Escamas gruesas, con apófisis saliente. Cúspide no protuberante …..……………………………..…. 64 64.- Cono anchamente ovoide, robusto, con apófisis reflejada. Espina fuerte …..…………………….......... ..………..…………………………..………………………………….........….. P. pseudostrobus acapulcensis 64’.- Cono ovoide o largamente ovoide. Espina poco patente o nula ............................... ..……………….. 65 65.Apófisis no reflejadas, desiguales. Espina débil y caedizas. Cono de 8 a 10 cm de longitud……………………….……………………………..………..………………….... P. pseudostrobus 65’.- Apófisis reflejadas, uniformes casi diédricas. Cono de 5.5 a 8.5 cm de longitud………………………. .…………………………………………………………………………………...P. pseudostrobus coatepensis 66.- Hojas rígidas y tiesas, casi siempre encorvadas, en seco fácilmente caedizas ..……………………… 67 66’.- Hojas flexibles, no encorvadas, en seco no se desprenden ……………..…………………………… 69 67.- Hoja de 5 a 9 cm por excepción hasta 13, con brillante. Madera amarillenta..………….…. P. cooperi 67’.- Hojas de 10 o más cm. Cono opaco. Madera blanquecina……………………………..………….... 68 68.- Cono moreno obscuro o algo verdoso con tinte violáceo. Hojas en la extremidad de las ramillas.P. rudis 68’.- Cono moreno rojizo. Hojas vistiendo a la ramilla ………………..……………..… P. cooperi ornelasi 69.- Cono pronto caedizo, menor de 6.5 cm……………………..………..…….... P. teocote f. quiquefoliata 69’.- Cono persistente mayor de 6.5 cm…………………………………..……………………….…..….. 70 70.- Pedúnculo fuerte, que ordinariamente queda en la ramilla con algunas escamas basales ………………………………..…………………………..………………..… P. duranguensis f .quiquefoliata 70’.-Pedúnculo débil, que cae con el cono, base de las brácteas muy saliente…………..………………….71 71.- Cono ovoide, largamente acuminado. Espina fuerte….………...………….…. P. pseudostrobus estevesi Cono largamente ovoide…………………………………………….......…..………….……………….. 72 72.- Hojas gruesas apófisis salientes………………………………………….....………..….. P. montezumae Hojas delgadas, apófisis algo achatadas. Cono encorvado ….…..…………………… P. montezumae lindleyi

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Claves para identificar coníferas del estado de Michoacán (Madrigal – Sánchez 1982). CLAVE DE FAMILIAS 1.-Hojas escuamiformes. Pequeñas, simples, adheridas estrechamente contra las ramillas, persistentes, opuestas o verticiladas, sin brácteas en las yemas. Cono globoso (gálbula), no mayor de 3.0 cm de diámetro, leñoso o bien pulposo y abayado. Varios sacos polínicos en cada microsporofila y 3 semillas o más en el cono …..………………..……..……..…………..…………..…………..…………..……… CUPRESSACEAE 1’.- Hojas lanceoladas, aciculares o lineares …………….………………………………..…………..………… 2 2.- Hojas lanceoladas, semillas solitarias no incluidas en un cono. Arboles de hojas simples, alargadas, con óvulos y semillas solitarios, arilo conspicuo de tejido carnoso, dos sacos polínicos por cada microsporofila ..………………………………… ..………… ..………… ..…………….………….….. PODOCARPACEAE 2’.- Hojas aciculares o lineares, semillas numerosas incluidas en un cono ……………..……...…………….... 3 3.- Hojas aciculares con vaina en la base, o bien lineares iguales o mayores de 3 cm de longitud, cono alargado de 3 cm o más de longitud. Hojas aciculares en fascículos de 3 a 5 rodeadas en la base por una vaina, o bien lineares y sin vaina; yemas con brácteas membranosas, sacos polínicos: 2 en cada microsporofila o escama; conos leñosos con escamas numerosas; semillas: 2 en cada escama o microsporofila del cono …….……………………………........................……..…………..…………..... PINACEAE 3’.- Hojas lineares de 2.5 cm de longitud o menores, cono globoso (gálbula) menor de 3.0 cm de longitud. Hojas alternas no rodeadas en la base por una vaina, persistentes sobre ramillas alargadas que son deciduas, sin brácteas en las yemas, varios sacos polínicos en cada microsporofila y 1-2 semillas por escama ………………...……………………..………..…..…………..…………..…………..…………….…….. TAXODIACEAE CLAVE DE GENEROS 1.- Hojas aciculares agrupadas, unidas en la base por una vaina. Fascículos de 3 hojas o más, largas y agudas, de 10 cm o más de longitud. Conos leñosos, con escamas persistentes y semillas con ala bien desarrollada. Yemas con brácteas laciniadas………………………….…………………..…………..…………..…………..……….. Pinus 1’.- Hojas lanceoladas, lineares o escuamiformes, sin vaina en la base …………..…..………..…...……………. 2 2.- Hojas lanceoladas, con una sola semilla, carnosa. Hojas alternas, de 6.0 cm o más de longitud, persistentes. Semilla drupácea indehiscente cubierta por una capa carnosa y coriácea que nace en un receptáculo (arilo) también carnoso. Corteza fisurada……………………..…………….……………. Podocarpus 2’.- Hojas lineares o escuamiformes, cono con varias semillas…………………..…………………….………… 3 3.- Hojas lineares iguales o mayores de 2 cm de largo, conos cilíndrico-cónicos iguales o mayores de 10 cm de longitud. Hojas hasta de 7.0 cm de largo, torcidas en la base, persistentes, alternas, colocadas en espiral, subdísticas, y en la ramilla dejan una cicatriz circular al desprenderse. Conos erectos en la punta del árbol, grandes, y escamas caedizas al madurar. Yemas cubiertas de resina ..………..………….…………..……………… Abies 3’.- Hojas lineares o escuamiformes, iguales o menores de 2.5 cm de longitud, conos globosos (gálbula) iguales o menores de 3.0 cm de diámetro...................................................…………..…………...............……….... 4 4.- Hojas lineares, alternas, deciduas con la ramilla. Hojas hasta de 2.5 cm de longitud, de base abrazadora, dísticas, cono dehiscente que se desintegra al madurar; escamas numerosas, gruesas, coriáceas, peltadas, 1-2 semillas ligeramente aladas en cada escama. Corteza fisurada ..…….…………..………………………….. Taxodium 4’.- Hojas escuamiformes, opuestas o verticiladas, persistentes …..…………………..……………………….…. 5 5.- Cono dehiscente al madurar, leñoso. Escamas poligonales bien marcadas, de superficie irregular, +/- 70 semillas con ala pequeña. Monoico.……………………….………….………….…………..……………….... Cupressus 5’.- Cono indehiscente al madurar, pulposo y abayado. Escamas poco notorias, de superficie lisa, con 3-13 semillas de borde aristado, no aladas. Dioico……….………….…………….……..…………..…………..…… Juniperus

Abies

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Manual de prácticas de botánica II Ciclo 2011 1.- Hojas de 20-30 mm de longitud, con ápice agudo, obtuso o redondeado, conos gruesos color café violáceos, de 4-6 cm de diámetro. Hojas lineares, subdísticas, torcidas en la base, ápice córneo, de color verde oscuro brillante en la superficie exterior y glaucas en la inferior. Conos erguidos, cilíndricos y oblongos, romos, resinosos, de 10-16 cm de largo y pedúnculos de 5-9 mm; escamas casi uniformes, cuneadas, de 28-35 mm de largo por 12-18 mm de ancho; ápice redondeado y entero, los bordes laterales eroso-denticulados; brácteas espatuladas, exertas y reflejadas, sobresalen de la escama 8-10 mm, rasgadas en su parte superior y con una punta triangular y aguda………………….… A. religiosa (H.B.K.) Schl. et Cham Generalmente forma masas puras, las que constituyen el llamado bosque de oyamel, en altitudes de 2400-3500 msnm. Otras ocasiones se encuentran asociado con Pinus pseudostrobus y Quercus laurina. Su principal área de distribución está localizada en la cordillera Neovolcánica, ya que en la sierra de Coalcomán se encuentran solamente en pequeñas superficies de la parte NW. Es el “Árbol de Navidad” mas típicamente conocido en la región central de México. 1’.- Hojas largas de 25-75 mm de longitud de ápice emarginado, conos delgados café amarillentos de 3-4 cm de diámetro. Hojas lineares, subdísticas, torcidas en la base, de color verde oscuro en la cara superior y glaucas en la inferior. Conos cilíndrico-oblongos, acuminados, resinosos, rectos o ligeramente encorvados, de 12.5-13.5 cm de largo. Escamas cuneadas, de 24-27 mm de alto por 30 mm de ancho. Brácteas salientes y reflejadas, de 33 mm de largo, con una punta corta que sobresale aproximadamente 3 mm ..………… ..…………  ..………… ..………… ..………… ..…………………………………… A. religiosa var. emarginata Loock et Martínez  Su área de distribución es mucho más restringida que la variedad típica en altitudes que varían de 2150-3100 msnm. Las poblaciones maás extensas conocidas son las de Mil Cumbres, en el oriente de la codillera Neovolcánica, y en el NW de la sierra de Coalcomán. No se ha observado que forme masas puras sino mezcladas con Pinus pseudostrobus, P. douglasiana, Quercus laurina, Q. rugosa, e inclusive puede formar parte del bosque mesófilo de montaña.

Cupressus 1.- Árbol. Corteza fisurada de color grisáceo, fibrosa, dividida en placas irregulares y angostas. Ramillas secundarias rojizo-violáceas; últimas ramillas más o menos ásperas, tetrágonas, no dísticas y a veces subdísticas, de color verde oscuro. Hojas de las últimas ramillas largamente ovadas, agudas, imbricadas, dorso convexo o levemente deprimido, con una glándula pequeña, oval, situada en la parte media. Conos globosos en las axilas de las ramillas secundarias y primarias, solitarios pero en conjuntos de seis o más, de 12-20 mm de diámetro, pedúnculos de 5-8 mm. Escamas de 6-8, leñosas, subcuadrangulares o subpoligonales e irregulares, gruesas y rugosas, de color rojizo algo violáceo con tinte ceniciento, umbo prominente y brácteas salientes. Semillas numerosas (+/-70), aplanadas, subtriangulares, de color castaño amarillento, con pequeña ala marginal ….………………………………………………. C. lindleyi Klotzsch Es abundante, aunque no cubre grandes extensiones, en la parte oriental de la cordillera Neovolcánica, en los límites con el estado de México, donde es frecuente que forme agrupaciones puras. También se encuentra en asociación con Pinus pseudostrobus, P. montezumae y Abies religiosa en altitudes aproximadas de 1850-2950 msnm, sobre todo en cañadas más o menos húmedas. Existe en forma escasa en la parte NW de la Sierra de Coalcomán.

Juniperus 1.- Ramillas colgantes, claramente dísticas, hojas lanceoladas y pungentes. Árbol o arbusto. Corteza fisurada dividida en tiras longitudinales, fibrosas, de color moreno rojizo oscuro. Hojas opuestas, de 1.5-2.0 mm de largo por 1.0 mm de ancho, largamente ovadas y acuminadas, rígidas, agudas, de color verde claro brillante, con glándula dorsal angostamente elíptica o casi linear. Conos solitarios, globosos, con ligeras gibas, de color verde amarillento, con tinte glauco o algo violáceo, de 10-15 mm de diámetro , con pedúnculos de 5 mm o menos. Semillas 6-8, irregularmente triangulares y angulosas..…………………….... J. fláccida Schl.

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Manual de prácticas de botánica II Ciclo 2011 Es relativamente abundante en la parte oriental de la cordillera Neovolcánica, cerca de los límites con el Estado de México. También se encuentra en la Sierra de Coalcomán y en ambas regiones montañosas, en altitudes aproximadas de 1950-2700 msnm, forma pequeñas agrupaciones puras o bien asociaciones con Pinus douglasiana, P. pseudostrobus, Quercus rugosa y en la cordillera Neovolcánica además con Pinus lawsonii. En ocasiones es componente, aunque de poca importancia, del matorral subtropical. 1’.- Ramillas no colgantes ni dísticas, hojas no pungentes…………..…………………………………………..2 2.- Ramillas aglomeradas, cono menor de 10 mm de diámetro, corteza fisurada. Arbusto. Corteza de estructura fibrosa, rasgada en tiras longitudinales, de color rojizo ceniciento. Ramillas casi lisas, de color moreno rojizo con tinte violáceo. Hojas opuestas, de 2.5 mm de largo por 2.0 mm de ancho frecuentemente cubiertas por una capa de cera, poco imbricadas, gruesas, dorso convexo o ligeramente aquillado, sin glándula o con glándula redonda poco visible situada hacia la base. Conos globosos, ligeramente gibosos, con las puntas de las brácteas visibles, de color azul oscuro algo violáceo, de 7.9 mm de diámetro. Semillas 3-4, angulosas y acuminadas o casi trígonas ….………………………….….……….. J. montícola Martinez Juniperus es la especie de distribución aparentemente más restringida, ya que solamente se ha encontrado en algunas de las elevaciones mayores del E y W de la cordillera Neovolcánica, entre 3000-3500 msnm aproximadamente. Forma agrupaciones pequeñas en los claros del bosque de Pinus rudis y del bosque de Abies religiosa. 2’.- Ramillas no aglomeradas, cono igual o mayor de 10 mm de diamtro y corteza cuadriculada. Arbusto. Corteza de color moreno oscuro, cenicienta, dividida en placas cuadrangulares. Ramillas no colgantes, levemente subdísticas. Hojas opuestas, de 1.0-2.0 mm de largo por 0.7 mm de ancho, pocas veces ternadas, poco o nada imbricadas, aovado-acuminadas, a veces rómbicas o elípticas y con un pequeño mucrón, dorso grueso y convexo, ápice agudo, sin glándula o con glándula oval muy pequeña cerca de la base. Conos laterales, globosos, de 8-12 mm de diámetro, de color verde rojizo con ligero tinte glauco azuloso. Semillas 3-5 angulosas e irregulares .... ..………… ..…………....………….………….…………..…………..……….… J. deppeana Steud.

Pinus 1. 2. 3. 4. 5.

Fascículos de 3 hojas, vaina persistente …………………………………..……….……. GRUPO A. Fascículos de 3 y 4 hojas, vaina decidua o persistente …………….……………..……….GRUPO B. Fascículos de 5 hojas, vaina persistente ………………………..…………….………….. GRUPO C. Fascículos de 5 hojas, vaina decidua ……………………………….…..……………….. GRUPO D. Fascículos de 5,6 y 7 hojas, vaina persistente …………………………….…....………… GRUPO E.

GRUPO A Fascículos de 3 hojas, vaina persistente 1.- Hojas mayores de 15.0 cmde longitud, vainas flexibles de color negro, conos oblicuos, persistentes. Hojas flexibles, de 15-28 cm de largo por 1.5 mm de ancho, ásperas, fuertes, anchamente triangulares, casi carinadas, de color verde claro ligeramente glaucas o amarillentas, brillantes. Conos largos ovoides o casi oblongos, de 5.5-8.5 cm de longitud, de color ocre amarillento,duros pedúnculos de 8-10 mm. Escamas con la cúspide poco notoria o hundida. Ramillas rojizas y escamosas …………….…..………….. P. pringlei Shaw Es también una especie que desciende a la parte subtropical, encontrándose en hábitats similares a los que ocupa P. oocarpa. Se halla distribuida solamante en la cordillera Neovolcánica, sobre todo en la parte central, en altitudes aproximadas de 1400-2000 msnm. Forma masas puras de considerable extensión y otras ocasiones está en asociación con una o más especies de Pinus y Quercus, como son P. lawsonii, P. oocarpa, P. michoacana, P. douglasiana, P. pseudostrobus, P. maximinoi, Q. resinosa, Q. conspersa, Q. obtusata, Q. castanea. 1’.- Hojas rígidas, iguales o menores de 15.0 cm de longitud, vainas de color castaño, conos simétricos pronto caedizos ………………………..……………….………….………..…………..…………..…….…..…………….… 2

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Manual de prácticas de botánica II Ciclo 2011 2.- Hojas rígidas y gruesas tiesas, de 2.0 mm de ancho, hojas de 10-15 cm de longitud, color verde brillante y a veces ligeramente amarillentas. Canales resiníferos medios, a veces con uno interno. Conos simétricos, ovoides u ovoide cónicos, de 4.0-6.5 cm de longitud, reflejados, pedunculados de 5-8 mm de largo. Ramillas rojizas y escamosas ……...…………..……….………..…………..…………..…………..…………P.teocote Schl. et Cham. Se encuentra distribuido principalmente en la parte centro-oriental de la cordillera Neovolcánica, en altitudes de 1500-2700 msnm aproximadamente. No se tienen registros de la sierra de Coalcomán. Aunque suele formar comunidades puras, con frecuencia se encuentra asociada esta especie con una o más del mismo género y con Quercus,tales como P. montezumae, P. psedostrobus, P. lawsonii, Q. crassifolia y Q. rugosa. 2’.- Hojas suaves y flexibles, de 1.0 mm de ancho. Hojas de 10-15 cm de longitud, color verde claro, brillantes. Canales resiníferos internos. Conos ovoides largos, de 3-5 cm de largo, reflejados, pedúnculos de 6 mm de longitud. Ramillas ásperas, de color rojizo-amarillento ……..……………… P. herrerae Martínez Solamente se conoce de la parte NW de la Sierra de Coalcomán, donde constituye extensos bosques en masas puras o mezcladas con Pinus michoacana, P. michoacana var. Cornuta, P. douglasiana, P. oocarpa y Quercus spp., aproximadamente entre 2000-23000 msnm. GRUPO B Fascículos de 3 y 4 hojas, vaina decidua o persistente. 1.- Hojas flexibles de color verde claro, iguales o menores de 10 cm de longitud, vainas en forma de roseta, conos simétricos resinosos, iguales o mayores de 10 cm de largo. Hojas anchamente triangulares, 3 y 4 en cada fascículo, de 6-10 cm de longitud por 0.7- 1.0 mm de ancho, brillantes en su cara externa y en las interiores glaucas. Un haz fibrovascular y canales resiníferos externos. Conos oblongos, ligeramente colgantes, pronto caedizos, simétricos, de 10-15 cm de longitud, de color ocre con el umbo cubierto de resina ambarina y pedúnculos de 15-30 mm de longitud …….......................… P. rzedowskii Madrigal et Caballero Hasta la fecha solamente ha sido registrada esta especie en pocas localidades, relativamente cercanas entre sí, de la porción NW de la sierra de Coalcomán, en altitudes de 2000-2400 msnm aproximadamente, en terrenos con abundantes afloramientos de roca caliza. Forma masas puras en asociación con Clusia salvinii, aunque puede tener elementos en el área ecotonal que corresponden al bosque de pino-encino y al bosque mesófilo de montaña. 1’.- Hojas tiesas de color verde ceniciento, mayores de 10 cm de longitud; vainas adultas no en forma de roseta, conos asimétricos no resinosos, menores de 10 cm de largo. Hojas anchamente triangulares o carinadas de 1.0- 1.5 mm de ancho, en número de 3 y 4 por fascículo en la misma ramilla, predominando los fascículos de 3, de 14-22 cm de longitud por 1.0-1.5 mm de ancho; vainas persistentes que en ocasiones se desgarran y pueden desprenderse. Dos haces fibrovasculares, canales resiníferos internos y medios. Conos ovado-cónicos u oblongo-cónicos, semipersistentes, atenuados hacia la base, de 5-7 cm de largo, color ocre amarillento, a veces cenicientos, opacos y pedúnculos de 7-12.5 mm de longitud. Ramillas escamosas ………………...…………………………………..………….…………………………….…… P.lawsonii Roezl Es una especie representada casi exclusivamente en la cordillera Neovolcánica, en donde es abundante en toda su extensión; en cambio, en la sierra de Coalcomán solamente ha sido colectada en la parte NE de la misma. Forma masas puras o en asociación con una o más de las especies Pinus oocarpa, P. douglasiana, P. pringlei, P. teococote, P. michoacana var. cornuta, P. pseudostrobus, P. leiophylla y las especies Quercus resinosa y Quercus obtusata entre otras, en altitudes aproximadas de 1500-2450 msnm. GRUPO C Fascículos de 5 hojas, vaina persistente 1.- Conos ovoides cortos, persistentes y colgantes, pedúnculos delgados y débiles de 2-3 cm de longitud. Hojas de 15-30 cm de largo, anchamente triangulares, de 1.2-1.5 mm, de color varde claro, brillantes, tiesas

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Manual de prácticas de botánica II Ciclo 2011 y ásperas. Vainas de color castaño oscuro. Conos de 5.5-8-0 cm de longitud, abiertos tienen forma de roseta, de color ocre, lustrosos…………………..…………..…………..…………..…………..…………………. P. oocarpa Schiede Es de las especies conideradas como subtropicales, por encontrarse frecuentemente en ecotonos con la vegetación tropical de angiospermas en altitudes de 700-2000 msnm; forma masas puras, aunque frecuentemente forma asociaciones con Pinus lawsonii, P. pringlei, P. leiophylla, P. douglasiana, P. michoacana var. cornuta . Se localiza en la parte centro occidental de la cordillera Neovolcánica y en la parte NE y sur de la sierra de Coalcomán, donde forma bosques de considerable extensión. Parece ser una especie bien adaptada a los incendios frecuentes, a las fuertes sequias periodicas y a los terenos degradados. Son varias las especies de encinos que forman parte de estos bosques, como son: Quercus resinosa, Q. scitophylla, Q. magnoliifolia y Q. elliptica. 1’.- Conos ovoides, gruesos, oblongos o cilíndricos-conicos, pedúnculos fuertes, menores de 2.0 cm de longitud o casi nulos ……………………………………......……….………….…………..…………..….………….………… 2 2. Cúspide de las escamas protuberante en forma de pezón, conos de color amarillo, anaranjado o rojizo. Hojas de 1.1 mm de ancho, flexibles. Conos persistentes, marcadamente ovoides, largos, casi oblongos, robustos de 12-14 cm de longitud, escamas delgadas, duras y apófisis aplanada o muy poco saliente. El pedúnculo no se desprende con el cono...P. pseudostrobus f. protuberans Martínez Se circunscribe aproximadamente a la parte central de la cordillera Neovolcánica, en localidades restringidas. Las altitudes en las que se encuentra son de +/- 2200-2600 msnm y forma asociaciones con Pinus pseudostrobus, P. michoacana var. cornuta, P. montezumae, P. leiophylla, Cupressus lindleyi, Quercus crassipes y Q. laurina. 2’.- Cúspide de las escamas no protuberante ni en forma de pezón; conos de color café claro, amarilentos o verdosos ……………………………….…………..…………..…………..…………..…………..…………..……………….… 3 3.- Brácteas de las hojas en las ramillas (base de la inserción de los fascículos) espaciadas y apenas sobresalientes, ramillas casi lisas. Hojas de 1.1 mm de ancho, triangulares y flexibles, colgantes, de 17-24 cm de longitud, color verde intenso, a veces con ligero tinte amarillento. Hipodermo uniforme. Conos ovoides o largamente ovoides, de 8-10 cm de longitud, color café claro, amarilentos o rojizos, levemente encorvados, poco asimétricos; escamas delgadas, duras, con apófisis más o menos aplanada, cúspide pequeña no protuberante. Pedúnculo de 10-15 cm de longitud, no se desprende con el cono y con frecuencia queda en la ramilla con algunas escamas. Corteza de ramas y tronco superior lisa y gris. Ramas primarias y verticiladas ..………….……….………………………………………….………………….…......…. P. pseudostrobus Lindl Su área de distribución es principalmente la cordillera Neovolcánica, sobre todo en su parte centrooriental y en las superficies de cierta consideración de la parte NW de la sierra Coalcomán, en altitudes de 2000-2800 msnm aproximadamente. Forma bosques puros, aunque con frecuencia también constituye asociaciones con P. montezumae, P. maximinoi, P. lawsonii, P. michoacana var. cornuta , P. pringlei, P. douglasiana P. leiophylla, y con las especies de encinos Quercus laurina, Q, rugosa, Q. candicans. 3’. Brácteas de las hojas en las ramillas (base de la inserción de los fascículos) aproximadas y salientes, ramillas ásperas ……………………………………………………….…………...…………..…….………. 4 4. Hojas muy delgadas, menores de 1.0 mm de ancho. Escamas delgadas y flexibles, apófisis rugosa y aplanada. Hojas triangulares, colgantes, de color verde claro ligeramente amarillento, con pequeñas entrantes del Hipodermo hacia el endodermo. Conos oblongos o largamente ovoides, aplanados en la base, asimétricos, de 7.5 cm de longitud, caedizos, pedúnculos oblicuos y encorvados de 15 mm de largo, se desprenden con el cono. Quilla pequeña y cúspide poco notoria en las escamas, con espina corta y pronto

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Manual de prácticas de botánica II Ciclo 2011 caediza. Corteza de ramas y parte superior del tronco lisa y gris. Ramas primarias verticiladas ..………… ..……..………… ..………… ..……………..……… P. maximinoi Moore Sinonimia: P. tenuifolia Bentham Parece ser que se distribuye prácticamente en toda la cordillera Neovolcánica y parte norte de la sierra de Coalcomán, aunque sin llegar a formar grandes bosques y en poblaciones relativamente aisladas. Se encuentra en altitudes aproximadas de 1500-2250 msnm, asociándose frecuentemente con Pinus douglasiana y P. pseudostrobus, con las que suele confundirse, y con P. pringlei y P. oocarpa. En las cañadas y lugares protegidos más o menos húmedos, en donde generalmente forma masas puras. 4’.- Hojas gruesas, iguales o mayores a 1 mm de ancho. Escamas gruesas y duras, apófisis lisa o poco rugosa y saliente ………………………………………………………………..…………..………………….… 5 5.- Pedúnculo oblicuo que permanece unido al cono al desprenderse de la ramilla. Hojas de 1.0 mm de ancho, levemente colgantes, triangulares, de 25-33 cm de largo, de color verde claro algo amarillento e Hipodermo con grandes entradas hacia el endodermo. Conos largamente ovoides, algo asimétricos reflejados, caedizos, de 7.5-10.5 cm de largo y pedúnculo de 12 mm de longitud. Escamas gruesas. Umbo irregularmente cuadrangular o poligonal, quilla transversal notoria. Apófisis subpiramidal algo levantada. Cúspide aplanada o poco saliente. Corteza de ramas y parte superior del tronco con escamas ligeramente rojizas. Ramas primarias verticiladas …………………………….………………... P. douglasiana Martínez Tiene amplia distribución en la parte W de la cordillera Neovolcánica, así como en la porción N de la sierra de Coalcomán, en ambas cordilleras forma extensos bosques en altitudes aproximadas de 1400-2250 msnm, aunque con frecuencia se encuentra en asociación con una o más de otras especies de Pinus, como P. oocarpa, P. lawsonii, P. maximinoi, P. michoacana, P. herrerae, P. pringlei, P. montezumae,P. pseudostrobus, P. leiophylla, y Quercus spp. Tiene la particularidad esta especie de encontrarse aparentemente bien adaptada a las áreas conocidas como “Malpaís” (que son derrames de lava basáltica recientes), así como a los suelos profundos. 5’.- Pedúnculo no oblicuo, permanece unido a la ramilla al desprenderse el cono............................ ..…………. 6 6.- Hojas rígidas, tiesas, erguidas y algo encorvadas, de 10-16 cm de longitud. Anchamente triangulares de 1.5 mm de ancho, agrupadas en la extremidad de las ramillas, en seco se desprenden fácilmente y son de color verde claro. Conos largamente ovoides, un poco oblicuos y algo encorvados, de color verde oscuro, a veces con tinte rojizo o amarillento-verdoso, semipersistentes, de 8-12.5 cm de longitud, pedúnculo de 8-10 mm de largo, con frecuencia oculto en las escamas basales, algunas de las cuales quedan adheridas al pedúnculo al caer el cono. Escamas delgadas y frágiles, apófisis levantada o poco patente, cúspide con espina corta y frágil. Ramillas muy ásperas ………………………………..………………….……... P. rudis Endl. Su distribución se encuentra restringida a la parte de las elevaciones principales en la parte más alta de las elevaciones principales en la parte occidental de la cordillera Neovolcánica en altitudes de 3000-3700 msnm aproximadamente. En su mayor parte forma masas puras, aunque también constituye asociaciones mixtas con Pinus montezumae hacia el limite altitudinal inferior. Pertenece a la comunidad llamada bosque de pino, ya que a estas altitudes no se encuentran encinos (Quercus). 6’.- Hojas flexibles, colgantes,no corvadas, iguales o mayores de 16 cm de longitud …………..………….. 7 7.- Conos menores de 16.0 cm de longitud ……………………..………………………….....……………...8 7’.- Conos mayores de 16.0 cm de longitud…...……………..……………………………………...…………. 9 8.- Hojas anchamente traingulares, de 1.2 mm de grueso por 14-21 cm de longitud, cono casi recto. Hojas flexibles, de color verde oscuro, extendidas o colgantes. Conos caedizos, de 8.5-15.0 cm de longitud, con escamas gruesas, largamente ovoides, ovoide-cónicos u oblongo-cónicos, levemente asimétricos y un poco encorvados, de color moreno amarillento, opacos o levemente lustrosos, extendidos o ligeramente colgantes, apófisis algo aplanada. Pedúnculos de 10-15 mm, por lo general quedan unidos a la ramilla al desprenderse el cono ……....…………..…………..…………..…………..…………..…...………… P. montezumae Lamb. Solamente ha sido registrada en la cordillera Neovolcánica, sobre todo en la parte occidental, en altitudes aproximadas de 2000-3000 msnm. Forma masas puras y también asociaciones con una o más de las

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Manual de prácticas de botánica II Ciclo 2011 especies Pinus michoacana, P. michoacana var. cornuta , P. lawsonii, P. douglasiana, P. rudis, P. pseudostrobus, P. leiophylla, P. teocote. Los encinos Quercus crassifolia, Q, rugosa, Q. obtusata son frecuentes en esta comunidad. 8’.- Hojas triangulares, delgadas, de 1.1 mm de grueso por 27-35 cm de longitud, cono encorvado. Hojas flexibles y colgantes, de color verde oscuro. Conos largamente ovoides, con escamas gruesas, atenuados gradualmente hacia el ápice, de 12.0-14.0 cm de longitud, colgantes, de color moreno pálido y de ápofisis algo aplanada; cúspide oscura que termina en una punta muy corta y persistente ..………… ..………… ..…………  ..………… ..………… ..………… ..………… ..………… ..………… ..………… ..………… ..… P. montezumae var. Lindleyi Loud.   Coincide en general con la distribución de la variedad típica, aunque las poblaciones son más pequeñas, en altitudes de +/- 2350 msnm. Forma asociaciones con P. montezumae, P. leiophylla, P. pseudostrobus y P. michoacana. 9.- Hojas de vaina color gris claro, no resinosa. Conos oblongo cónicos, de color rojizo claro, de 16-20 cm de longitud, rectos o casi rectos, con la mayor anchura cerca de la base, equivalente a la mitad de la longitud. Umbos tranversalmente alargados y ramillas ásperas ..…………….…………………………………….…….. ..………… ..………… ..………… ..………… ..………….....………P. montezumae f. macrocarpa Martínez Solamente se ha registrado en la cordillera Neovolcánica, donde forma agrupaciones casi puras y en otras ocasiones constituye asociaciones con P. pseudostrobus, P. pseudostrobus f. protuberans, P. leiophylla y Q. crassipes, en altitudes de aproximadamente 2500-2600 msnm.

9’.- Hojas de vaina color gris oscuro, casi negro, resinosa . ..…………....................................................... 10 10. Cono cilíndrico-cónico, angosto y gradualmente atenuado, casi siempre encorvado, con anchura equivalente a la tercera o cuarta parte de la longitud, umbos irregularmente cuadrangulares y conos de color café amarillento. Hojas triangulares, fuertes y flexibles, moderadamente ásperas, de 30-40 cm de longitud, de color verde oscuro. Vainas fuertes, brillantes y resinosas, de 25-35 mm de largo, casi negras en las hojas adultas. Conos oblongo-ovoides de 16-30 cm de longitud, gradualmente atenuados hacia el ápice, algo oblicuos y asimétricos, frecuentemente encorvados, a veces algo torcidos semejando cuernos, de color café amarillento, algo resinosos y fuertes, semipersistentes, apófisis algo levantada, casi diétrica y levemente reflejada, quilla transversal saliente. Pedúnculos de 10-15 mm de largo, por lo general no se desprenden junto con el cono …………………...……….………………………… P. michoacana var. Cornuta Martínez Se encuentra más ampliamente distribuida que la variedad típica y que la forma procera, localizándose tanto en la cordillera Neovolcánica como en la sierra de Coalcomán, en altitudes aproximadas a los 1500-2400 msnm. Forma masas puras y mezcladas con una o más de las especies P. oocarpa, P. lawsonii, P. michoacana, P. douglasiana, P. leiophylla, P. herrerae P. pseudostrobus. Es común la asociación con Quercus rugosa, Q. castanea y Q. obtusata. 10’.- Cono oblongo-cónico, recto o casi recto, con la mayor anchura cerca de la base, siendo esta anchura equivalente a la mitad de la longitud, umbos transversalmente alargados y conos moreno rojizo ……………………………………….………………………..…………..…………………………...……. 11 11.- Ápice de la escama regular, apófisis protuberante. Hojas triangulares o anchamente triangulares, ásperas y fuertes, flexibles y robustas, de 30-35 cm de longitud, color verde claro brillante. Vainas de 25-30 mm de largo, color muy oscuro y resinosas. Conos oblongo-ovoides o casi cilíndrico-cónicos, algo oblicuos, gradualmente atenuados hacia la extremidad y muy poco hacia la base, de 25-30 cm de largo, de color moreno opaco, algo resinosos, persistentes y fuertes, extendidos o ligeramente colgantes, casi rectos o levemente encorvados. Umbos irregularmente romboidales, apófisis levantada o anchamente piramidal, quilla transversal bien marcada, cúspide pequeña, cenicienta, con una pequeña punta casi roma, caediza, de 1-2 mm. Pedúnculo grueso y fuerte, de 15-20 mm de largo ………………………… P. michoacana Martínez No es muy abundante, habiéndose registrado hasta la fecha en la parte W de la cordillera Neovolcánica y N de la sierra de Coalcomán, en altitudes aproximadas de 1000-2500 msnm. Rara vez forma masas puras, por lo que se encuentra en asociación con uno o más de los taxa Pinus oocarpa, P. lawsonii,

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Manual de prácticas de botánica II Ciclo 2011 P.priglei, P. leiophylla, P. pseudostrobus, P. montezumae, P. montezumae var. lindley, además de Quercus candicans, Q. laurina, Q. rugosa, Q. crassipes y Q. obtusata. 11.- Ápice de la escama irregular y abultado, apófisis poco protuberante. Hojas de 30 cm de longitud. Conos algo rojizos, de 23-27 cm de largo, umbos casi irregulares, abultados o angulosos; cúspide y ápice salientes ..………… ..………… ..………...……………………………………….. P. michoacana f. procera Martínez Es un taxón que crece aisladamente en las comunidades del bosque de pino-encino en la cordillera Neovolcánica, en altitudes de aproximadamente 1200-1800 msnm. Se encuentra en asociación con Pinus oocarpa, P. douglasiana, P. lawsonii y P. michoacana. En las altitudes menores forma asociaciones con Q. glaucoides y Q. resinosa, en áreas transicionales con la selva baja caducifolia. GRUPO D Fascículos de 5 hojas, vaina decidua 1.- Hojas glaucas en sus caras internas, cono subcilíndrico pronto caedizo, igual o mayor de 22 cm de largo, umbo terminal. Hojas delgadas de 1.0 mm de ancho por 11-16 cm de longitud, color verde oscuro, algo colgantes, agrupadas en la extremidad de las ramillas, dientecillos de las hojas espaciados. Un haz fibrovascular y canales resiníferos externos. Conos subcilíndricos de 22-35 cm de largo, colgantes, poco encorvados, color amarillento, muy poco resinosos, ápice de la escama con prolongación laminar más o menos encorvada. Pedúnculo de 15-20 mm de largo. Corteza delgada de color gris claro o rojizo………………………………..…………..…………..…………..…………..……….. P. ayacahuite var. veitchii Shaw Está localizado en pequeñas poblaciones, habiéndose colectado solamente en la parte W de la cordillera Neovolcánica, en cañadas húmedas y parte baja de algunas elevaciones, en altitudes aproximadas de 2100-2300 msnm. Rara vez forma masas puras, y en general se encuentra en asociación con Pinus pseudostrobus, P. douglasiana y P. leiophylla. 1’.- Hojas verdes en sus caras internas, cono ovoide tenazmente persistente, igual o menor de 6 cm de largo, umbo dorsal. Hojas finas y delgadas de 0.8 mm de ancho por 8-13 cm de longitud, color verde grisáceo, a veces con tinte amarillento, aglomeradas en la extremidad de la ramilla. Dos haces fibrovasculares y canales resiníferos medios e internos. Conos de 4-6 cm de longitud, algo puntiagudos y asimétricos más o menos reflejados. Pedúnculos de 5-15 mm de largo. Corteza gruesa de color gris muy oscuro y algunas veces con yemas adventicias en el tronco ..……………………………………………...… P. leiophylla Schl. et Cham. En la cordillera Neovolcánica tiene amplia distribución, determinada posiblemente por su adaptación a los diferentes agentes de perturbación del bosque, sobre todo a los incendios frecuentes, por lo que también suele formar asociaciones con la mayoría de las demás especies de Pinus, como son: P. michoacana var. cornuta, P.herrerae, P. pseudostrobus, P. lawsonii, P. douglasiana y P. montezumae, y con encinos como Quercus crassipes y Q. rugosa. La variación altitudinal en donde se localiza es amplia, de aproximadamente 1500-2600 msnm. En la sierra de Coalcomán es escasa. GRUPO E Fascículos de 5,6 y 7 hojas, vaina persistente 1.- Fascículos de 6 hojas como cifra predominante, rígidas, cono de pedúnculo oblicuo. Hojas triangulares de 20-28 cm de longitud por 1.2 mm de ancho. Conos oblongo-cónicos, subsimétricos, de color café rojizo, de 6-8 cm de longitud, pedúnculo de 1.5 cm de largo por 1.0 cm de diámetro, escamas con escasa resina ambarina. Ramillas ásperas y escamosas …..…………..…………..…………..…………..…………. P. martinezii Larsen Hasta la fecha solamente se ha colectado en una localidad de la cordillera Neovolcánica, en altitudes de 2250-2300 msnm. Forma asociaciones con P. montezumae, P. teocote, P.leiophylla, Q. crassifolia, Q. crassipes y Q rugosa, en elevaciones bajas con abundante afloramiento de rocas basálticas. PODOCARPUS 1. Árbol. Hojas alternas torcidas en la base, lanceoladas, a veces falcadas, de ápice córneo, color verde brillante en el haz y opacas en el envés, de 6-15 cm de longitud por 1.0-1.5 cm de ancho; nervadura central

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Manual de prácticas de botánica II Ciclo 2011 notoria por ambas partes. Yemas cubiertas por brácteas. Estróbilo masculino de 3-4 cm de longitud. Semilla drupácea sobre pedúnculo de 1.0-2.0 cm, receptáculo carnoso de color verde glauco que al madurar se vuelve café oscuro. Arilo verde glauco y al madurar de color rojo. Semilla anchamente ovoide, de 1.2-1.5 cm de largo y más o menos 1.2 cm de diámetro ………………….…………………….… P. reichei Buchh. et Gray Es componente florístico importante del estrato superior en algunas consociaciones del bosque mesófilo de montaña. Su hábitat está en las cañadas húmedas, tanto de la cordillera Neovolcánica en l parte centro-occidental, como en el NW de la sierra de Coalcomán, aunque en ambos casos se ha encontrado en pocas localidades. Su distribución altitudinal varia de aproximadamente 2000 msnm y los géneros más conspicuos con los que forma diferentes asociaciones son: Quercus, Carpinus, Tilia, Clethra, Cornus, Meliosma, Symplocos, Euya, Zinowiewia y Oreopanax.

TAXODIUM 1.- Árbol de corteza moreno rojiza, se desgarra en tiras longitudinales, de estructura fibrosa. Ramillas primarias extendidas o colgantes, ramillas secundarias alternas, las últimas ramillas son colgantes y glabras, de 5-12 cm de longitud, son las que sustentan las hojas. Hojas de color verde oscuro, lineares, rectas o muy levemente falcadas, de ápice agudo y borde entero, la base es abrazadora en la ramilla; alternas, de 30 a 60 cm a cada lado de la ramilla, colocadas en forma dística, miden de 10-22 mm y casi 1mm de ancho. Conos ovales u subovales, casi globosos, dehiscentes, duros y aromáticos, de color verdoso con tinte azuloso, cubiertos de puntas cortas, casi sésiles, de 16 -20mm de largo por 15-17mm de ancho. Escamas en número de 20-28, trapezoides, rugosas. Semillas 22-40, angulosas y agudas. Especie monoica ……..…………..…………..…………..…………..…………..…………..…………..…………..……….… Taxodium mucronatum Ten. Frecuentemente forma agrupaciones monoespecíficas, aunque suele encontrarse en asociación con Salix. Es el “árbol nacional” de México.

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